В соответствии с Мерами по этическому обзору наук о жизни и медицинских исследований с участием людей, принятыми в Китае 18 февраля 2023 года, исследования, использующие общедоступные данные, могут соответствовать критериям освобождения от этического обзора. В этом исследовании использовались только публично доступные, де-идентифицированные вторичные транскриптомические данные и не включали новых участников, не брали образцы на людях или экспериментировали на животных. Поэтому дополнительное институциональное этическое одобрение не требовалось. В этом исследовании не проводились эксперименты на животных. Поэтому одобрение институционального комитета по уходу и использованию животных не имело применения.
Источники данных о генах, связанных со стрессом эндоплазматического ретикулума, при фибрилляции предсердий
В этом исследовании из базы данных GEO были извлечены общедоступные транскриптомические наборы данных, связанные с AF, включая GSE41177, GSE79768, GSE115574, GSE14975 и GSE165838. Подробная информация о наборах данных GSE предоставлена в Дополнительном файле 1 — Дополнительной таблице S1. GSE41177 и GSE79768 использовались для построения интегрированной когорты обучающего массового транскриптомического обучения, тогда как GSE115574 и GSE14975 использовались как две независимые когорты внешней валидации. GSE165838 использовался для одноклеточного транскриптомического анализа. Поскольку эти наборы данных генерировались на разных платформах и могут различаться по источнику ткани, клиническому опыту и составу образцов, каждый набор данных предварительно обработывался отдельно в соответствии с характеристиками платформы до интеграции или валидации. Затем корректировка эффекта партии выполнялась с использованием пакета sva R для объединённой учебной когорты. Набор генов, связанных со стрессом эндоплазматической сетки, был извлечен из базы данных GeneCards с показателем релевантности ≥ 3 и после дедупликации сформировал целевой список генов, использовавшийся в этом исследовании.
Анализ дифференциально экспрессируемых генов
После стандартизации и нормализации данных лимма пакета R использовалась для идентификации дифференциально экспрессированных генов (DEG) в интегрированном наборе обучения. DEGs определялись с использованием следующих критериев значимости: коэффициент ложного обнаружения (adj. P.Val) < 0.05 и |log2FC| > 0.58510. Для визуализации паттернов экспрессии DEG были созданы диаграммы вулканов и тепловые карты с использованием пакетов ggplot2 и pheatmap соответственно.
Анализ WGCNA
Для выяснения возможных механизмов координированной регуляции генов, определения паттернов ассоциаций между модулями коэкспрессии и переменными клинических признаков, а также выявления основных биомаркеров или терапевтических мишень с трансляционным потенциалом был применёнWGCNA 11.
Была построена взвешенная ко-экспрессионная сеть с использованием пакета WGCNA в R. Степень мягкого порога (β) выбиралась согласно критерию топологии без масштаба; соответствующее значение β было выбрано для последующих анализов, когда индекс соответствия топологии без масштаба (R 2) достиг и остался выше 0,8512. Во время идентификации модуля параметры, связанные с динамической вырезкой дерева и чувствительностью к обнаружению модулей, были оптимизированы для повышения разрешения и стабильности границ модулей. Наконец, были выделены модули, существенно связанные с целевым признаком, а внутримодульные хабовые гены идентифицированы как кандидатные наборы генов для дальнейших анализов.
Анализ обогащения DEG, связанных с AF,
Для точной идентификации генов-хабов DEGs сначала пересекались с генами ключевых модулей WGCNA для определения набора генов, связанных с патогенезом ФП. Далее этот набор генов AF был дополнительно пересечен с генами, связанными с ERS, и полученные перекрывающиеся гены сохранялись для последующих анализов.
