Методическая статья

Неразрушающий 3D-количественный анализ остаточных пародонтальных связок на экстрагентных премолярах человека с использованием интраорального сканирования

DOI:

10.3791/71176

⸱

23 июня 2026 г.

 ,  ,  ,  , 
1Department of Cariology and Endodontology, Peking University School and Hospital of Stomatology & National Center for Stomatology & National Clinical Research Center for Oral Diseases & National Engineering Research Center of Oral Biomaterials and Digital Medical Devices, 2Department of General Dentistry, First Clinical Division, Peking University School and Hospital of Stomatology & National Center for Stomatology & National Clinical Research Center for Oral Diseases & National Engineering Research Center of Oral Biomaterials and Digital Medical Devices, 3Department of Oral Medicine, Shanxi Provincial People's Hospital, The Fifth Clinical Medical College of Shanxi Medical University

В этой статье

Краткое содержание

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Этот протокол описывает неразрушительный, количественный 3D-цифровой метод оценки остаточных пародонтальных связок на удалённых зубах. Используя интраоральное сканирование и программное обеспечение для обратного инжиниринга, мы создали ex vivo рабочий процесс для пародонтальной оценки, что стало методологической основой для сравнения методов экстракции в доклинических исследованиях.

Аннотация

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Намеренная реплантация зуба — ценное средство для сохранения естественных зубов с эндодонтическими поражениями. Её успех критически зависит от жизнеспособности и структурной целостности остаточной пародонтальной связки (PDL). Традиционные методы оценки, такие как гистологическое сечение или двумерная фотография, либо разрушительны, либо ограничены ошибками проекции. Для устранения этих ограничений этот протокол предлагает неразрушительный, количественный метод оценки остаточного PDL с помощью высокоточного интраорального сканирования. Удалённые зубы были окрашены для визуализации ткани PDL и трёхмерно сканированы для создания высококачественных цифровых моделей. Данные анализировались с помощью программного обеспечения для обратного инжиниринга, где определялась область интереса, а остаточное покрытие PDL количественно оценивалось с помощью порога цвета. Этот подход рассчитывал истинную трёхмерную область покрытия PDL без ущерба биологическому образцу. Для оценки чувствительности и полезности этого протокола он был применён для сравнения минимально инвазивных (МИ) экстракций с использованием периотомов и традиционных щипцов. Цифровой анализ показал, что метод MI сохраняет значительно больше ткани PDL (61,99%), чем традиционный метод (50,46%). Кроме того, последующий анализ жизнеспособности клеток подтвердил цифровые данные, показав значительно более высокую метаболическую активность в группе с МИ. В конечном итоге эта работа устанавливает рабочий процесс с подтверждением концепции для количественной оценки PDL ex vivo , предоставляя надёжную методологическую основу для сравнения методов экстракции в доклинических исследованиях.

Введение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Намеренная реплантация зубов всё больше признаётся жизнеспособным методом лечения в последней меры для сохранения натуральных зубов, которые иначе считались бы безнадёжными. Он предназначен для лечения устойчивых периапикальных поражений, недоступных перфораций каналов или обширных резорбтивных поражений, которые нельзя лечитьнехирургическим путём 1,2. Стандартная процедура включает намеренное удаление поражённого зуба, затем экстраоральный визуальный осмотр, терапевтическое вмешательство (включая удаление корня, приготовление и пломбу корня), а затем повторную посадку в исходнуюлунку 1,2.

Наличие и целостность жизнеспособной остаточной ткани пародонтальной связки (PDL) на поверхности корня являются наиболее важными прогностическими факторами, определяющими процесс заживления после реплантациизуба 3,4. Здоровый, целый барьер PDL необходим для восстановления физиологической подвижности и предотвращения осложнений, таких как резорбция заместителя (анкилоз) или воспалительная резорбция корня. Однако вырывание зуба из альвеолярной лунки, будь то травматическое или намеренное, по своей сути нарушает прикрепление волокон PDL и прерывает нейроваскулярноеснабжение 5. Следовательно, биологическая реконструкция PDL имеет решающее значение для пародонтального заживления восстановленныхзубов 3. Обширные исследования показали, что максимизация жизнеспособности и объёма остаточной ткани PDL во время внеоральных клинических процедур является ключевым прогностическим фактором, а её значение для долгосрочного функционального выживания восстановленных зубов хорошо задокументировано влитературе 6,7.

