Паттерны экспрессии MPO и предварительный анализ ассоциаций с выживаемостью при раке груди
Для описания паттернов экспрессии MPO в наборах данных по раку мы проанализировали данные RNA-seq MPO из пан-ракового набора данных TCGA и обнаружили более низкую экспрессию MPO в опухолевых тканях при уротелиальной карциноме мочевого пузыря (BLCA), инвазивной карциноме молочной железы (BRCA), мультиформной глиобластоме (GBM), плоскоклеточном раке головы и шеи (HNSC), хромофобном раке почки (KICH), гепатоцеллюлярной карциноме печени (LIHC), аденокарциноме легкого (LUAD), плоскоклеточном раке легкого (LUSC), аденокарциноме поджелудочной железы (PAAD), аденокарциноме предстательной железы (PRAD) и карциноме щитовидной железы (THCA), а также более высокую экспрессию MPO при аденокарциноме толстой кишки (COAD), папиллярно-почечно-клеточном раке (KIRP) и в других тканях (Рисунок 2A). Затем мы оценили связь между экспрессией MPO и клиническими исходами для каждого типа рака. В когорте TCGA-BRCA как при непарном, так и при парном сравнении наблюдалась более низкая экспрессия MPO в опухолевой ткани, чем в нормальной/прилегающей ткани (Рисунок 2B,C). После стратификации опухолевых образцов TCGA-BRCA с использованием медианного порога экспрессии MPO в опухоли анализ Каплана-Мейера показал, что пациенты с более высокой экспрессией MPO имели более длительный интервал до прогрессирования (отношение рисков (HR) = 0.67, p = 0.028) (Рисунок 2D). Общая выживаемость (OS) (p = 0.296; Дополнительный рисунок 1A) и специфическая выживаемость (DSS) (p = 0.18; Дополнительный рисунок 1B) не были статистически значимыми. ROC-кривая «опухоль против нормы» предполагала разделение между группами тканей в этом наборе данных (Рисунок 2E), однако этот анализ не следует интерпретировать как клиническую диагностическую валидацию. На эту исследовательскую дискриминацию могут влиять источник нормальных образцов, пакетные эффекты, чистота опухоли и различия в составе тканей. Экспрессия MPO также была связана с патологической стадией T (Рисунок 2F) и распределением подтипов PAM50 (Рисунок 2G). В качестве качественных референсов на белковом уровне были представлены репрезентативные изображения иммуногистохимического (ИГХ) анализа MPO прилегающей нормальной ткани молочной железы и ткани рака молочной железы (Рисунок 2H). Обведенные рамками области указывают на участки, показанные при большем увеличении. Обзорные изображения с увеличением 20× включают масштабные отрезки 100 µm, в то время как изображения с большим увеличением 40× включают масштабные отрезки 50 µm.
Корреляционный анализ и анализ обогащения MPO в когорте TCGA-BRCA
Анализ корреляции Пирсона позволил выявить 30 наиболее значимых генов, положительно коррелирующих с MPO, которые демонстрировали согласованное повышение экспрессии вдоль градиента экспрессии MPO (Рисунок 3A), в то время как 30 наиболее значимых отрицательно коррелирующих генов демонстрировали обратный паттерн экспрессии (Рисунок 3B). На уровне сигнальных путей экспрессия MPO была значимо и положительно связана с несколькими показателями опухолевых сигнатур, включая сигнатуру воспалительного ответа (r = 0.41; Рисунок 3C), маркеры EMT (r = 0.264; Рисунок 3D) и показатель набора генов, связанных с активными формами кислорода (ROS) (r = 0.415; Рисунок 3E), что свидетельствует о том, что экспрессия MPO коррелирует с воспалительными/окислительными и мезенхимальными транскрипционными состояниями в когорте TCGA-BRCA.
Неконтролируемая кластеризация генов, ассоциированных с MPO, позволила дополнительно стратифицировать опухоли по паттернам экспрессии, которые соответствовали клиническим аннотациям, включая патологическую стадию T и внутренние подтипы PAM50 (Рисунок 3F). Чтобы исследовать возможные связи между генами, ассоциированными с MPO, мы построили сеть белок-белковых взаимодействий (PPI) с помощью STRING, которая выявила взаимосвязанный модуль из нескольких генов, коррелирующих с MPO (Рисунок 3G). В сети PPI гены ESR1, FOXA1, XBP1, GATA3 и KRT18 обладали высокой сетевой связностью внутри этого модуля, полученного на основе корреляции. Эти результаты позволяют определить гены, экспрессия которых коварирует с экспрессией MPO, но не устанавливают патогенез, связанный с MPO, или направление этих связей. Анализ дифференциальной экспрессии между группами с высоким и низким уровнем MPO выявил транскриптомные различия, обобщенные на графике «вулкан» (Рисунок 3H). Всего было выявлено 1159 геннов с повышенной экспрессией и 854 с пониженной экспрессией, что послужило базой для последующего анализа обогащения.