Функциональное обогащение скрининговых генов оценивалось с помощью анализов Gene Ontology (GO) и Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes (KEGG). Термины GO анализировались с помощью кластера Profiler пакета R для суммирования обогащения по категориям биологических процессов (BP), клеточных компонентов (CC) и молекулярной функции (MF) 13. Анализ KEGG затем использовался для выявления обогащённых путей, связанных с целевойгенной 14. Результаты обогащения с скорректированным значением P < 0,05 считались статистически значимыми. Ведущие термины GO и пути KEGG отображались в виде бар-графиков и пузырьковых графиков с использованием ggplot2.
Анализ взаимодействия белков и белков (ИПП)
Анализ PPI проводился путём загрузки пересекающегося набора генов в базу данных STRING, при этом организм был ограничен Homo sapiens. Отделённые узлы были удалены, а взаимодействия получены с использованием среднего порога доверия (совокупный балл ≥ 0,4). Получившаяся сеть PPI затем импортировалась в инструмент визуализации и анализа сети для топологического анализа с целью идентификации ключевых узлов.
Построение кандидатной модели классификации AF-ERS на основе 12 алгоритмов машинного обучения
В этом исследовании была разработана ансамблевая классификационная структура на основе двенадцати традиционных алгоритмов машинного обучения для скрининга генов-кандидатов сигнатуры ERS, связанных с AF, и оптимизации эффективности классификации. Для разбиения данных после стандартизации и нормализации GSE41177 и GSE79768 объединялись для создания матрицы выражения обучающей когортной группы. GSE115574 использовалась как независимая когорта внешней валидации для оценки обобщаемости моделей. В частности, DEGs были впервые выявлены в обучающей когорте (|log2FC| >0,585, скорректировано p < 0,05). Эти DEG затем пересекались с генами ключевых модулей WGCNA и генами, связанными с ERS, и полученный набор генов использовался в качестве входных признаков для построения модели.
Для связи генов, связанных с ERS, с фенотипом AF была разработана модель классификации кандидатов с использованием 12 подходов машинного обучения: Lasso, Ridge, пошаговая обобщённая линейная модель (Stepglm), усиление экстремального градиентного усиления (XGBoost), случайный лес (RF), упругая сеть (Enet), регрессия с частичными наименьшими квадратами для обобщённых линейных моделей (plsRglm), обобщённое моделирование усиленной регрессии (GBM), наивный Байес, линейный дискриминантный анализ (LDA), glmBoost, и поддерживающая векторная машина (SVM). Была принята стратегия систематического комбинаторного моделирования путём добавления второго алгоритма к первому алгоритму и интеграции их через параметр настройки α, что дало 113 комбинаций выбора признаков и подгонки модели, которые были всесторонне оценены. Дискриминация модели оценивалась путём вычисления площади под кривой рабочей характеристики приёмника (AUC). Согласно ранее опубликованным критериям отбора модели, окончательная рамка кандидатов была определена как модель с наилучшей общей эффективностью, оценённой по среднему показателю AUC в когортах обучения и валидации.
Эта комбинаторная стратегия моделирования была основана на предыдущих исследованиях в области биомедицинского машинногообучения 15,16,17. В совокупности эти исследования показывают, что ни один алгоритм не всегда превосходит другие в наборах данных и аналитических задачах. Исходя из этой предпосылки, внедрение ансамблевого обучения и комбинаторного моделирования может повысить вероятность получения высокоэффективной кандидат-модели с более стабильной обобщённостью и повысить устойчивость выбора модели.
Впоследствии значения SHapley Additive exPlanations (SHAP) применялись для интерпретации модели машинного обучения путем визуализации ключевых признаков, определяющих классификацию автофокусов, тем самым количественно оценивая вклад каждой признака в прогнозируемый результат и иллюстрируя, как отдельные гены сигнатуры влияют на итоговый результатмодели 18.
Оценка производительности модели и внешняя валидация оптимальной модели
Эффективность оптимальной модели оценивалась в обучающей когорте и в независимой когорте внешней валидации (GSE115574). На уровне модели была построена матрица путаницы на основе прогнозируемых меток классов, и соответствующие метрики классификации были представлены. Кривые операционной характеристики приёмника (ROC) были сгенерированы с помощью pROC пакета R, а AUC рассчитывался для количественной оценки дискриминативной производительности.
