Идентификация ключевого генного модуля, связанного с детской пневмонией, с помощью WGCNA
Для идентификации генных модулей, связанных с детской пневмонией, был проведен анализ WGCNA транскриптомных данных цельной крови пациентов с пневмонией и здорового контроля. Анализ кластеризации образцов не выявил явных выбросов, что свидетельствует о хорошем качестве данных для последующего анализа (Рисунок 1A). Метод PCA дополнительно продемонстрировал четкую тенденцию к разделению групп пневмонии и здорового контроля, что указывает на различия в транскриптомных профилях при данных состояниях (Рисунок 1B). Для построения безмасштабной сети гены были ранжированы по медианному абсолютному отклонению; для построения сети были отобраны 5 000 наиболее вариабельных генов, а показатель мягкого порога (soft-thresholding power) был установлен на уровне 15 на основании критерия индекса соответствия безмасштабной топологии (R2 > 0.8) при сохранении относительно низкой средней связности (Рисунок 1C). С использованием этого порога в результате иерархической кластеризации были выявлены несколько генных модулей с различными паттернами экспрессии (Рисунок 1D). Анализ взаимосвязи «модуль — признак» показал, что несколько модулей значительно коррелируют с клиническими фенотипами. В частности, синий модуль продемонстрировал сильную корреляцию как со статусом заболевания (пневмония против здорового контроля), так и с этиологической классификацией, что предполагает его потенциальную роль в прогрессировании заболевания и ответе хозяина (Рисунок 1E).
Кроме того, анализ диаграммы рассеяния зависимости членства в модуле от значимости генов внутри синего модуля продемонстрировал сильную положительную корреляцию (cor = 0.6, p = 2.1e−35), что указывает на то, что гены с высокой степенью связности внутри модуля также были тесно связаны с клиническим признаком (Рисунок 1F).
Связь синего модуля с этиологией бактериальной пневмонии
Для дальнейшего изучения различий в экспрессии генов в зависимости от этиологии пневмонии был проведен анализ WGCNA с использованием нескольких клинических классификаций, включая контрольную группу (C), группу с определенной бактериальной этиологией (DB), группу с определенной вирусной этиологией (DV), группу с вероятной бактериальной этиологией (PB), группу с вероятной вирусной этиологией (PV) и группу с неизвестной этиологией (U). Анализ взаимосвязи между модулем и признаком показал, что несколько модулей демонстрируют значимую корреляцию с конкретными этиологическими подтипами. В частности, синий модуль показал наиболее сильную положительную корреляцию с группой DB, что указывает на его потенциальную роль в реакциях хозяина, специфичных для бактериальной инфекции (Рисунок 2A).
Дендрограмма кластеризации генов и соответствующее распределение по модулям дополнительно подтвердили надежность построения модулей и четкое разделение генных кластеров (Рисунок 2B). Внутри синего модуля анализ зависимости принадлежности к модулю от значимости генов выявил значимую положительную корреляцию (cor = 0.41, p = 7.8e−14), что указывает на то, что высокосвязанные гены в данном модуле также сильно ассоциированы с этиологическим признаком (Рисунок 2C).
Кроме того, сравнение экспрессии собственных генов модуля в различных этиологических группах выявило значимые различия в синем модуле (критерий Краскела–Уоллиса, p = 1.5e−13). В частности, в синем модуле наблюдалась повышенная экспрессия в группах бактериальной пневмонии, особенно в подгруппе DB, по сравнению с другими этиологическими категориями (Рисунок 2D).
Интеграционный анализ позволил выявить восемнадцать генов-кандидатов, связанных с соединениями производных Paeonia и ассоциированных с детской пневмонией
Для выявления генов-кандидатов, ассоциированных с детской пневмонией, и потенциальных мишеней воздействия Paeonia сначала был проведен анализ дифференциальной экспрессии между пациентами с пневмонией и здоровым контролем. На основании этих критериев между образцами с пневмонией и контрольными образцами было выявлено 1 110 дифференциально экспрессируемых генов (ДЭГ), включая 524 гена с повышенной экспрессией и 586 генов с пониженной экспрессией. Список 524 ДЭГ с повышенной экспрессией приведен в Дополнительной таблице S1 (см. также Рисунок 3A). Для дальнейшего уточнения ключевых генов ДЭГ, связанных с пневмонией, были сопоставлены с генами, ассоциированными с фенотипом DB, и прогнозируемыми мишенями Paeonia. Этот интеграционный анализ позволил выделить 18 общих генов, что указывает на их потенциальную роль в прогрессировании заболевания и в ответах, опосредованных Paeonia (Рисунок 3B).
