Подбор генов, связанных с ферроптозом, и генетических инструментов
Всего из базы данных FerrDb V2 было получено 483 гена, связанных с ферроптозом (Рисунок 1). Среди них 315 генов соответствовали набору данных eQTLGen и имели как минимум один кандидатный цис-локус количественных признаков экспрессии (cis-eQTL). После кластеризации по неравновесию сцепления 250 генов сохранили как минимум три независимых кандидатных инструмента. После поиска вариантов исхода, гармонизации аллелей и контроля качества 226 генов дали достоверные оценки с использованием метода обратного взвешивания дисперсии (IVW) и были включены в анализ менделевской рандомизации (MR) на этапе поиска (Дополнительный файл 1). Все 3 578 инструментов, сохраненных в анализе на этапе поиска, имели F-статистику >10 (минимум — 29,72; медиана — 70,76), что указывает на отсутствие признаков смещения из-за слабых инструментов. Среди 34 кандидатных генов на этапе поиска медиана F-статистики составила 67,22, при этом минимум составил 29,72.
На этапе поиска MR позволяет выявить гены, связанные с ферроптозом и предрасположенностью к ГБМ
Из 226 генов, по которым были получены достоверные оценки IVW, 34 соответствовали заранее установленным критериям этапа поиска: IVW P < 0,05 и частота ложных открытий по методу Бенджамини-Хохберга (BH-FDR) < 0,20, включая 19 обратных и 15 прямых ассоциаций с предрасположенностью к GBM (Рисунок 2A). Наиболее сильные статистические доказательства были наблюдались для RPTOR (OR = 0,809, 95% CI 0,737–0,887; P = 7,02 × 10⁻6; BH-FDR = 0,0012) и PLA2G6 (OR = 1,568, 95% CI 1,281–1,920; P = 1,08 × 10⁻5; BH-FDR = 0,0012). Оценки байесовской взвешенной менделевской рандомизации (BWMR) были номинально значимыми и concordant по направлению с оценками IVW для всех 34 генов-кандидатов (Рисунок 2A). Тесты пересечения MR-Egger не выявили признаков направленной горизонтальной плейотропии. Тест Кохрена Q обнаружил гетерогенность только для MAP1LC3A (P = 0,043), тогда как глобальные тесты MR-PRESSO не выявили значительного искажения из-за выбросов среди 33 оцениваемых генов. Анализ MR-PRESSO не удалось провести для SLC7A11, так как было доступно только три инструмента (Дополнительный файл 1). Специфичные для генов анализы с исключением одного инструмента (leave-one-out), графики сравнения методов и воронкообразные графики для четырех впоследствии реплицированных генов представлены на Дополнительном рисунке 1. 34 кандидата этапа поиска были впоследствии оценены с использованием независимого набора данных eQTL. Из них 26 имели достаточное количество инструментов для MR на этапе репликации, и четыре соответствовали заранее установленным критериям репликации.
Независимая репликация МР подтверждает четырех кандидатов, выявленных на этапе поиска
Из 34 кандидатов на этапе обнаружения 26 имели по крайней мере один подходящий инструмент cis-eQTL в данных GTEx V10 по цельной крови и были включены в MR-анализ на этапе репликации. Тринадцать генов были представлены одним инструментом и анализировались с использованием отношения Вальда, тогда как остальные 13 генов имели два или более инструментов и анализировались с помощью IVW. Четыре гена соответствовали заранее определенным критериям репликации: P < 0.05, BH-FDR < 0.20 и направление эффекта, совпадающее с оценкой на этапе обнаружения (Рисунок 2B; Дополнительный файл 1).
Более высокая генетически предсказанная экспрессия ATG7 (OR = 0.523, 95% CI 0.330–0.831; P = 0.0061; BH-FDR = 0.0976), RPTOR (OR = 0.718, 95% CI 0.563–0.915; P = 0.0075; BH-FDR = 0.0976) и MAP1LC3A (OR = 0.830, 95% CI 0.717–0.959; P = 0.0117; BH-FDR = 0.1012) была связана со снижением восприимчивости к GBM. Напротив, более высокая генетически предсказанная экспрессия CHMP6 была связана с повышенной восприимчивостью (OR = 1.378, 95% CI 1.032–1.838; P = 0.0295; BH-FDR = 0.1916). Направления эффекта для всех четырех генов совпадали с данными, полученными в ходе анализа на этапе поиска. Значимой гетерогенности среди генов, для которых можно было рассчитать Q Кокрана, обнаружено не было (Дополнительный файл 1). Поскольку большинство оценок репликации основывались всего на одном или двух инструментах, формальные тесты на горизонтальную плейотропию и искажение выбросами были применимы только к ограниченному подмножеству генов (Дополнительный файл 1). Соответствующие диагностические графики для MAP1LC3A, RPTOR и CHMP6 представлены на Дополнительной рисунке 2. ATG7 не подходил для многоинструментального диагностического анализа, так как его оценка репликации была получена с помощью отношения Вальда для одного инструмента.