На уровне биомаркеров для каждого ключевого гена оптимальной модели были нанесены кривые ROC по одному гену, а соответствующие AUC рассчитаны для оценки их индивидуальной дискриминационной способности. Кроме того, дифференциальная экспрессия ключевых генов была суммирована с помощью вулканического графика, а для отображения распределения экспрессии у болезней и здоровых образцов использовались коробочные графики. Для дальнейшей оценки обобщимости ранее определённой оптимальной модельно-производной генной подписи была проведена дополнительная независимая внешняя валидация с использованием GSE14975. GSE14975 содержит транскриптомические данные из образцов левой предсердной отростка, включая пять образцов фибрилляции предсердий и пять образцов синусового ритма/контроля. Все гены, включённые в заблокированную подпись, были доступны в этом наборе данных. Для поддержания согласованности с исходным межкогортным аналитическим рабочим процессом когорта и GSE14975 были гармонизированы с помощью ComBat с исходным набором данных в качестве пакетной переменной. Эта гармонизация проводилась без присмотра. Важно, что метки заболеваний/контроля из GSE14975 не использовались для выбора признаков, оценки коэффициентов, определения порога или настройки гиперпараметров.
Оптимальная модель оценки, основанная на модели, была установлена только с использованием когорты разработчиков и затем применялась к GSE14975 для внешней валидации. Производительность модели в GSE14975 году оценивалась с помощью анализа кривой операционных характеристик приёмника, площади под кривой, 95% доверительного интервала (ДИ), чувствительности, специфичности, точности, положительных и отрицательных предиктивных значений, а также балла Брайера. Кроме того, для всех оптимальных генов, полученных от модели, были сгенерированы кривые ROC с одним геном в GSE14975, чтобы проиллюстрировать их индивидуальную дискриминационную способность. Для дальнейшей оценки возможного перенагнания в когорте разработки была проведена повторная 10-кратная кросс-валидация и коррекция оптимизма bootstrap с использованием генной сигнатуры, полученной из заблокированной оптимальной модели. Для повторной перекрёстной валидации когорта разработки многократно делилась на 10 разрядов, а различение моделей суммировалась по всем итерациям. Для проверки bootstrap было сгенерировано 1 000 повторных выборок для оценки оптимизма предполагаемой производительности набора разработки и расчёта оптимизм-скорректированного AUC. Поскольку итоговая подпись была выведена из оптимальной модели, вклад каждого гена интерпретировался преимущественно с учётом абсолютной величины и направления коэффициентов модели. Кроме того, в GSE14975 году проводились анализы одногенной ROC, чтобы показать индивидуальную дискриминационную способность каждого компонентного гена. Для целей визуализации кривые ROC с одним геном были ориентированы так, чтобы отражать дискриминационную способность независимо от того, связана ли высокая или низкая экспрессия с ФП.
Анализ обогащения множества генов (GSEA)
Для изучения функциональных аспектов ключевых генов был проведён GSEA с использованием образцов из группы19 заболевания. Для каждого ключевого гена образцы были стратифицированы на подгруппы с высоким и низким уровнем экспрессии, используя медианное значение экспрессии в группе заболевания в качестве порога. Была рассчитана средняя разница экспрессии между двумя подгруппами для каждого гена, и ранжированный список генов был сформирован в убывающем порядке для анализа обогащения. GSEA проводилась с использованием пакета R clusterProfiler, с генными наборами, полученными из коллекции MSigDB c2.cp.kegg.Hs.symbols.gmt. Статистическая значимость была определена как p < 0,05. Направление обогащения определялось знаком нормированного балла обогащения (NES), а для представительных путей были созданы графики обогащения.