Поскольку экстракция по своей сути нарушает прикрепление PDL, выбор метода экстракции напрямую влияет на объём и жизнеспособность остаточной ткани PDL, оставшейся на поверхности корня. Обычное извлечение щипцами применяет вращательные и тяговые силы, которые могут сдавить PDL о альвеолярную кость или сорвать её через трение. Для минимизации этой травмы были разработаны методы малоинвазивной (MI) экстракции. Предыдущие исследования показали, что методы инфарктива могут значительно снизить хирургическую травму пародонтия поражённыхзубов 8. Разработаны методы с использованием периотомов для разрыва прикрепления PDL или вертикальных систем экстракции, избегающих рычажных сил, для сохранения остаточного PDL на корневой поверхности. Например, в случаях зафиксированы улучшение клинических результатов при намеренной реплантации зуба и хирургической экструзии при использовании инфарктивных систем 9,10. Эти данные свидетельствуют о том, что минимизация травм при удалении может улучшить удержание остаточной ткани PDL на поверхности корня.

Однако, несмотря на клинический консенсус о пользе атравматической экстракции, существует ограниченное количество прямых данных, количественно оценивающих степень сохранения остаточной ткани PDL при использовании методов MI по сравнению с традиционными методами. Этот пробел в знаниях во многом связан с ограничениями доступных методологий оценки. Существующие исследования преимущественно используют субъективные или разрушительные методы оценки для оценки остаточного PDL на поверхности корня. Гистологическое секционирование остаётся стандартом для клеточного анализа11, но оно по своей сути является разрушительным, делая образец непригодным для дальнейших исследований. Альтернативно, для характеристики остаточногоPDL 12 использовалось окрашивание в сочетании с двумерной (2D) фотографией. Однако эти методы недостаточны для количественной оценки остаточной ткани PDL всей корневой поверхности. Двумерная фотография не может точно отобразить площадь поверхности сложного, изогнутого трёхмерного корня; это неизбежно приводит к ошибкам проекции и искажениям, что приводит к неточным количественным оценкам.

В последние годы технология цифрового интраорального сканирования значительно продвинулась, обеспечивая высокую точность и быстрое сбора данных. Цифровой метод использовался в предыдущих исследованиях для измерения отпечатков и изменений мягких тканей, а также для оценки износа зубов у молодыхлюдей 13 лет. Применения даже расширились до сложных объемных анализов, таких как оценка отёка лица при оральнойхирургии 14. Эти технологии позволяют создавать высокоточные трёхмерные (3D) модели, которые можно манипулировать и измерять в программном обеспечении для обратного инжиниринга, предлагая потенциальное решение для неразрушительного, количественного анализа. Однако на сегодняшний день потенциальное применение интраорального сканирования для оценки остаточного PDL удалённых зубов не исследовано.

Главная цель этого протокола — создать стандартизированный, неразрушительный рабочий процесс, сочетающий биологическое окрашивание с высокоточным внутриоральным сканированием и 3D-обратным инжинирингом. Создавая высокоточные цифровые модели с цветно-текстурированными картами поверхностей, этот метод позволяет более объективно и воспроизводимо измерять остаточный PDL по всей корневой поверхности. В этом исследовании применяется предложенный рабочий процесс для сравнения остаточного покрытия PDL при двух методах экстракции — экстракции инфарктива с помощью периотома и традиционного извлечения щипцом — у премоляров человека. Существует гипотеза, что метод MI сохраняет большую долю остаточного покрытия PDL, чем традиционный метод.