Далее мы исследовали функциональную значимость дифференциально экспрессируемых генов (ДЭГ) между группами с высоким и низким уровнем MPO с помощью пакета clusterProfiler в R. Анализ обогащения по генной онтологии (GO) показал, что эти ДЭГ преимущественно участвуют в иммуно-связанных биологических процессах, включая регуляцию сигналинга клеточных поверхностных рецепторов, связанных с иммунным ответом, и лимфоцитарный иммунитет; обогащение также наблюдалось в таких клеточных компонентах, как Т-клеточный рецепторный комплекс, и в молекулярных функциях, связанных с активаторной активностью рецепторов (Рисунок 4A). Соответственно, анализ путей KEGG выявил пути, связанные с иммунитетом и воспалением, включая взаимодействие цитокин–цитокиновый рецептор, хемокиновый сигналинг, сигналинг Т-клеточного рецептора, цитотоксичность, опосредованную NK-клетками, дифференцировку Th1/Th2 и Th17, сигналинг NF-κB, первичный иммунодефицит и кишечную иммунную сеть для продукции IgA (Рисунок 4B).
Для дальнейшей интеграции направленности экспрессии с функциональными терминами использовался график GO для расчета Z-показателей на уровне терминов на основе значений DEG |log2FC|, что вновь выявило иммунные обогащенные транскрипционные программы, такие как гуморальный иммунный ответ, лейкоцитарный/лимфоцитарный иммунитет, активация иммунного ответа и передача сигналов (Рисунок 4C). Анализ обогащения наборов генов (GSEA) на основе ранжированного списка генов также показал обогащение путей иммунной системы, включая адаптивную иммунную систему, взаимодействие цитокинов с цитокиновыми рецепторами и дегрануляцию нейтрофилов (Рисунок 4D–G). Поскольку MPO является геном, ассоциированным с миелоидными клетками/нейтрофилами, данные результаты интерпретируются как свидетельство того, что образцы с высоким уровнем MPO демонстрируют более сильные иммунные/миелоидные транскрипционные сигналы, а не как доказательство того, что сам MPO перестраивает иммунное микроокружение.
Корреляция между экспрессией MPO и инфильтрацией иммунных клеток при раке молочной железы
Мы оценили взаимосвязь между экспрессией MPO и характеристиками микроокружения опухоли в когорте TCGA-BRCA. Применение алгоритма ESTIMATE выявило значимые положительные корреляции между экспрессией MPO и баллом ESTIMATE (R = 0.347, p < 0.001), иммунным баллом (R = 0.361, p < 0.001) и стромальным баллом (R = 0.232, p < 0.001) (Рисунок 5A). Распределение этих баллов по образцам показано на Рисунке 5B. Анализ с использованием ресурса TIMER/TIMER2.0 показал, что экспрессия MPO была связана с расчетными уровнями инфильтрации основных популяций иммунных клеток, включая B-клетки, CD8+ T-клетки, нейтрофилы, CD4+ T-клетки, макрофаги и дендритные клетки в когорте TCGA-BRCA (Рисунок 5C). Этот характер ассоциации был дополнительно оценен с помощью баллов обогащения иммунных клеток на основе ssGSEA для 24 типов иммунных клеток. После коррекции ложноположительных результатов по методу Бенджамини–Хохберга экспрессия MPO продемонстрировала положительную связь с несколькими баллами обогащения иммунных клеток, включая T-клетки, B-клетки, цитотоксические клетки, подмножества дендритных клеток, макрофаги, подмножества T-хелперов, регуляторные T-клетки, CD8+ T-клетки, NK-клетки, тучные клетки и нейтрофилы (Рисунок 5D). Эти результаты интерпретируются как ассоциации с иммунным составом, а не как доказательство того, что MPO напрямую контролирует инфильтрацию иммунных клеток. Для визуализации паттернов обогащения иммунных клеток на уровне образцов в когорте TCGA-BRCA была построена тепловая карта (Рисунок 5E). Затем мы сравнили баллы обогащения иммунных клеток, рассчитанные методом ssGSEA, между группами опухолей с высокой и низкой экспрессией MPO, определенными по медиане. Баллы обогащения нескольких типов иммунных клеток различались между двумя группами, включая активированные дендритные клетки (aDC), B-клетки, CD8+ T-клетки, цитотоксические клетки, нейтрофилы, T-клетки, Tregs, Th1-клетки, Th2-клетки, Th17-клетки, γδ T-клетки, фолликулярные Т-хелперы (TFH), клетки с высоковариабельными генами (HVG), T-клетки эффекторной памяти, T-клетки центральной памяти и T-хелперы (Рисунок 5F,G). Кроме того, была проведена деконволюция на основе CIBERSORT с использованием сигнатурной матрицы LM22 для оценки относительных фракций 22 типов иммунных клеток; полученные паттерны состава иммунных клеток представлены на Рисунке 5H.