Транскриптомная оценка нескольких когорт позволяет выделить MAP1LC3A в качестве приоритетной мишени
Четыре гена, подтвержденные в ходе MR-анализов как на этапе обнаружения, так и на этапе репликации, были оценены в трех независимых транскриптомных когортах, представляющих различные платформы экспрессии (Рисунок 3; Таблица 2; Дополнительный рисунок 3; Дополнительный файл 1). Экспрессия MAP1LC3A была последовательно снижена в опухолевой ткани во всех трех когортах: GSE196533 (log₂FC = −1.553, FDR по всему транскриптому = 3.21 × 10⁻8), GSE4290 (log₂FC = −1.243, FDR = 3.55 × 10⁻12) и GSE116520 в сравнении ядра опухоли с неопластическим контролем (log₂FC = −1.204, FDR = 9.78 × 10⁻8). В GSE116520 экспрессия MAP1LC3A также была ниже в перитуморальной ткани, чем в неопластических контролях (log₂FC = −1.056, FDR = 2.85 × 10⁻6), при этом наблюдалась значимая тенденция к снижению от контроля через перитуморальную ткань к ядру опухоли (коэффициент тренда = −0.531, FDR = 8.59 × 10⁻6).
Метаанализ со случайными эффектами подтвердил значительно более низкую экспрессию MAP1LC3A в опухолевой ткани (суммарный log₂FC = −1.273, 95% ДИ от −1.625 до −0.920; P по методу Хартунга-Кнаппа = 0.0041; BH-FDR = 0.016) при отсутствии признаков межгрупповой гетерогенности (I2 = 0%; Дополнительный файл 1). Экспрессия RPTOR была стабильно ниже во всех трех когортах и достигла статистической значимости в масштабе всего транскриптома в GSE4290, хотя его суммарная оценка не была статистически значимой (log₂FC = −0.258, 95% ДИ от −0.655 до 0.139; BH-FDR = 0.196; I2 = 42.3%). Экспрессия CHMP6 была стабильно выше в опухолевой ткани и достигла значимости в GSE4290, в то время как суммарная оценка осталась незначимой (log₂FC = 0.150, 95% ДИ от −0.130 до 0.431; BH-FDR = 0.196; I2 = 52.0%). ATG7 продемонстрировал небольшие, разнонаправленные различия между когортами и отсутствие значимой суммарной ассоциации (log₂FC = 0.036, 95% ДИ от −0.073 до 0.146; BH-FDR = 0.291; I2 = 0%). Таким образом, среди четырех генов, реплицированных с помощью MR, MAP1LC3A показал наиболее сильные и устойчивые доказательства дифференциальной экспрессии, связанной с опухолью.
Виртуальный нокаут отдельных клеток выявляет воспроизводимые таргетные транскрипционные пертурбации
Четыре гена, реплицированных с помощью MR, были проанализированы в 4 916 подходящих злокачественных клетках из 20 опухолей ГБМ с диким типом IDH у взрослых из набора GSE131928. ATG7, RPTOR, MAP1LC3A и CHMP6 были обнаружены в 42,78%, 45,89%, 46,89% и 31,90% подходящих злокачественных клеток соответственно, что подтверждает целесообразность их включения в анализ виртуального нокаута (Дополнительный рисунок 4; Дополнительный файл 1). Чтобы минимизировать дисбаланс в представленности пациентов, из каждой опухоли было случайным образом отобрано по 120 клеток, что позволило получить сбалансированный по пациентам набор данных из 2 400 злокачественных клеток. Каждый целевой ген оценивался в пяти запусках с независимым начальным значением (seed), что в итоге дало 20 анализов виртуального нокаута.