Оценка численности подтипов иммунных клеток и дифференциальной экспрессии
Алгоритм деконволюции CIBERSORT был применён для оценки относительной численности инфильтрирующих иммунных клеток и их взаимосвязей между образцами. На основе лейкоцитарного матрица LM22 состав иммунных клеток был количественно выведен из профилей экспрессии генов с помощью пакета RCIBERSORT 20. Для фильтрации результатов использовался порог p < 0,05, и для последующих анализов сохранялись только образцы, соответствующие этому критерию. Были созданы коробочные графики для сравнения оценочных относительных долей иммунноклеточных подмножеств между ФП и контрольной группами. Кроме того, был проведён корреляционный анализ Спирмана для оценки ассоциаций между уровнем инфильтрации иммунных клеток и экспрессией генов хаба.
Анализ с одной ячейкой
Транскриптомический анализ для отдельных клеток был проведён с использованием набора данных GEO GSE165838. Сырые матрицы подсчёта генных клеток импортировались в R и обработаны с использованием Seurat v4.4.0. Для каждого образца был создан объект Seurat с помощью CreateSeuratObject с min.cells = 5 и min.features = 300. Для каждой клетки были рассчитаны показатели контроля качества, включая количество обнаруженных генов, общее количество уникальных молекулярных идентификаторов (UMI), процент генов митохондрий, процент генов рибосомы и процент гемоглобина. Клетки сохранялись, если у них было более 500 обнаруженных генов, менее 5000 UMI, процент генов митохондриальных < 25%, процент генов рибосомы > 3%, а процент гемоглобина < 1%. Гены, обнаруженные менее чем в трёх клетках, были удалены. Гены MALAT1 и митохондриальных также были исключены до дальнейшего анализа. DoubletFinder использовался для обнаружения и исключения потенциальных дублетов. Кратко: клетки делились по идентичности выборки, а обнаружение дублетов проводилось отдельно для каждого образца с использованием основных компонентов 1–30.
Параметр pN был установлен на 0,25, а оптимальное значение pK выбрано в соответствии с максимальной метрикой BC, полученной при расчистке параметров. Ожидаемый уровень дублетов оценивался в зависимости от количества извлечённых клеток в каждом образце, при этом показатели составляли 2,5%, 5% и 6,5% для образцов с относительно низким, промежуточным и высоким количеством клеток соответственно. Сохранялись только клетки, классифицированные как синглеты. Дополнительно оценивалось загрязнение окружающей РНК с помощью DecontX, а клетки с баллом загрязнения ≥ 0,2 были исключены. После контроля качества, удаления дублетов и фильтрации окружающей среды РНК для дальнейшего анализа осталось 40 886 клеток и 23 947 генов. Отфильтрованный набор данных для отдельных клеток был нормализован методом LogNormalize с использованием коэффициента масштабирования 10 000, после чего была выявлена высоковариабельная генная система. Затем данные масштабировались перед анализом основных компонентов.
Чтобы уменьшить эффекты партии, специфичные для сэмпла, Harmony применялся с использованием orig.ident в качестве партийной переменной. Визуализация равномерного приближения и проекции многообразия (UMAP) и построение графов ближайших соседей были выполнены с использованием первых 15 размеров, скорректированных по Harmony21. Кластеризация проводилась с использованием алгоритма Лувена, и оценивалось несколько разрешения кластеризации. Окончательная основная аннотация типа ячейки была основана на результате кластеризации с разрешением 0.05. Клеточные кластеры были вручную аннотированы в соответствии с канонической экспрессией маркер-генов. Эта стратегия аннотирования на основе маркеров согласуется с предыдущими исследованиями иммунного профилирования отдельныхклеток 22. Т-клетки были выявлены с помощью CD3D, CD3E и TRAC; натуральные киллеры (NK) клетки NKG7, GNLY, NCAM1 и KLRG1; моноцитарно-макрофаговые клетки с помощью LYZ, CD14, FCGR3A, CD68, CD163, FCN1, TYROBP, S100A8 и S100A9; B-клетки MS4A1 и CD79A; плазматические клетки с помощью MZB1 и XBP1; эндотелиальные клетки с помощью PECAM1, VWF и CDH5; сосудистые гладкомышечные клетки ACTA2, TAGLN, MYH11 и MYL9; фибробласты от DCN, LUM, COL1A1, COL1A2 и PDGFRA; нейрофилоподобные клетки от FCGR3B, CXCR2, S100A8 и MPO; тучные клетки от TPSB2; а дендритные клетки — LILRA4, CD1C и XCR1. Экспрессия маркер-гена между кластерами визуализировалась с помощью точечных графиков, а распределение экспрессии финальных генов-хабов, связанных с ERS, визуализировалось на вложениях UMAP.