Анализ метилирования ДНК MPO в когорте TCGA-BRCA
Используя тот же пороговый уровень медианной экспрессии MPO в опухоли, образцы TCGA-BRCA были разделены на группы с высокой и низкой экспрессией MPO, и для каждой группы была визуализирована картина метилирования ДНК (Рисунок 6A). Выбранные сайты CpG в локусе MPO продемонстрировали связь с выживаемостью в анализе MethSurv, включая cg22331200, cg14619064 и cg11151395 (Рисунок 6B–G). Эти результаты, связанные с метилированием, были интерпретированы как предварительные эпигенетические аннотации и требуют независимой валидации, прежде чем можно будет сделать прогностические или механистические выводы.
Связь между экспрессией MPO и генными сетями, связанными с нейтрофилами, при раке молочной железы
Для изучения связи между экспрессией MPO и генами, связанными с нейтрофилами, была использована когорта TCGA-BRCA. На основе базы данных STRING была построена сеть белок-белковых взаимодействий (PPI) для генов, ассоциированных с нейтрофилами, и приоритетные хаб-гены были определены в соответствии с топологией сети (Рисунок 7A). Впоследствии была проведена оценка корреляции 20 основных хаб-генов с экспрессией MPO. Как показано на леденцовой диаграмме (lollipop plot), MPO демонстрировала преимущественно положительную корреляцию с множеством медиаторов, связанных с нейтрофилами, при этом более сильные связи наблюдались для компонентов хемокинового/врожденного иммунного сигналинга, таких как CCL5, CCL2 и TLR2, а также для TLR4, CXCR4, TNF и MMP9 (Рисунок 7B).
Для дальнейшей характеристики паттерна корегуляции этих хаб-генов мы визуализировали их попарные связи с помощью хордовой диаграммы и тепловой карты корреляций; результаты выявили обширные положительные межгенные корреляции во всем хаб-модуле, что согласуется с координированной воспалительной/нейтрофильной транскрипционной программой (Рисунок 7C,D). В совокупности эти результаты указывают на то, что более высокая экспрессия MPO сопровождается координированной экспрессией сети нейтрофильных генов при раке молочной железы.
Аннотация потенциальных факторов транскрипции для MPO
Для поиска потенциальных факторов транскрипции, связанных с MPO, были проанализированы и сопоставлены данные общедоступных ресурсов по факторам транскрипции, включая KnockTF, ChIP-Atlas и GTRD. В дальнейшем список потенциальных факторов транскрипции был уточнен с помощью сетевой приоритизации и корреляционного анализа. Графическое резюме представлено на Дополнительный рисунок 2, полные табличные результаты представлены в Дополнительный файл 2Поскольку в этих базах данных интегрированы данные из гетерогенных экспериментальных контекстов, пересечение баз данных и степень узла сети использовались только для аннотации и приоритизации кандидатов. Эти результаты не интерпретировались как функциональное доказательство прямой транскрипционной регуляции MPO при раке молочной железы. Таким образом, факторы-кандидаты, включая MYC, представлены в качестве дополнительных исследовательских аннотаций, а не как валидированные вышестоящие регуляторы.