Используя заранее определенный критерий BH-FDR < 0,05 как минимум в трех из пяти запусков, метод виртуального нокаута выявил три надежных нижестоящих гена для ATG7, 15 для RPTOR, четыре для MAP1LC3A и семь для CHMP6 (Рисунок 4A; Дополнительный рисунок 5). Консенсусный набор для RPTOR включал RND3, NKAIN4, CHI3L1, CDKN1A, BCAN, PDGFRA, OLIG1, LHFPL3, ENO2, HILPDA, LGALS3, ANXA1, CNTN1, NAMPT и SCRG1. Консенсусный набор для MAP1LC3A включал RND3, CD24, BCAN и S100B, в то время как консенсусные наборы для ATG7 и CHMP6 содержали три и семь генов соответственно. Применение более строгого критерия значимости (как минимум в четырех из пяти запусков) сократило консенсусные наборы до двух генов, ассоциированных с ATG7, девяти генов, ассоциированных с RPTOR, одного гена, ассоциированного с MAP1LC3A, и четырех генов, ассоциированных с CHMP6. В совокупности эти анализы позволили выявить воспроизводимые, специфичные для мишени транскрипционные нарушения в предполагаемой регуляторной сети злокачественных клеток.
Анализы функционального обогащения и общих сетей выявляют конвергентные ответы, связанные с адгезией
Четыре целевых консенсусных набора включали 17 уникальных нижестоящих генов. Сетевой анализ выявил RND3 как единственный ген, общий для всех четырех виртуальных нокаутов, в то время как BCAN, CD24 и NKAIN4 были общими для трех из четырех виртуальных нокаутов. CHI3L1, LHFPL3 и PDGFRA были общими для двух мишеней, тогда как остальные десять генов были специфичны для конкретной мишени (Рисунок 4B,C). Наибольшее абсолютное попарное перекрытие наблюдалось между RPTOR и CHMP6, которые имели шесть общих нижестоящих генов. Согласно коэффициенту сходства Жаккара, наибольшее пропорциональное перекрытие наблюдалось между ATG7 и CHMP6 (индекс Жаккара = 0.429), за которыми следовали RPTOR–CHMP6 и MAP1LC3A–CHMP6 (в обоих случаях 0.375).
Анализ Gene Ontology объединенного консенсусного набора из 17 генов выявил десять значимо обогащенных терминов после поправки Бенджамини–Хохберга (Рисунок 4D; Дополнительный рисунок 6). Обогащенные термины биологических процессов включали адгезию клеток (BH-FDR = 0.0028), положительную регуляцию пролиферации клеточной популяции (BH-FDR = 0.0028), воспалительный ответ (BH-FDR = 0.0139), положительную регуляцию каскада ERK1/ERK2 (BH-FDR = 0.0165) и межклеточную адгезию (BH-FDR = 0.0196). Значимые термины клеточных компонентов включали поверхность клетки, внеклеточную область, плазматическую мембрану и внеклеточный матрикс, в то время как связывание углеводов было единственным значимо обогащенным термином молекулярной функции. Адгезия клеток оставалась значимо обогащенной, когда анализ ограничивался генами, общими как минимум для двух мишеней, и когда применялся более строгий критерий консенсуса «четыре из пяти запусков». Ни один путь KEGG или Reactome не остался значимым после поправки BH.
Наиболее выраженное специфическое обогащение по мишеням наблюдалось для RPTOR, для которого консенсусный набор из 15 генов был обогащен по четырем терминам биологических процессов и четырем терминам клеточных компонентов (Дополнительная фигура 7). Консенсусный набор MAP1LC3A был обогащен по терминам «адгезия клеток» (BH-FDR = 8,74 × 10⁻4) и «развитие центральной нервной системы» (BH-FDR = 0,0364), в то время как консенсусный набор CHMP6 был обогащен по терминам «адгезия клеток» (BH-FDR = 0,0075). Ни один термин Gene Ontology не достиг значения BH-FDR < 0,05 для консенсусного набора из трех генов ATG7.
ДОСТУПНОСТЬ ДАННЫХ:
Общедоступные транскриптомные наборы данных доступны в GEO под номерами доступа GSE196533, GSE4290, GSE116520 и GSE131928. Сводные статистические данные по исходам GBM депонированы с ограниченным доступом в Европейском геномно-феномном архиве (EGA), набор данных EGAD00010001657 (https://ega-archive.org/datasets/EGAD00010001657). Доступ предоставляется соответствующим Комитетом по доступу к данным и требует подачи утвержденной заявки и подписания Соглашения о доступе к данным. Согласно действующему соглашению, авторы не имеют права распространять эти файлы или депонировать их в открытом репозитории. Сводные данные eQTL доступны от консорциума eQTLGen и GTEx в соответствии с их соответствующими условиями доступа и использования. Скрипты анализа, использованные в данном исследовании, представлены в Дополнительном файле с кодом 1 и Дополнительном файле с кодом 2.