Для визуализации взаимосвязей между активными компонентами Paeonia и выявленными генами-кандидатами была построена сеть взаимодействий «соединение–мишень», которая выявила обширную связность между соединениями и мишенями (Дополнительная таблица S2 и Рисунок 3C). Для изучения биологических функций этих 18 генов был проведен анализ функционального обогащения. Обогащение по биологическим процессам GO связало гены-кандидаты преимущественно с иммунными и воспалительными функциями, включая регуляцию воспалительного ответа, ответ на пептидные гормоны, положительную регуляцию метаболизма активных форм кислорода и регуляцию интерферон-опосредованного сигналинга II типа (Рисунок 3D). Анализ KEGG дополнительно показал, что гены были обогащены в путях, связанных с воспалением и иммунитетом, таких как сигнальные пути IL-17 и NF-κB, а также в метаболических и эндокринных путях, включая сигналинг глюкагона и биосинтез стероидных гормонов (Рисунок 3D).
Обогащение генов-кандидатов в нейтрофилах и альвеолярных макрофагах при анализе транскриптомики единичных клеток
Для изучения клеточного распределения генов-кандидатов в контексте экспериментальной пневмонии был проанализирован набор данных scRNA-seq легких мыши GSE295484. Был проведен анализ контроля качества для оценки достоверности данных. Распределения количества детектированных генов, числа UMI, а также процентного содержания митохондриальных и рибосомальных генов свидетельствовали об общем высоком качестве данных единичных клеток в обработанной матрице (Рисунок 4A). На диаграммах рассеяния показаны контрольные пороги детекции генов и содержания митохондрий, использованные при визуализации контроля качества (Рисунок 4B).
После нормализации и снижения размерности клетки были кластеризованы и визуализированы с помощью UMAP. Были выявлены отдельные популяции клеток, включая нейтрофилы, альвеолярные макрофаги, моноциты, эпителиальные клетки, а также другие типы иммунных и стромальных клеток, что продемонстрировало клеточную гетерогенность микроокружения легких при пневмонии (Рисунок 4C). Для оценки активности 18 генов-кандидатов на уровне отдельных клеток был проведен анализ AUCell. Результаты показали, что генная сигнатура была преимущественно обогащена в нейтрофилах и альвеолярных макрофагах, о чем свидетельствуют более высокие значения AUC в этих популяциях клеток (Рисунок 4D).
Воспалительные гены, связанные с мишенями соединений, полученных из Paeonia, в модели бактериальной пневмонии у мышей
Для дальнейшего изучения динамики иммунных клеток в экспериментальной модели пневмонии у мышей были проанализированы доли альвеолярных макрофагов и нейтрофилов в группах комнатного воздуха, PBS и E. coli через 48 ч и 96 ч после аспирации. Через 48 ч при инфекции E. coli наблюдалось заметное снижение количества альвеолярных макрофагов по сравнению с условиями воздуха и PBS, в то время как доля нейтрофилов существенно увеличилась (Рисунок 5A). Аналогичная тенденция наблюдалась через 96 ч: доля нейтрофилов оставалась повышенной в ответ на стимуляцию E. coli , тогда как уровни альвеолярных макрофагов были сравнительно ниже. Эти результаты указывают на значительную экспансию нейтрофилов при бактериальной инфекции. Для изучения функциональных характеристик нейтрофилов были определены гены-маркеры нейтрофилов и проведен анализ функционального обогащения. Обогащение по базе KEGG связало гены-маркеры нейтрофилов с воспалительной сигнализацией, включая пути TNF, MAPK и рецепторов лектина C-типа (Рисунок 5B). Термины биологических процессов GO также были сосредоточены на функциях иммунного ответа, таких как миграция лейкоцитов, межклеточная адгезия лейкоцитов, положительная регуляция защитного ответа и ответ на молекулы бактериального происхождения (Рисунок 5B). Чтобы выявить ключевые гены, связывающие активность нейтрофилов, пневмонию и мишени Paeonia, гены-маркеры нейтрофилов были сопоставлены с ранее определенными 18 генами-кандидатами. Этот анализ выявил три общих гена: MMP9, PYGL и GADD45A (Дополнительная таблица S3 и Рисунок 5C). Наконец, визуализация экспрессии генов на уровне отдельных клеток показала, что эти три гена экспрессировались преимущественно в популяциях нейтрофилов (Рисунок 5D), что дополнительно подтверждает их потенциальную роль в нейтрофил-опосредованных воспалительных реакциях.