Кластеризация отдельных клеток и описательный анализ межклеточного взаимодействия, стратифицированный по сигналу MPO
Для аннотирования типов клеток мы сначала провели анализ экспрессии, специфичный для каждого кластера, на основе канонических маркеров каждой линии. Средние уровни экспрессии и процент клеток, экспрессирующих эти ключевые гены в разных кластерах, представлены на графике, что служит основанием для последующей аннотации (Рисунок 8A). Соответственно, аннотированные клеточные кластеры визуализированы на графике однородного многомерного аппроксимированного проецирования (UMAP), где каждая популяция обозначена цветом в соответствии с определенным типом, включая плазмоцитоидные дендритные клетки, эндотелиальные клетки, миоэпителиальные клетки, циклические эпителиальные клетки, плазматические клетки, цитотоксические T-клетки, эпителиальные опухолевые клетки, B-клетки, активированные CD4 T-клетки, моноциты-макрофаги, фибробласты и конвенциональные T-клетки (Рисунок 8B). Тепловая карта отображает уровни экспрессии выбранных генов в клеточных кластерах (C1-C8). Каждая строка соответствует гену, а каждый столбец — клеточному кластеру. Цветовой градиент указывает уровни экспрессии, где красный цвет обозначает высокую экспрессию, а синий — низкую. Левая дендрограмма объединяет гены с похожими паттернами экспрессии (Рисунок 8C). Балл, связанный с MPO, рассчитывался для каждой клетки с использованием набора генов, ассоциированных с MPO, представленного в Дополнительном файле 1. Для расчета баллов на уровне отдельных клеток использовались AUCell, Seurat AddModuleScore и анализ обогащения наборов генов в одной пробе (ssGSEA). Баллы, полученные тремя методами, были нормализованы с помощью Z-показателя, приведены к сопоставимому диапазону и интегрированы для получения композитного балла, связанного с MPO, для последующего описательного анализа (Рисунок 8D).
Данный анализ межклеточного взаимодействия позволил сравнить предполагаемые паттерны коммуникации лиганд–рецептор между группами клеток, стратифицированными по сигналу MPO, включая сеть взаимодействий, тепловые карты паттернов сигнализации, пузырьковую диаграмму исходящей сигнализации и пузырьковую диаграмму входящей сигнализации (Рисунок 8E–H). Поскольку сигнал MPO на уровне отдельных клеток был редким, а наблюдаемое распределение по аннотированным типам клеток могло быть подвержено влиянию выпадения данных (dropout), фоновой РНК, дуплетов и неопределенности аннотации, данные графики коммуникации следует интерпретировать как описательные результаты рабочего процесса. Они не доказывают, что клетки, экспрессирующие MPO, опосредуют или контролируют межклеточную коммуникацию. Детектируемый сигнал MPO наблюдался в ограниченном количестве клеток, включая аннотированные эпителиальные опухолевые клетки и моноциты-макрофаги (Рисунок 8I). Учитывая, что MPO канонически ассоциируется с нейтрофильным/миелоидным линиями, этот паттерн требует подтверждения в независимых наборах данных секвенирования единичных клеток или с помощью ортогональных экспериментальных методов.
Поисковый анализ чувствительности scTenifoldKnk на основе разреженных MPO-положительных клеток
Была выполнена интеграция нескольких образцов 10x Genomics с последующей нормализацией и отбором высоковариабельных генов (HVG), снижением размерности на основе PCA, построением графа k-ближайших соседей и кластеризацией по методу Лувена. Характер экспрессии канонических маркерных генов в кластерах был обобщен с помощью DotPlot, что послужило основой для последующей аннотации типов клеток (Рисунок 9A). Визуализация UMAP продемонстрировала аннотированные популяции одиночных клеток в интегрированном наборе данных (Рисунок 9B). Канонические маркеры линий (например, EPCAM и KRT8/KRT18 для эпителиальных клеток; PTPRC для иммунных клеток; MS4A1 для B-клеток; LST1/S100A8/S100A9 для миелоидных клеток; PECAM1 для эндотелиальных клеток и COL1A1 для линий фибробластов/гладких мышц) показали кластерно-специфические паттерны экспрессии, подтверждая аннотацию типов клеток (Рисунок 9C). Стратифицированные по образцам накопительные столбчатые диаграммы показали, что каждый образец содержал несколько кластеров с ограниченной общей вариабельностью между партиями (Рисунок 9D).