Рисунок 1: Дизайн исследования и структура интеграции данных для генетически обоснованной приоритезации генов, связанных с ферроптозом при глиобластоме. Гены, связанные с ферроптозом и отобранные из FerrDb V2, были сопоставлены с eQTLGen, проверены на наличие независимых инструментов цис-экспрессионных количественных признаков (cis-eQTL) и оценены с помощью менделевской рандомизации (MR) на этапе обнаружения. Из 483 отобранных генов 315 имели как минимум один кандидатный cis-eQTL, 250 сохранили как минимум три независимых инструмента после кластеризации по неравновесию сцепления (LD), и 226 дали достоверные оценки с использованием метода обратного взвешивания по дисперсии (IVW) после поиска вариантов исхода и гармонизации аллелей. Тридцать четыре гена соответствовали критериям этапа обнаружения, после чего для оценки робастности использовалась байесовская взвешенная менделевская рандомизация (BWMR). Двадцать шесть генов в дальнейшем были доступны для оценки в MR на этапе репликации с использованием cis-eQTL цельной крови из GTEx V10. Четыре гена (ATG7, RPTOR, MAP1LC3A и CHMP6) соответствовали критериям репликации и были дополнительно изучены в трех независимых транскриптомных когортах, а также с помощью виртуального пертурбационного анализа в злокачественных клетках, полученных от пациентов. Интеграция этих взаимодополняющих анализов позволила приоритезировать MAP1LC3A для дальнейшего исследования. BWMR = байесовская взвешенная менделевская рандомизация; eQTL = экспрессионный количественный признак; IVW = обратное взвешивание по дисперсии; LD = неравновесие сцепления; MR = менделевская рандомизация. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Рисунок 2: Робастность на этапе поиска и независимая репликация эффектов генетически предсказанных генов, связанных с ферроптозом, на риск развития глиобластомы. (A) Парные форест-графики, сравнивающие оценки метода обратной дисперсии (IVW) и байесовской взвешенной менделевской рандомизации (BWMR) для 34 генов, соответствующих критериям этапа поиска: IVW P < 0.05 и уровень ложноположительных результатов Бенджамини–Хохберга (BH-FDR) < 0.20. Квадраты перед названиями генов обозначают гены, которые впоследствии были подтверждены в анализе независимой репликации. Треугольник указывает на LPIN1, для которого оценки IVW и BWMR показали разнонаправленные эффекты. (B) Форест-график 26 генов, оцененных в наборе данных этапа репликации. Оценки IVW представлены для генов как минимум с двумя инструментами, в то время как оценки отношения Вальда представлены для генов с одним инструментом. Символы, заполненные оранжевым цветом, обозначают ATG7, RPTOR, MAP1LC3A и CHMP6, которые соответствовали критериям репликации (P < 0.05 и BH-FDR < 0.20). Точки и горизонтальные линии представляют отношение шансов (OR) и 95% доверительные интервалы (CI) соответственно; вертикальная пунктирная линия указывает на OR = 1. OR представлены в логарифмическом масштабе. GBM = глиобластома. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Рисунок 3: Межкогортная транскриптомная оценка четырех генов, реплицированных с помощью МР. Экспрессия ATG7, RPTOR, MAP1LC3A и CHMP6 в GSE196533 (61 образец глиомы 4-й степени, аннотированные как ГБМ в переданных метаданных, и девять не неопластических образцов мозга); (A) GSE4290 (77 образцов ГБМ и 23 образца не опухолевого мозга); (B) и GSE116520 (17 образцов ядра опухоли, 17 соответствующих им перитуморальных образцов и восемь не неопластических контрольных образцов); (C) Прямоугольники указывают медиану и межквартильный размах (IQR), «усы» extending до 1.5 × IQR, а точки представляют отдельные образцы. (D) Специфические для исследования значения log₂ fold changes и метаанализ со случайными эффектами при сравнении ткани опухоли или ядра опухоли с не неопластической тканью мозга. Точки и горизонтальные линии указывают оценки для конкретных исследований и 95% доверительные интервалы, в то время как ромбы представляют объединенные оценки ограниченного максимального правдоподобия с выводом по методу Хартунга-Кнаппа. Положительные значения указывают на более высокую экспрессию в опухолевой ткани. FDR = ложноположительная частота; ГБМ = глиобластома; МР = менделевская рандомизация. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Рисунок 4: Перекрестный консенсус и функциональная конвергенция виртуальных нокаутов в единичных клетках злокачественной глиобластомы. (A) Количество надежных нижестоящих генов, идентифицированных для каждой мишени с использованием заранее определенного критерия значимости в как минимум трех из пяти запусков и более строгого критерия чувствительности «четыре из пяти запусков». (B) Попарное перекрытие надежных нижестоящих генов; в ячейках указано количество перекрытий и коэффициенты сходства Жаккара. (C) Двудольный сетевой график, связывающий четыре мишени виртуального нокаута (ромбы) с надежными нижестоящими генами (круги). Цвета ребер обозначают возмущенную мишень, а размер круга и интенсивность цвета указывают на количество мишеней, имеющих общую нижестоящую реакцию. Ребра представляют собой ассоциации между воспроизводимыми вычислительными возмущениями, а не прямые молекулярные взаимодействия. (D) Значимое обогащение Gene Ontology для объединенного консенсусного набора из 17 генов. Длина столбца представляет −log10(BH-FDR), пунктирная линия указывает порог значимости (BH-FDR = 0.05), а цвета обозначают биологический процесс (BP), клеточный компонент (CC) и молекулярную функцию (MF). Анализ функционального обогащения проводился с использованием фонового распределения регуляторной сети из 1 004 генов, сбалансированной по пациентам. После коррекции Бенджамини–Хохберга ни один путь KEGG или Reactome не остался значимым. Сокращения: BH-FDR = ложноположительный уровень значимости Бенджамини–Хохберга; BP = биологический процесс; CC = клеточный компонент; GO = Gene Ontology; KEGG = Киотская энциклопедия генов и геномов; MF = молекулярная функция. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
Таблица 1: Обзор источников данных и их аналитическая роль в исследовании. Количество образцов представляет собой наблюдения, включенные в настоящий анализ. BH-FDR = скорость ложноположительных результатов Бенджамини–Хохберга; cis-eQTL = цис-экспрессионный количественный признак локуса; EGA = European Genome-phenome Archive; GBM = глиобластома; GTEx = Genotype-Tissue Expression; GWAS = полногеномный поиск ассоциаций; IV = инструментальная переменная; MR = менделевская рандомизация; RNA-seq = секвенирование РНК. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать эту таблицу.
Таблица 2: Межкогортные транскриптомные доказательства для четырех генов, подтвержденных методом MR. Значения представляют собой log₂ кратность изменения для GBM или ткани ядра опухоли относительно ненеопластической ткани мозга. Объединенные оценки были получены с использованием моделей случайных эффектов с ограниченным максимальным правдоподобием и выводом по методу Хартунга-Кнаппа. CI = доверительный интервал; FDR = частота ложноположительных результатов. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать эту таблицу.
Дополнительный рисунок 1: Анализы чувствительности методом менделевской рандомизации на этапе обнаружения для четырех реплицированных генов. Для MAP1LC3A, ATG7, RPTOR и CHMP6 представлены следующие данные: (A) анализ с исключением одного инструментального показателя (leave-one-out); (B) диаграмма рассеяния для сравнения методов; и (C) воронкообразный график.Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать этот файл.
Дополнительный рисунок 2: Диагностические графики менделевской рандомизации на этапе репликации для трех реплицированных генов с несколькими инструментами. Для MAP1LC3A, RPTOR и CHMP6 представлены следующие данные: (A) диаграмма рассеяния для сравнения методов и (B) воронкообразный график. Оценка для ATG7 проводилась с использованием отношения Уолда по одному инструменту, поэтому данный ген не был подходящим для построения многоинструментальных диагностических графиков.Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать этот файл.
Дополнительный рисунок 3: Анализ главных компонентов трех независимых транскриптомных когорт. (A) Когорта секвенирования РНК GSE196533. (B) Когорта Affymetrix GPL570 GSE4290. (C) Когорта Illumina GPL10558 GSE116520. Анализ главных компонентов был выполнен с использованием 500 генов или зондов с наибольшей внутрикогортной вариабельностью. Каждая точка представляет собой биологический образец; цвета обозначают группы тканей; метки осей указывают долю дисперсии, объяснимую каждой главной компонентой.Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать этот файл.
