Получение данных из базы данных TCGA
Данные секвенирования РНК и клиническая информация для когорты пациентов с инвазивной карциномой молочной железы TCGA (TCGA-BRCA) были получены с портала Genomic Data Commons14. Данные RNA-seq, обработанные с помощью рабочего процесса STAR в формате количества транскриптов на миллион (TPM), были извлечены вместе с соответствующими клиническими аннотациями. Образцы RNA-seq, для которых отсутствовала соответствующая клиническая информация, были исключены. Для анализа экспрессии значения TPM были преобразованы по формуле log2(TPM + 1). Экспрессия MPO была извлечена с использованием символа гена MPO и идентификатора гена Ensembl ENSG00000005381.8. Для анализов, требующих разделения на группы с высокой (MPO-high) и низкой (MPO-low) экспрессией, были включены только образцы опухолей TCGA-BRCA, а прилегающие нормальные образцы были исключены из распределения по группам. Образцы опухолей были разделены в соответствии со медианным значением преобразованной экспрессии MPO log2(TPM + 1) среди опухолевых образцов TCGA-BRCA. Образцы с экспрессией MPO больше или равной медиане были отнесены к группе MPO-high, в то время как образцы с экспрессией ниже медианы были отнесены к группе MPO-low. Эта стратегия группировки на основе медианы использовалась для анализа выживаемости, анализа дифференциальной экспрессии, анализа обогащения, группировки по метилированию и сравнения обогащения иммунными клетками, если не указано иное. Клинико-патологические характеристики, включая пол, возраст, этническую принадлежность, патологическую стадию T, гистологическую степень злокачественности, подтип PAM50, патологическую стадию, статус опухоли, а также конечные точки выживаемости, включая общую выживаемость (OS), интервал без прогрессирования (PFI) и специфическую выживаемость (DSS), анализировались с использованием R версии 4.2.1.
Публичный поиск изображений иммуногистохимического анализа
Репрезентативные изображения иммуногистохимического (ИГХ) анализа MPO прилегающей нормальной ткани молочной железы и ткани рака молочной железы использовались в качестве качественных эталонов уровня белка. Эти изображения не включались в количественный морфометрический или статистический анализ. Обведенные области указывают на участки, показанные при большем увеличении. Масштабные отрезки соответствуют 100 µm на изображениях с увеличением 20× и 50 µm на изображениях с увеличением 40×.
Анализ корреляции экспрессии
Набор данных TCGA-BRCA использовался для изучения генов, экспрессия которых ковариирует с экспрессией MPO при раке молочной железы. Были рассчитаны общегеномные коэффициенты корреляции Пирсона между MPO и белок-кодирующими генами, и для визуализации были выбраны 30 наиболее положительно и 30 наиболее отрицательно коррелирующих генов. Для корреляционного анализа с участием нескольких тестируемых генов номинальные значения p были скорректированы с использованием метода контроля ложноположительных результатов Бенджамини-Хохберга. Сеть белок-белковых взаимодействий (PPI), ассоциированная с MPO, была построена с использованием базы данных STRING (инструмент поиска взаимодействующих генов/белков), при этом для визуализации были оставлены пары белков, показатели взаимодействия которых превышали 0,4015.
Анализ функционального обогащения
Дифференциально экспрессируемые гены (DEGs) были идентифицированы путем сравнения групп опухолей TCGA-BRCA с высоким и низким уровнем MPO с использованием пороговых значений |log2FC| > 1 и скорректированного по методу Бенджамини-Хохберга значения p < 0,05. Функциональный анализ обогащения DEGs был выполнен с помощью пакета R clusterProfiler версии 4.4.4, включая анализ биологических процессов, клеточных компонентов и молекулярных функций генной онтологии (GO), а также анализ путей Киотской энциклопедии генов и геномов (KEGG)16,17,18,19,20. Обогащенные термины GO и KEGG считались значимыми при скорректированном значении p < 0,05.
Анализ обогащения наборов генов (GSEA) проводили с использованием предварительно ранжированного списка генов на основе статистики дифференциальной экспрессии между группами с высоким и низким уровнем MPO. Была использована коллекция канонических путей MSigDB C2 c2.cp.all.v2022.1.Hs.symbols.gmt, соответствующая версии MSigDB v2022.1.Hs и содержащая 3 050 наборов генов21,22. Обогащенные термины считались значимыми при значении p-value, скорректированном по методу Бенджамини–Хохберга, < 0.05, FDR q-value < 0.25 и |нормированный показатель обогащения| > 1. Там, где это было применимо, для визуализации значимых обогащенных терминов вычислялись Z-показатели с помощью пакета GOplot.