Для количественной оценки транскрипционной активности, связанной с ERS, на уровне одной клетки был использован финальный набор генов для расчёта поклеточных сигнатурных оценок с помощью AUCell, анализа обогащения наборов генов на основе одной выборки и Seurat AddModuleScore. Для AUCell рейтинги клеток формировались на основе нормализованной матрицы экспрессии РНК, а баллы AUC рассчитывались с использованием набора хаб-генов с максимальным порогом рейтинга в топ-10% рейтинговых генов. Для ssGSEA баллы обогащения рассчитывались с использованием пакета GSVA. Три результата оценивания были центрированы и масштабированы, затем нормализованы min-max и в итоге суммированы для создания интегрированного композитного результата, связанного с ERS, для каждой ячейки. Распределение составного балла сравнивалось между аннотированными популяциями клеток для оценки гетерогенности типов клеток в программе, связанной с ERS. Поскольку линия моноцит-макрофаг демонстрировала заметное обогащение сигнатур, связанное с ERS, и тесно связана с иммунновоспалительным ремоделированием, она была отобрана для последующих анализов внутри линии. Моноцитарно-макрофаговые клетки были разделены на группы с высоким и низким баллом согласно медианному композитному баллу, связанному с ERS. Анализ траектории псевдовремени был проведён на моноцитарно-макрофаговых клетках с помощью Monocle.
Для анализа псевдовремени объект CellDataSet был создан из исходной матрицы подсчёта с использованием модели отрицательного биномиального выражения. Затем оценивались размерные факторы и дисперсии. Гены упорядочения были отобраны с использованием среднего порога экспрессии ≥ 0,1 и эмпирической дисперсии, превышающей приспособленную дисперсию. Размерность была уменьшена с помощью алгоритма DDRTree, а ячейки были упорядочены вдоль предполагаемой траектории. Были визуализированы динамические паттерны экспрессии генов хаба, связанных с ERS, в псевдовремени. Анализ коммуникации между клетками был проведён с помощью CellChat для изучения потенциальных взаимодействий лиганд-рецептор между моноцитам-макрофаговыми клетками с различными показателями, связанными с ERS. Для этого анализа моноцитарно-макрофаговые клетки были помечены как с высоким или низким баллом согласно медиане составного результата, тогда как другие клетки сохранили свои исходные метки типа клеток. Нормализованная матрица экспрессии РНК и соответствующие аннотации групп клеток использовались для создания объекта CellChat. Для анализа коммуникации между клетками была выбрана база данных CellChatDB человека, и оценивались только секретируемые сигнальные взаимодействия. Переэкспрессированные гены и пары лиганд-рецепторы были выявлены до расчёта вероятностей коммуникации. Группы клеток, содержащие менее 10 клеток, были исключены из анализа взаимодействия. Впоследствии были оценены и агрегированы вероятности коммуникации на уровне путей для сравнения количества и силы взаимодействий между популяциями клеток. Для облегчения воспроизводимости ниже приведена таблица контрольных точек, связывающая каждый шаг протокола с соответствующим ожидаемым выходным показателем или таблицей (Дополнительный файл 1 — Дополнительная таблица S2).