Важно, что этот протокол разработан исключительно как инструмент экс-виво исследований в лабораторных или доклинических условиях. Процедура включает окрашивание, сушку на воздухе, цифровое сканирование и программную сегментацию, при этом общее время анализа, несовместимое с интраоперационным использованием во время намеренной реплантации, когда необходимо минимизировать время экстраорального восстановления. Следовательно, этот метод подходит для (i) сравнения эффективности различных методов экстракции, сохраняющей PDL, в контролируемых условиях; (ii) обучение и калибровка в образовательных учреждениях; и (iii) валидационные исследования, связывающие цифровые метрики покрытия PDL с биологическими результатами. Его применение к зубам с несколькими корнями и сложной анатомией требует дальнейших исследований.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Протокол исследований проводился в соответствии с руководящими принципами Этического комитета Школы стоматологии Пекинского университета (PKUSSIRB-202054022).

1. Отбор пациентов и распределение групп

  1. Выберите пациентов, требующих удаления премоляров для ортодонтических целей. Убедитесь, что премоляры соответствуют критериям включения при отсутствии кариеса или пародонтоза.
  2. Исключайте пациентов с высоким кровяным давлением, диабетом, анамнезом курения или лицами младше 16 лет и старше 45 лет.
  3. Случайным образом распределите премоляры на две экспериментальные группы: контрольную группу (традиционная экстракция) и минимально инвазивную (MI) группу (экстракция с помощью периотома).
  4. Случайным образом назначайте зубы каждой группы либо по пути 3D-сканирования, либо по пути биологической валидации (CCK-8), обеспечивая использование независимых образцов для каждого метода оценки.

2. Процедуры удаления зуба

  1. Проводите все удаления под стандартной местной анестезией.
  2. Метод A: Традиционная экстракция (контрольная группа)
    1. Проведите отделение десен вокруг шеи зуба.
    2. Разместите зубные щипцы в шейной области коронки.
    3. Прикладывайте вращательные усилия, пока зуб не будет расшатлен. Удалите зуб из альвеолярной лунки с помощью щипцей.
  3. Метод B: Минимально инвазивная экстракция (инфарктивная группа)
    1. Проведите отделение десна.
      ВНИМАНИЕ: Обращайтесь с периотомом аккуратно, чтобы избежать повреждений мягких тканей или поломки инструмента.
    2. Вставьте периотом в пространство PDL как можно глубже, достигая не менее двух третей длины корня.
    3. Окружной разрез волокон PDL вокруг корня с помощью периотома. Ослабь зуб.
    4. Вертикально вытащите зуб из альвеолярной лунки с помощью зубных щипцов.

3. Подготовка образца и окрашивание

  1. Сразу после удаления прополосните зубы стерильным физиологическим раствором в течение 10 минут, чтобы удалить кровь и остатки.
    ВНИМАНИЕ: Толуидин синий — опасное химическое вещество. При обращении носите соответствующие средства индивидуальной защиты (перчатки, очки).
  2. Окрашивайте поверхность корня, погружая зуб в раствор толуидина синего 0,1% (приготовленный в фосфатно-буферном физиологическом растворе, PBS) на 40 минут, чтобы визуализировать ткань PDL.
  3. Прополосните физиологическим раствором 10 минут, чтобы удалить краситель, и аккуратно высушите поверхность феном трёхсторонним шприцом, чтобы удалить лишнюю влагу.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Ожидается, что корневая поверхность будет иметь однородный сине-фиолетовый оттенок, тогда как открытый цемент должен оставаться неокрашенным, выглядя светло-бежевым.

4. 3D цифровое сканирование

  1. Калибруйте внутриоральный цифровой сканер в соответствии с инструкциями производителя для обеспечения точности 0,02 мм.
  2. Закрепите коронку зуба гемостатическими щипцами, чтобы не мешать обзору корня.
  3. Сканируйте всю корневую поверхность при стандартных условиях сканирования. Выполните дополнительное сканирование коронки, чтобы завершить 3D-модель.
  4. Используйте проприетарное программное обеспечение сканера для экспорта цифровых сканированных данных в виде высококачественного 3D-объектного файла (OBJ) и соответствующего пакета данных; изображение текстуры сохраняется в формате JPG.
    ПРИМЕЧАНИЕ: В живом просмотре сканирования должна отображаться непрерывная, высокоплотная сетка без отверстий или артефактов на поверхности корня. Изображение текстуры должно чётко отличать синие окрашенные области от неокрашенной корневой поверхности.