Анализ обогащения опухолей иммунными клетками
Иммунные и стромальные компоненты в когорте TCGA-BRCA оценивали с помощью алгоритма ESTIMATE, реализованного в пакете R estimate версии 1.0.13. В качестве входных данных использовались данные экспрессии, преобразованные по формуле Log2(TPM + 1); для каждого образца опухоли рассчитывали иммунный показатель (immune score), стромальный показатель (stromal score) и общий показатель ESTIMATE. Для оценки взаимосвязи между экспрессией MPO и расчетными уровнями инфильтрации основных популяций иммунных клеток в когорте TCGA-BRCA, включая B-клетки, CD8+ T-клетки, CD4+ T-клетки, макрофаги, нейтрофилы и дендритные клетки, использовали TIMER/TIMER2.023,24,25. Результаты, полученные с помощью TIMER, интерпретировались как оценки иммунной инфильтрации, полученные из соответствующего онлайн-ресурса. Для анализа обогащения 24 типами иммунных клеток использовали анализ обогащения наборов генов для одного образца (ssGSEA), реализованный в пакете R GSVA версии 1.46.026. Матрица сигнатур иммунных клеток LM22, использованная для деконволюции 22 типов иммунных клеток с помощью CIBERSORT, представлена в Дополнительной таблице 1. Корреляции между экспрессией MPO и показателями обогащения иммунными клетками оценивали с помощью ранговой корреляции Спирмена. Различия в показателях обогащения иммунными клетками между группами опухолей с высоким и низким уровнем экспрессии MPO (разделенными по медиане) сравнивали с помощью суммы рангов Уилкоксона. Для анализов, включающих несколько типов иммунных клеток, значения p корректировали с использованием метода контроля ложных открытий Бенджамини — Хохберга.
Метилирование ДНК гена MPO
Паттерны метилирования ДНК в локусе MPO оценивали с помощью MethSurv. Значения бета-метилирования CpG и ассоциации с выживаемостью для TCGA-BRCA были получены с платформы MethSurv. Визуализировали выбранные CpG-сайты, связанные с MPO, и оценивали их связь с исходами выживаемости, используя результаты анализа выживаемости, предоставленные MethSurv27. Для анализов, включающих несколько CpG-сайтов, p-значения корректировали по всем протестированным CpG-сайтам, связанным с MPO, с использованием метода контроля ложноположительных результатов Бенджамини-Хохберга. Данные анализы метилирования интерпретировали как эксплораторные эпигенетические аннотации.
Построение сети белок-белковых взаимодействий и корреляционный анализ генов, связанных с нейтрофилами
Для изучения связи между MPO и биологией нейтрофилов был проведен систематический сетевой анализ. На основе имеющейся литературы был сформирован набор генов, включающий установленные медиаторы активации нейтрофилов и связанных с ними воспалительных процессов. Полный список генов, связанных с нейтрофилами, представлен в Дополнительной таблице 2. Символы генов были приведены к официальным обозначениям, дубликаты удалены, и доступные гены были сопоставлены с матрицей экспрессии TCGA-BRCA перед проведением анализа STRING/PPI, приоритизацией хаб-генов и анализом корреляции между MPO и хаб-генами. Сеть белок-белковых взаимодействий (PPI) для этих генов была построена с использованием базы данных STRING (версия 11.5) с пороговым значением показателя достоверности взаимодействия средней степени (>0,40). Хаб-гены в этой сети были приоритизированы алгоритмически на основе центральности по степени, которая количественно определяет число прямых взаимодействий на один узел. Для последующего корреляционного анализа были выбраны 20 генов с наивысшими показателями степени.
Затем из транскриптомного набора данных TCGA-BRCA были извлечены профили экспрессии этих хаб-генов и MPO. Связь между MPO и каждым хаб-геном была статистически оценена с помощью ранговой корреляции Спирмена. Для характеристики паттернов корреляции между самими хаб-генами была рассчитана попарная матрица корреляции Спирмена по всем образцам опухоли. Эти корреляционные анализы послужили количественной основой для последующей визуализации, включая леденцовую диаграмму (lollipop plot) корреляций MPO с хаб-генами, а также хордовую диаграмму/тепловую карту, отображающую паттерны корреляции хаб-генов.