Прогнозируемая аффинность связывания катехина с выбранными белками при молекулярном докинге
Для дальнейшей оценки потенциальных взаимодействий катехина с белками был проведен анализ молекулярного докинга между выбранными белками (MMP9, PYGL и GADD45A) и катехином — активным соединением, полученным из Paeonia. Кристаллические структуры GADD45A, MMP9 и PYGL были получены из Protein Data Bank, а 3D-структура катехина была взята из базы данных PubChem. Результаты докинга показали, что катехин может связываться с участками всех трех выбранных белков с энергиями связывания −6.3 kcal/mol для GADD45A, −7.6 kcal/mol для MMP9 и −8.0 kcal/mol для PYGL (Рисунок 6). Среди этих белков катехин продемонстрировал самую высокую прогнозируемую аффинность связывания с PYGL, затем с MMP9 и GADD45A, что указывает на потенциальное преимущественное взаимодействие с белком, связанным с метаболизмом.
На молекулярном уровне катехин образовывал множественные водородные связи и гидрофобные взаимодействия с ключевыми аминокислотными остатками в каждом белке. В GADD45A катехин взаимодействовал с такими остатками, как GLN33 и TRP135. В MMP9 наблюдалось образование стабильных водородных связей с остатками, включая GLN227, TYR248 и HIS236. Аналогичным образом в PYGL катехин образовывал множественные водородные связи с такими остатками, как LYS554 и ASN631, что способствовало стабильности связывания. Помимо водородных связей, анализ взаимодействий выявил силы Ван-дер-Ваальса и π-взаимодействия, что указывает на многомодальный характер связывания, повышающий стабильность предсказанных комплексов лиганд–белок. В совокупности эти результаты позволяют предположить, что катехин может образовывать стабильные предсказанные комплексы с MMP9, PYGL и GADD45A. Однако терапевтическая значимость этих взаимодействий требует дальнейшего экспериментального подтверждения.
Предполагаемые стабильные взаимодействия между катехином и выбранными белками
На основании поз докинга, полученных в результате молекулярного докинга, было проведено моделирование молекулярной динамики продолжительностью 100 ns для дальнейшей оценки стабильности комплексов катехин-белок. Анализ RMSD показал, что все три комплекса белок-лиганд достигли равновесия в течение периода моделирования. Среди них комплексы PYGL–катехин и MMP9–катехин демонстрировали относительно стабильные колебания RMSD, в то время как комплекс GADD45A–катехин показал несколько более высокие колебания, которые, тем не менее, оставались в допустимом диапазоне (Рисунок 7A). Анализ Rg показал, что все комплексы сохраняли стабильную структурную компактность на протяжении всего моделирования с минимальными изменениями во времени (Рисунок 7B). Аналогично, анализ SASA продемонстрировал стабильные уровни экспонирования для всех комплексов, что дополнительно подтверждает их структурную стабильность (Рисунок 7C). Анализ водородных связей выявил устойчивые взаимодействия между катехином и выбранными белками. Комплекс PYGL–катехин сохранял большее количество водородных связей с течением времени по сравнению с MMP9 и GADD45A, что указывает на более сильные и стабильные связывающие взаимодействия (Рисунок 7D).
Гибкость на уровне остатков оценивали с помощью RMSF. Результаты показали, что большинство остатков характеризовались низкими колебаниями, и лишь в нескольких областях наблюдалась более высокая гибкость; это указывает на то, что связывание лиганда не вызвало значительной структурной нестабильности белков (Рисунок 7E). В совокупности эти данные свидетельствуют о том, что катехин образует стабильные предсказанные комплексы с MMP9, PYGL и GADD45A, при этом наибольшая стабильность наблюдалась во взаимодействии PYGL–катехин. Данные результаты подтверждают стабильность предсказанных взаимодействий между катехином и выбранными белками, что служит вычислительным обоснованием для дальнейшей экспериментальной проверки.