5. 3D реконструкции модели и количественный анализ

  1. Предварительная обработка изображений
    1. Калибровка порога
      1. Импортируйте текстурную карту JPG в программное обеспечение для редактирования изображений. Преобразите изображение в 8-битные оттенки серого.
      2. Откройте инструмент Threshold (Image > Adjust > Threshold) и проверьте гистограмму, чтобы записать минимальное значение серого, охватывающее все пиксели PDL с синим окрашением. Определите минимальный порог оттенков серого с помощью трёх независимых наблюдателей.
    2. Импортируйте оригинальную текстурную карту JPG в программное обеспечение для редактирования изображений. Перейдите к выбору > цветовой диапазон. Выберите режим Тени и установите Диапазон на 65 и Допуск на 20% (калибровка из пороговых данных 5.1.1).
      ПРИМЕЧАНИЕ: Убедитесь, что все области PDL с синим окрашением полностью выделены и не включена незапятнанная корневая поверхность.
    3. Скопируйте выбранные области с синим окрашением и вставьте их на новый белый слой, чтобы создать двоичную маску (синюю для PDL, белую для голого корня). Сохраните обработанное изображение текстуры, чтобы перезаписать исходный JPG-файл.
  2. Количественное измерение
    1. Импортируйте обработанную 3D-модель в программное обеспечение обратного инжиниринга.
    2. Используйте Polygons > Trim для определения области интереса (ROI), исключая десневые и периапикальные ткани. Установите верхнюю границу ROI на 2 мм ниже узла цементоэмали (CEJ). Исключите апикальные 3 мм из анализа.
    3. Выберите «улучшенные синие регионы» в рамках ROI. После отбора остаточная ткань PDL подчёркивает красным цветом.
    4. Перейдите в раздел Анализ > Вычислить > вычислить площадь вычисления, чтобы вычислить общую площадь поверхности ROI и площадь поверхности синих областей (остаточный PDL).
    5. Рассчитайте процент покрытия PDL с помощью уравнения 1:
      Покрытие PDL (%) = (площадь остаточного PDL/общая площадь ROI) x 100
  3. Визуализация
    1. Сделайте изображения четырёх корневых поверхностей (щечной, язычной, мезиальной и дистальной), перпендикулярных оси зуба, для детальной визуальной оценки.

6. Биологическая валидация (анализ жизнеспособности клеток)

ПРИМЕЧАНИЕ: В этом разделе описываются этапы валидации, выполняемые на подмножестве выборок (n = 8 на группу) для подтверждения цифрового анализа.

  1. Сразу после удаления зубы поместите в стерильную центрифугную трубку с предварительно нагретой (37 °C) культурной средой.
  2. Транспортируйте образцы в лабораторию в ледяном ящике при 4°C в течение 1 часа. Используйте Modified Eagle Medium от Dulbecco, дополненную сывороткой плода 10% бычьей крупной рогатой скоты, 100 U/mL пенициллина и 100 мкг/мл стрептомицина для транспортировки образцов и тестирования жизнеспособности клеток.
  3. Сразу после прибытия прополощите зубы стерильным фосфат-буферным физиологическим раствором (PBS) в шкафу для биобезопасности.
  4. Аккуратно соскребайте ткань PDL с центральной трети корня (ROI определяется градуированным пародонтальным зондом) стерильным лезвием скальпеля при комнатной температуре в течение 10 минут после прибытия для максимизации жизнеспособности клетки.
  5. Переварить собранную ткань с добавлением 0,25% трипсина-ЭДТА в течение 30 минут. Центрифугуйте суспензию ячейки при 120 × г в течение 5 минут при комнатной температуре (22–25 °C), чтобы получить осадок, содержащий ячейку.
    ПРИМЕЧАНИЕ: После центрифугирования на дне трубки должна образоваться заметная белая гранула. Если гранулы не обнаружены, образец следует повторно центрифугировать при 120 × г на дополнительную 1 минуту.
  6. Суспензировать осадок в смеси раствора 600 мкл Cell Counting Kit-8 (CCK-8) и среды в соотношении 1:10 (v/v), приготовленной согласно инструкциям производителя.
  7. Аликвот этой подвески с мощностью 200 мкл на скважину в пластину на 96 лунок (3 технических репликации на образец). Инкубировать пластину при 37°C в увлажнённом инкубаторе с 5%CO2 в течение 3 часов.
  8. Пересадите 50 мкл супернатанта из каждой скважины в новую пластину с 96 лунками.
  9. Измерьте поглощение (оптическую плотность, OD) при 450 нм с помощью считывателя микропластин. Запишите средние значения OD для статистического сравнения.
    ВНИМАНИЕ: (i) Собирать раствор для окрашивания толуидина синим и промывать отходы как опасные химические отходы и утилизировать их в соответствии с институциональными рекомендациями по химической безопасности; (ii) Рассматривать ткани PDL, использованные скальпели и отходы клеточных культур как биологически опасные отходы (уровень биобезопасности 1) и автоклавировать или сжигать их в соответствии с институциональными протоколами биобезопасности; (iii) Выбросить СИЗ (перчатки, наконечники пипеток, бумажные полотенца) в специальные контейнеры для биологической опасности.