Экспрессия MPO в наборе данных одноклеточного секвенирования была относительно низкой: изначально было выявлено всего 85 MPO-положительных клеток (Рисунок 9E). Из-за этого ограниченного количества расширение окрестностей на основе метода KNN использовалось только для определения локального подмножества MPO-окрестности для эксплораторного анализа чувствительности. Данное расширенное подмножество не следует интерпретировать как чистую MPO-положительную популяцию, поскольку оно может включать соседние клетки с низким или необнаружимым уровнем экспрессии MPO. В этом подмножестве MPO-окрестности с помощью scTenifoldKnk был проведен виртуальный нокдаун MPO в качестве вычислительного анализа чувствительности. Полученный график вулкана, анализ смещения многообразия, визуализация выравнивания многообразий, результаты обогащения GO/KEGG и гены с наибольшим смещением (Рисунок 9F-N) выявили потенциальные транскрипционные программы, связанные с презентацией антигена, активацией миелоидных клеток/лимфоцитов, продукцией цитокинов и путями, связанными с фагосомами. Эти результаты следует интерпретировать как данные эксплораторного анализа транскрипционной чувствительности, а не как прямое доказательство того, что MPO механистически регулирует эти пути при раке молочной железы. Для подтверждения этих наблюдений потребуются независимые наборы данных одноклеточного секвенирования и ортогональная экспериментальная валидация, такая как иммуногистохимия, проточная цитометрия, qPCR или функциональные тесты.
Поисковое извлечение взаимодействий между лекарственными препаратами и генами и ADMET-аннотирование
В качестве дополнительного разведывательного расширения анализа, сосредоточенного на MPO, информация о взаимодействиях «лекарство — ген» была получена из базы данных DGIdb. Графическое резюме представлено на Дополнительном рисунке 3, а результаты на уровне соединений приведены в Дополнительной таблице 3. Запрос к DGIdb вернул неоднородный набор химических записей, связанных с MPO, включая соединения с ограниченной клинической обоснованностью или неблагоприятными токсикологическими профилями. Следовательно, данные соединения из базы данных не рассматривались как терапевтические кандидаты для лечения рака молочной железы на основе настоящего анализа. Информация, связанная с ADMET, была обобщена для предварительной аннотации прогнозируемых физико-химических, фармакокинетических и токсикологических свойств. Поиск соединений в базах данных и ADMET-аннотирование не эквивалентны клинически курируемой приоритезации лекарственных средств. Таким образом, эти результаты служат лишь химическими аннотациями на уровне скрининга и иллюстрируют необходимость тщательной фармакологической, токсикологической и клинической фильтрации, прежде чем какое-либо соединение может быть рассмотрено для терапевтического исследования. Основные выводы данного исследования сосредоточены на связи между экспрессией MPO и иммунными/миелоидными транскрипционными особенностями.
ДОСТУПНОСТЬ ДАННЫХ:
Транскриптомные и клинические данные TCGA-BRCA были получены с портала Genomic Data Commons (https://portal.gdc.cancer.gov; загружены 26 августа 2025 г.; выпуск/версия данных 202208). Набор данных единичных клеток GSE161529 был получен из базы Gene Expression Omnibus (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo/query/acc.cgi?acc=GSE161529). В данном исследовании новые данные секвенирования не генерировались. Скрипты для анализа доступны в открытом доступе по адресу https://github.com/tengfeitcm/MPO.

Рисунок 1: Схема процесса сбора и анализа данных. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть этот рисунок в большем размере.

Рисунок 2: Паттерны экспрессии MPO и предварительный анализ ассоциаций с выживаемостью при раке молочной железы. (A) Уровни экспрессии MPO были проанализированы в 33 различных типах рака и прилегающих нормальных тканях с использованием базы данных TCGA. (B) Для анализа экспрессии мРНК MPO при раке молочной железы и в нормальных тканях из набора данных TCGA-BRCA были отобраны непарные образцы. (C) Для анализа экспрессии мРНК MPO при раке молочной железы и в нормальных тканях из набора данных TCGA-BRCA были отобраны парные образцы. (D) Анализ Каплана-Мейера PFI у пациентов, стратифицированных по медианному порогу экспрессии MPO в опухоли в когорте TCGA-BRCA. (E) Исследовательская ROC-кривая, оценивающая дифференциацию опухоли и нормальной ткани на основе экспрессии MPO в проанализированном общедоступном транскриптомном наборе данных. (F) Экспрессия MPO на различных патологических стадиях T. (G) Экспрессия MPO в различных молекулярных подтипах PAM50 с указанием меток подтипов. (H) Репрезентативные изображения иммуногистохимического (ИГХ) окрашивания на MPO в прилегающей нормальной ткани молочной железы и в ткани рака молочной железы. Областями в рамках отмечены зоны, показанные при большем увеличении. Обзорные изображения при 20× содержат масштабные отрезки 100 µm, а изображения при большем увеличении 40× содержат масштабные отрезки 50 µm. Данные изображения представлены в качестве качественных ориентиров уровня белка и не использовались для количественного морфометрического или статистического анализа. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Рисунок 3: Корреляционный анализ и анализ дифференциальной экспрессии, связанных с MPO, при раке молочной железы. (A) Топ-30 кодирующих генов, положительно коррелирующих с экспрессией MPO на уровне мРНК, на основе коэффициентов корреляции Пирсона по базе данных TCGA. (B) Топ-30 кодирующих генов, отрицательно коррелирующих с экспрессией MPO на уровне мРНК, на основе коэффициентов корреляции Пирсона. (C) Диаграммы рассеяния, иллюстрирующие корреляции Спирмена между MPO и генами, экспрессия которых повышена при воспалительном ответе. (D) Диаграммы рассеяния, иллюстрирующие корреляции Спирмена между MPO и генами, экспрессия которых повышена при воздействии маркеров ЭМП. (E) Диаграммы рассеяния, иллюстрирующие корреляции Спирмена между MPO и генами, экспрессия которых повышена при воздействии АФК. (F) Тепловая карта кластеров генов, связанных с MPO, на основе клинической значимости (стадия T и PAM50). (G) Сеть PPI, предсказанная с использованием базы данных STRING для белков, связанных с MPO. (H) Вулкан-плот дифференциально экспрессируемых генов между группами опухолей с высокой и низкой экспрессией MPO (определенной по медиане) в когорте TCGA-BRCA. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Рисунок 4: Анализ обогащения MPO при раке молочной железы. (A) Анализ обогащения по Gene Ontology для 2 013 дифференциально экспрессируемых генов между группами с высоким и низким уровнем MPO. (B) Анализ обогащения путей Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes для 2 013 дифференциально экспрессируемых генов. (C) Комбинированная визуализация обогащения Gene Ontology, объединяющая обогащенные термины с направлением дифференциальной экспрессии и значениями |log2FC|. (D) Репрезентативный график обогащения GSEA для набора иммуносвязанных генов, ассоциированных с MPO; название набора генов, нормализованный показатель обогащения (NES) и q-значение FDR указаны на панели. (E) Репрезентативный график обогащения GSEA для дополнительного набора иммуносвязанных генов, ассоциированных с MPO; название набора генов, нормализованный показатель обогащения (NES) и q-значение FDR указаны на панели. (F) Репрезентативный график обогащения GSEA для дополнительного набора иммуносвязанных генов, ассоциированных с MPO; название набора генов, нормализованный показатель обогащения (NES) и q-значение FDR указаны на панели. (G) Репрезентативный график обогащения GSEA для дополнительного набора иммуносвязанных генов, ассоциированных с MPO; название набора генов, нормализованный показатель обогащения (NES) и q-значение FDR указаны на панели. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Рисунок 5: Корреляция между обогащением иммунными клетками и экспрессией MPO при раке молочной железы. (A) Диаграммы рассеяния, показывающие корреляцию между экспрессией MPO и показателями ESTIMATE score, immune score и stromal score. (B) Диаграммы размаха (box plots), показывающие различия в ESTIMATE score, immune score и stromal score между группами опухолей с высокой и низкой экспрессией MPO, определенными по медиане. (C) Анализ на основе TIMER/TIMER2.0, показывающий связь между экспрессией MPO и расчетной инфильтрацией основных популяций иммунных клеток. (D) Диаграмма «леденец» (lollipop plot), показывающая корреляции Спирмена между экспрессией MPO и показателями обогащения, рассчитанными с помощью ssGSEA для 24 типов иммунных клеток. P-значения для множественных корреляций иммунных клеток были скорректированы с использованием метода контролируемого уровня ложноположительных результатов Бенджамини–Хохберга. (E) Тепловая карта, иллюстрирующая паттерны обогащения иммунными клетками на уровне образцов в когорте TCGA-BRCA. (F) Диаграммы размаха, показывающие первый набор различий в показателях обогащения иммунными клетками, рассчитанных с помощью ssGSEA, между группами опухолей с высокой и низкой экспрессией MPO (по медиане); сравнение групп проводилось с использованием критерия суммы рангов Уилкоксона с поправкой Бенджамини–Хохберга. (G) Диаграммы размаха, показывающие второй набор различий в показателях обогащения иммунными клетками, рассчитанных с помощью ssGSEA, между группами опухолей с высокой и низкой экспрессией MPO (по медиане); сравнение групп проводилось с использованием критерия суммы рангов Уилкоксона с поправкой Бенджамини–Хохберга. (H) Стековая столбчатая диаграмма, показывающая доли иммунных клеток, рассчитанные с помощью CIBERSORT на основе сигнатурной матрицы LM22 для 22 типов иммунных клеток в группах опухолей с низкой и высокой экспрессией MPO, определенными по медиане. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Рисунок 6: Анализ метилирования ДНК гена MPO при раке молочной железы. (A) Тепловая карта, демонстрирующая паттерны метилирования MPO в группах с высоким и низким уровнем экспрессии MPO, определенных по медиане. (B) Кривая выживаемости Каплана-Мейера, демонстрирующая прогностическую значимость метилирования в сайте cg27456487. (C) Кривая выживаемости Каплана-Мейера, демонстрирующая прогностическую значимость метилирования в сайте cg02668773. (D) Кривая выживаемости Каплана-Мейера, демонстрирующая прогностическую значимость метилирования в сайте cg07110356. (E) Кривая выживаемости Каплана-Мейера, демонстрирующая прогностическую значимость метилирования в сайте cg11151395. (F) Кривая выживаемости Каплана-Мейера, демонстрирующая прогностическую значимость метилирования в сайте cg14619064. (G) Кривая выживаемости Каплана-Мейера, демонстрирующая прогностическую значимость метилирования в сайте cg22331200. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Рисунок 7: Анализ корреляции MPO и генов, связанных с нейтрофилами, на уровне мРНК с использованием базы данных TCGA. (A) Визуализация сети белковых взаимодействий, отображающая связи между основным белком и другими белками. (B) Корреляционный анализ 20 наиболее значимых генов, связанных с нейтрофилами, в отношении MPO, с указанием коэффициентов корреляции и распределения P-value для различных генов. (C) Хордовая диаграмма корреляций между 20 наиболее значимыми генами, связанными с нейтрофилами, визуально представляющая силу и направление ассоциаций между генами. (D) Тепловая карта корреляции 20 наиболее значимых генов, связанных с нейтрофилами, отображающая коэффициенты корреляции и уровни значимости с помощью цветовых градиентов и статистических маркеров. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Рисунок 8: Кластеризация единичных клеток и анализ межклеточного взаимодействия, связанного с MPO, в наборе данных одноклеточного секвенирования рака молочной железы. (A) DotPlot канонических маркерных генов в различных кластерах для аннотации типов клеток. (B) Визуализация аннотированных клеточных популяций с помощью UMAP. (C) Тепловая карта выбранных маркерных генов в клеточных кластерах. (D) DotPlot, обобщающий баллы, связанные с MPO, для аннотированных типов клеток, рассчитанные с помощью AUCell, ssGSEA и Seurat AddModuleScore на основе набора генов, представленного в Дополнительном файле 1. (E) Сеть межклеточных взаимодействий, отображающая коммуникацию между эпителиальными опухолевыми клетками, стратифицированными по MPO-ассоциированному сигналу, и другими типами клеток; ширина ребра представляет силу взаимодействия, а размер узла отражает общую активность взаимодействий. (F) Тепловые карты, показывающие паттерны исходящих и входящих сигналов между типами клеток. (G) Bubble plot исходящих сигнальных путей от эпителиальных опухолевых клеток, стратифицированных по MPO-ассоциированному сигналу, к другим типам клеток. (H) Bubble plot входящих сигнальных путей от других типов клеток к эпителиальным опухолевым клеткам, стратифицированным по MPO-ассоциированному сигналу. (I) Распределение экспрессии MPO по аннотированным типам клеток. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Рисунок 9: Анализ атласа отдельных клеток и исследовательский виртуальный нокдаун показателей чувствительности к MPO. (A) DotPlot, демонстрирующий экспрессию канонических маркерных генов в кластерах отдельных клеток; размер точки соответствует проценту клеток, экспрессирующих данный маркер, а интенсивность цвета — среднему уровню экспрессии. (B) Визуализация UMAP аннотированных популяций отдельных клеток, где каждый цвет соответствует определенному типу клеток или кластеру. (C) Визуализация UMAP экспрессии ключевых маркерных генов, показывающая распределение экспрессии маркерных генов для типов клеток, включая миелоидные клетки. (D) Стековая столбчатая диаграмма пропорций клеточных кластеров в образцах. (E) Визуализация UMAP экспрессии гена MPO. (F) Скрипичный график (violin plot), демонстрирующий метрики контроля качества (QC) секвенирования отдельных клеток. (G) График кластеризации ключевых маркерных генов. (H) DotPlot канонических маркерных генов на уровне кластеров. (I) График "вулкан" генов, изменившихся в анализе чувствительности при виртуальном нокдауне. (J) Диаграмма рассеяния смещения относительно значимости. (K) График со стрелками выравнивания многообразий (manifold alignment). (L) Анализ обогащения GO BP для генов из результатов виртуального нокдауна. (M) Анализ обогащения путей KEGG для генов из результатов виртуального нокдауна. (N) Топ-20 генов с наибольшим смещением многообразия после исключения MPO. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
Дополнительный рисунок 1: Дополнительный анализ выживаемости для MPO в когорте TCGA-BRCA. (A,B) Данный файл содержит дополнительные результаты анализа выживаемости по методу Каплана-Мейера для (A) общей выживаемости и (B) специфической для заболевания выживаемости, стратифицированные по медианному порогу экспрессии MPO в опухоли. Эти анализы представлены в качестве дополнительных результатов к рисунку 2D и не были статистически значимыми в данной когорте.Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать этот файл.