Дополнительная фигура 4: Обнаруживаемость четырех генов, реплицированных по методу MR, в клетках злокачественной ГБМ взрослых пациентов. (A) Общие показатели обнаружения ATG7, RPTOR, MAP1LC3A и CHMP6 среди 4 916 злокачественных клеток из 20 опухолей ГБМ с диким типом IDH у взрослых пациентов в базе GSE131928/SCP393. (B) Показатели обнаружения тех же генов на уровне пациентов. Цвет указывает на процент злокачественных клеток с TPM > 0.Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать этот файл.
Дополнительная фигура 5: Воспроизводимость сигналов нижележащих мишеней при виртуальном нокауте с использованием различных случайных чисел. (A) Количество значимых по BH-FDR нижележащих генов, выявленных в пяти независимых запусках для каждой мишени. Точки представляют собой случайные числа (seeds), а горизонтальные линии — медианы. (B) Нижележащие гены, значимые как минимум в трех из пяти запусков. Ось X показывает количество значимых запусков, цвета определяют возмущенную мишень, а размер точки представляет медианную статистику Z scTenifoldKnk. Сам ген-мишень был исключен.Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать этот файл.
Дополнительный рисунок 6: Анализ чувствительности обогащения для объединенных, общих и строгих порогов. Функциональное обогащение (A) объединенного консенсуса, определенного значимостью как минимум в трех из пяти запусков; (B) генов, общих как минимум для двух мишеней при соблюдении критерия «три из пяти»; (C) объединенного строгого консенсуса, определенного значимостью как минимум в четырех из пяти запусков; и (D) генов, общих как минимум для двух мишеней при соблюдении критерия «четыре из пяти». Ось x показывает −log₁₀(номинальное P), размер точки отражает количество перекрытий, а цвета обозначают базу данных аннотаций. Закрашенные точки достигли BH-FDR < 0.05, тогда как незакрашенные точки обозначают исследовательские термины с номинальным P < 0.05. Во всех случаях использовался фон регуляторной сети из 1 004 генов.Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать этот файл.
Дополнительная фигура 7: Целеспецифичное функциональное обогащение устойчивых ответов на виртуальный нокаут. Обогащение устойчивых нижестоящих генов после виртуального нокаута (A) ATG7; (B) RPTOR; (C) MAP1LC3A; и (D) CHMP6. Ось x показывает −log₁₀(номинальное P), размер точки отражает количество перекрытий, а цвета обозначают GO: BP, GO: CC, GO: MF, KEGG или Reactome. Закрашенные точки соответствуют BH-FDR < 0.05, в то время как незакрашенные точки обозначают исследовательские термины с номинальным P < 0.05. В качестве фона обогащения использовались 1 004 гена, составляющие сбалансированную по пациентам регуляторную сеть.Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать этот файл.
Дополнительный файл 1: Дополнительные таблицы, подтверждающие многоэтапную приоритизацию генов, связанных с ферроптозом и предрасположенностью к глиобластоме. Данный дополнительный файл содержит все дополнительные таблицы, подтверждающие результаты генетического, транскриптомного и одноклеточного анализов. Он включает скрининг и отбор генов, связанных с ферроптозом, и генетических инструментов; полные результаты менделевской рандомизации на этапе обнаружения и репликации, а также анализ чувствительности, включая оценку гетерогенности, горизонтальной плейотропии и анализ MR-PRESSO; характеристики когорт, анализ дифференциальной экспрессии и кросс-когортный метаанализ генетически приоритизированных генов; а также результаты одноклеточного виртуального нокаута, оценки воспроизводимости, функционального обогащения и анализа общих сетей.Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать этот файл.
Дополнительный файл с кодом 1: скрипты на языках R и Python, использованные для проведения менделевской рандомизации, транскриптомного анализа, виртуального нокаута единичных клеток, функционального обогащения и сетевого анализа, описанных в данном исследовании.Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать этот файл.
Дополнительный файл с кодом 2: Вспомогательные скрипты анализа, процедуры построения графиков и утилиты рабочего процесса, использованные для получения результатов исследования, рисунков и дополнительных выходных данных.Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать этот файл.