7. Статистический анализ и методологическая валидация

  1. Сбор данных: Собрать количественные данные, включая общую площадь корней (2 мм), общую площадь окрашения (2 мм) по результатам 3D-анализа, процент покрытия PDL (%) и значения OD из биологического анализа.
  2. Тест нормальности: Оценить распределение данных по нормальности с помощью теста Шапиро-Уилка.
  3. Сравнение групп:
    1. Сравните показатели покрытия PDL и OD между группами MI и контрольной группами.
    2. Используйте непарный t-тест Студента для нормально распределенных данных или тест Манна-Уитни U для ненормально распределённых данных.
    3. Вычислите размер эффекта (Коэна d), чтобы определить величину разницы.
  4. Методологический анализ надёжности:
    1. Проведите линейный регрессионный анализ с «Площадью поверхности корня» в качестве независимой переменной и «Покрытием PDL» как зависимой переменной.
    2. Рассчитайте коэффициент корреляции Пирсона (r), чтобы оценить, смещён ли метод измерения по размеру зуба. Незначимая корреляция (P > 0,05) указывает на устойчивость.
  5. Анализ надёжности:
    1. Генерируйте скрипичные графики в сочетании с коробочными диаграммами для визуализации вероятностной плотности и характеристик распределения данных.
    2. Сравните форму и концентрацию распределения данных между группами.
  6. Тестирование надёжности внутри и между наблюдателями:
    1. Случайным образом выберите 16 выборок из общего набора данных (по 8 на группу) для оценки надёжности.
    2. Для повторяемости внутри наблюдателя повторяйте полную процедуру сегментации и измерения на тех же 16 образцах с интервалом в одну неделю, всего два испытания.
    3. Для соглашения между наблюдателями обеспечьте стандартизированное обучение для двух дополнительных независимых наблюдателей по протоколу сегментации.
    4. Пусть все три наблюдателя независимо выполняют определение ROI, пороговое определение цвета и вычисление площади на тех же 16 выборках.
    5. Рассчитайте коэффициент внутриклассовой корреляции ICC(A,1) с 95% доверительными интервалами для количественной оценки абсолютного согласия для сравнений внутри наблюдателей и между наблюдателями. Сообщайте значения ICC >0,90 как отличные, 0,75–0,90 как хорошие, 0,50–0,75 как умеренные и <0,50 как плохие.
    6. Проведите анализ Бланда-Альтмана для всех парных сравнений. Вычислите среднюю разницу (смещение) и 95% пределы согласия (средняя разница +/- 1,96 SD). Незначимый результат парного t-теста (P > 0,05) указывает на незначительное систематическое смещение.
  7. Программное обеспечение: Выполняйте все статистические анализы с использованием соответствующего программного обеспечения. Рассмотрим P < 0,05 как статистически значимым.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Экспериментальный рабочий процесс, установленный в этом исследовании, успешно продемонстрировал неразрушительный протокол количественной оценки остаточного PDL на удалённых зубах. Как указано в экспериментальном дизайне (рисунок 1), протокол интегрировал клинические процедуры экстракции с цифровым получением и биологической валидацией. Применение внутриорального цифрового сканирования, а затем 3D-реверс-инжиниринг, позволило точно восстановить корневую повер...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Успех намеренной реплантации критически зависит от сохранения жизнеспособных клеток PDL на поверхности корня. Хотя методы извлечения инфарктива клинически поддерживаются для снижениятравмы 8,9,10, количественная оценка их биологической пользы для остаточной ткани PDL остаётся сложной задачей из-за отсутствия объективных инструментов оценки. В этом исследовании был установлен proof-of-concept, не...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Все авторы не сообщили о конфликтах интересов.