Прогнозирование вышестоящих транскрипционных факторов и miRNA мишеней для MPO
Для прогнозирования целевых TF для MPO использовались база данных KnockTF (https://bio.liclab.net/KnockTF/index.php)28,29, база данных ChIP (http://chip-atlas.org/)30,31 и база данных GTRD32,33 (https://gtrd.biouml.org/#!). Кроме того, для прогнозирования потенциальных сайтов связывания miRNA, нацеленных на MPO, использовалась база данных TargetScan (https://www.targetscan.org/vert_80/). Диаграммы Венна были построены с помощью веб-сайта MicroBioinformatics (https://www.bioinformatics.com.cn/static/others/jvenn/example.html)34.
Одноклеточный анализ MPO
Конкретный набор данных GSE161529 был получен из базы данных Gene Expression Omnibus (GEO). При предварительной обработке данных сначала была выполнена фильтрация на уровне клеток для исключения клеток низкого качества, соответствующих любому из следующих критериев: экспрессия митохондриальных генов более 25%, общее количество уникальных молекулярных идентификаторов (UMI) менее 5000 или обнаружение менее 2500 генов. Впоследствии была проведена коррекция загрязнения окружающей РНК и технических батч-эффектов35. Для снижения размерности с целью оценки сходства клеток был выполнен анализ главных компонентов (PCA), за которым следовал UMAP для кластеризации и визуализации клеток. Затем, на основании типичных маркерных генов клеток, различные кластеры были аннотированы по типам клеток11. Набор генов, связанных с MPO и используемый для расчета показателей сигнатуры отдельных клеток, представлен в Дополнительном файле 1. Перед расчетом символы генов были приведены к официальным символам генов, дубликаты были удалены, а доступные гены были пересечены с матрицей экспрессии GSE161529. Для расчета показателей, связанных с MPO, для каждой отдельной клетки использовались AUCell, Seurat AddModuleScore и ssGSEA. Показатели, полученные тремя методами, были нормализованы по Z-показателю, масштабированы до сопоставимого диапазона и объединены для создания композитного показателя, связанного с MPO, для последующего описательного анализа. Были изучены сети межклеточных взаимодействий для сравнения предполагаемых паттернов коммуникации лиганд-рецептор с участием эпителиальных опухолевых клеток, стратифицированных по сигналу, связанному с MPO, и различных типов клеток-партнеров. Эти результаты интерпретировались как описательные паттерны коммуникации, а не как доказательство того, что экспрессирующие MPO клетки непосредственно опосредуют межклеточную коммуникацию.
Виртуальный нокдаун в отдельных клетках MPO и анализ обогащения путей с использованием scTenifoldKnk
Виртуальный нокдаун MPO на уровне отдельных клеток был выполнен путем интеграции Seurat и scTenifoldKnk. После стандартного контроля качества (200–6 000 генов на клетку; доля митохондриальных генов < 10%) данные подвергли логарифмической нормализации, и 2 000 высоковариабельных генов были отобраны для снижения размерности и кластеризации. Для обогащения контекстов, релевантных MPO, были сохранены клетки, вошедшие в топ-50% по показателям модуля генов миелоидных клеток/нейтрофилов. Из этих клеток был определен подмножество «окрестности MPO» путем расширения от MPO-положительных стартовых клеток с использованием k = 40 ближайших соседей в пространстве PCA. Данное расширенное подмножество не рассматривалось как чисто MPO-положительная популяция, и на этапе расширения по методу KNN не делалось никаких выводов о пропорциях типов клеток. Это подмножество было подвергнуто анализу виртуального нокдауна с помощью scTenifoldKnk, при этом в качестве набора генов использовалось объединение высоковариабельных генов и MPO (экспрессируемого в ≥25 клетках). Были выявлены значимо измененные гены (FDR < 0,05, с поправкой Бенджамини-Хохберга). Полученные гены были дополнительно проанализированы на функциональное обогащение в категориях биологических процессов GO и путях KEGG (q < 0,05).
Поиск взаимосвязей между лекарственными средствами и генами и ADMET-аннотирование
Для получения предварительных записей о взаимодействиях «лекарственное средство — ген» или «химическое вещество — ген», связанных с MPO, был использован поиск в базе данных DGIdb. Поскольку списки взаимодействий из баз данных могут содержать записи, подтвержденные гетерогенными типами доказательств, и могут не соответствовать напрямую клинически применимым терапевтическим агентам, найденные соединения рассматривались как предварительные аннотации, а не как приоритетные кандидаты для лечения. Впоследствии для обобщения прогнозируемых физико-химических, фармакокинетических и токсикологических свойств использовались SwissADME и ADMETlab. Эти аннотации, полученные in silico, были использованы для обеспечения предварительного контекста интерпретации на уровне соединений и для подчеркивания необходимости дальнейшего фармакологического, токсикологического и клинического анализа перед рассмотрением какой-либо терапевтической значимости36.