Дополнительный рисунок 2: Поисковая аннотация потенциальных факторов транскрипции для MPO. (A) Диаграмма Венна, показывающая пересечение потенциальных факторов транскрипции из трех открытых ресурсов по факторам транскрипции. (B) Результаты сравнения экспрессии MYC. (C) Тепловая карта корреляции факторов транскрипции с подписями строк и столбцов. (D) Результаты корреляции MPO–MYC. (E) Результаты анализа выживаемости для MYC. (F) Результаты ROC-анализа для MYC. Данные по MYC представлены только в качестве дополнительных аннотаций потенциальных факторов транскрипции и не используются для подтверждения выводов о механизмах действия вышестоящих регуляторов.Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать этот файл.
Дополнительная фигура 3: Результаты поискового запроса лекарственных средств и генов для MPO в базе данных DGIdb. Серые узлы представляют ген MPO, оранжевые узлы — найденные записи о малых молекулах, а соединительные линии указывают на предсказанные базой данных связи между лекарственным средством и геном.Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать этот файл.
Дополнительная таблица 1: Матрица сигнатур иммунных клеток LM22, использованная для анализа деконволюции 22 типов иммунных клеток с помощью CIBERSORT. Символы генов были гармонизированы, дубликаты удалены, а доступные гены были пересечены с соответствующими матрицами экспрессии TCGA-BRCA или GSE161529 перед последующим анализом.Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать этот файл.
Дополнительная таблица 2: Список генов, связанных с нейтрофилами, который использовался для анализа STRING/PPI, приоритизации хаб-генов и анализа корреляции между MPO и хаб-генами. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать этот файл.
Дополнительная таблица 3: Результаты предварительного поиска лекарственных средств и генов в базе данных DGIdb и ADMET-аннотации для MPO. Этот файл содержит записи о взаимодействиях химических веществ и генов, связанных с MPO, полученные из DGIdb, а также предсказанные физико-химические, фармакокинетические и токсикологические аннотации на уровне отдельных соединений. Данные результаты представлены исключительно в качестве предварительных химических аннотаций и не должны интерпретироваться как списки терапевтических кандидатов. Они не подтверждают ингибирование MPO, связывание с мишенью, специфичность лигандов, селективность, безопасность, терапевтическую эффективность или клиническую пригодность. Значения в этой таблице представляют собой предсказанные физико-химические параметры и показатели лекарственно-подобности для перечисленных соединений. Молекулярная масса выражена в граммах на моль (g/mol). Значения акцепторов и доноров водородных связей указывают на предсказанное количество акцепторов и доноров водородных связей соответственно. Коэффициент распределения октанол-вода по Моригучи указывает на предсказанную липофильность. Нарушения правил Липински указывают на количество критериев правила пяти Липински, которым не соответствует каждое соединение. Показатель биодоступности представляет собой предсказанный балл, связанный с пероральной биодоступностью, а топологическая площадь поверхности относится к предсказанной топологической полярной поверхности.Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать этот файл.
Дополнительный файл 1: Список генов, ассоциированных с MPO, который использовался для оценки сигнатур отдельных клеток с помощью AUCell, Seurat AddModuleScore и ssGSEA. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать этот файл.
Дополнительный файл 2: Результаты эксплораторной аннотации потенциальных факторов транскрипции и микроРНК для MPO. Этот файл содержит результаты аннотации потенциальных факторов транскрипции и микроРНК, полученные из баз данных на основе общедоступных ресурсов, включая KnockTF, ChIP-Atlas, GTRD и TargetScan. Данные аннотации представлены исключительно для эксплораторной приоритизации кандидатов и не должны интерпретироваться как функциональное доказательство апстрим-регуляции MPO при раке молочной железы.Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать этот файл.