Благодарности

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Эта работа была поддержана Школой и больницей стоматологии Пекинского университета (грант PKUSSNKP-202107), Ключевой программой сотрудничества в области науки и технологий провинции Шаньси (202204041101041) и Фондом медицины Пекинского университета по развитию научных и технологических инноваций молодых учёных (BMU2022PY005). Благодарим материалы для фотографий от Figdraw (www.figdraw.com).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
96-well plateServicbioCCP-96HМногоячеистый блок для культивирования клеток и измерения оптической плотности
Шафа биобезопасностиThermo Fisher Scientific1300 Series4 A2Биологический шкаф безопасности класса II для стерильных процедур
Набор для подсчета клеток Kit-8 (CCK-8) растворMedChemExpressHY-K0301Реагент для определения жизнеспособности клеток
ЦентрифугаUstc Zonkia Zcientific InstrumentsSC-3610Лабораторная центтрифуга для осадки клеток
Культуральная среда GibcoDMEM 11965Базальная среда для культивирования и инкубации клеток
Стоматологические щипцыJinzhong Surgical instrumentsK0F130/K0F100Стандартный стоматологический инструмент для удаления зубов
Фетальный бычий сывороткаAnhui Kangyuan Biotechnology Co., LtdKY-01003SДобавка сыворотки фетального бычьего сыворотка для культуральной среды
Градуированная пародонтальная зондJinzhong Surgical instrumentsK6F040Помощь в соскребании ПДК из средней трети корня
Гемостатические щипцыJinzhong Surgical instrumentsJ31130Хирургический инструмент, используемый для закрепления зуба во время сканирования
Увлажненный инкубаторThermo Fisher ScientificFormaИнкубатор для культивирования клеток с поддержанием температуры 37°C и 5% CO2
Программное обеспечение для редактирования изображенийAdobe Systems Inc.Adobe Photoshop CC 2018Программное обеспечение для выбора цвета
Программное обеспечение для редактирования изображенийWayne Rasband, National Institutes of HealthImageJ2 v2.14.0Программное обеспечение для порогового значения цвета
Внутриротовой цифровой сканерAidite (Qinhuangdao) Technology Co., Ltd.Aidite CameoОптический сканер для получения 3D-модели
Местный анестетикProduits Dentaires Pierre RollandPrimacaine ArticaineСтоматологическое анестезирующее средство (например, артикаин или лидокаин)
Микроскопический читающий приборBiotekElx808Спектрофотометр для измерения ОП при 450 нм
Пенициллин/стрептомицинGibco15070063Антибиотическая добавка для культуральной среды
ПериотомаCarl MartinLS529PTМалоинвазивный инструмент для извлечения
Программное обеспечение для обратного проектированияGeomagic Inc.Geomagic Studio 2013Программное обеспечение для 3D-моделирования для расчета площади поверхности
Стерильная центрифугальная пробиркаServicbioEP-1500-JПластиковая пробирка для сбора и обработки образцов
Стерильная фосфатно-буферная соль (PBS)Gibco10010Буфер для промывания биологических образцов
Стерильная лезвие скальпеляJiayuan Medical Devices Стерильное лезвие скальпеляЛезвие для соскребания ткани ПДК
Стерильный физиологический растворServicbioG4702-500MLФизиологический раствор для промывания извлеченных зубов
Толуидиновый синийОбщий лабораторный поставщикТолуидиновый синий (0,1%-ный раствор)Биологическая окраска для визуализации периодонта
ТрипсинGibco25200056Ферментативный реагент для расщепления тканей

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Похожие статьи