Доступность данных:
В данном исследовании анализировались общедоступные наборы данных. Набор данных bulk RNA-seq доступен в Gene Expression Omnibus (GEO) под номером доступа GSE261482 (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo/query/acc.cgi?acc=GSE261482), а набор данных scRNA-seq легкого мыши доступен под номером доступа GSE295484 (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo/query/acc.cgi?acc=GSE295484). Обработанные результаты, использованные в статье, представлены в виде Дополнительной таблицы S1, Дополнительной таблицы S2 и Дополнительной таблицы S3.

Рисунок 1. Построение WGCNA и идентификация модулей, ассоциированных с заболеванием (A) Кластеризация образцов была выполнена на основе профилей экспрессии генов; соответствующие аннотации признаков отображены под дендрограммой. (B) Анализ главных компонент показывает распределение образцов вдоль первых двух главных компонент. (C) Параметр мягкого порога оценивался с использованием индекса соответствия безмасштабной топологии и средней связности. (D) Гены были кластеризованы в соответствии с топологическим перекрытием; принадлежность к модулям указана цветом. (E) Корреляции собственных генов модулей с клиническими признаками представлены в виде тепловой карты. (F) Показана взаимосвязь между принадлежностью к модулю и значимостью генов для генов в синем модуле. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Рисунок 2. WGCNA-анализ на основе этиологии пневмонии. (A) Представлены корреляции собственных генов модулей для групп этиологии, включая контрольную группу, подтвержденную бактериальную, подтвержденную вирусную, вероятную бактериальную, вероятную вирусную и неизвестную. (B) Модули генов были определены на основе дендрограммы кластеризации по топологическому перекрытию. (C) Для синего модуля построены графики принадлежности к модулю и значимости генов. (D) Сравнение экспрессии собственного гена синего модуля в различных группах этиологии. Сокращения: WGCNA = взвешенный анализ сетей коэкспрессии генов; C = контрольная группа; DB = подтвержденная бактериальная; DV = подтвержденная вирусная; PB = вероятная бактериальная; PV = вероятная вирусная; U = неизвестная. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Рисунок 3. Идентификация и функциональный анализ генов-кандидатов. (A) График «вулкан», демонстрирующий дифференциально экспрессируемые гены в образцах с пневмонией и контрольных образцах. (B) Диаграмма Венна, показывающая пересечение между дифференциально экспрессируемыми генами при пневмонии, определенными бактериально-ассоциированными генами и целевыми генами Paeonia. (C) Сеть взаимодействия «соединение-мишень» между активными компонентами Paeonia и генами-кандидатами. (D) Столбчатые диаграммы, показывающие обогащение биологических процессов Gene Ontology (слева) и путей KEGG (справа) для перекрывающихся генов. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Рисунок 4. Транскриптомный анализ отдельных клеток при пневмонии. (A) Скрипичные диаграммы, обобщающие показатели контроля качества, включая nCount_RNA, nFeature_RNA, процент митохондриальных генов и процент рибосомальных генов. (B) Диаграммы рассеяния, показывающие взаимосвязь между количеством UMI, количеством обнаруженных генов на клетку и процентом митохондриальных генов. (C) Визуализация UMAP клеточных кластеров с аннотацией по типам клеток. (D) График UMAP, показывающий баллы AUCell для сигнатуры генов-кандидатов в отдельных клетках. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Рисунок 5. Динамика нейтрофилов и идентификация ключевых генов. (A) Диаграммы размаха, показывающие пропорции альвеолярных макрофагов и нейтрофилов при различных условиях (воздух, PBS и E. coli) через 48 ч и 96 ч. (B) Столбчатые диаграммы, показывающие обогащение путей KEGG (слева) и обогащение биологических процессов GO (справа) для marker-генов нейтрофилов. (C) Диаграмма Венна, показывающая пересечение marker-генов нейтрофилов и общих мишеней бактериальной пневмонии и Paeonia. (D) Графики UMAP, показывающие паттерны экспрессии MMP9, PYGL и GADD45A в различных популяциях клеток. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Рисунок 6. Молекулярный докинг катехина с выбранными белками. Трехмерные структуры комплексов белок-лиганд, демонстрирующие связывание катехина с GADD45A (вверху), MMP9 (в центре) и PYGL (внизу). На увеличенных фрагментах показаны области связывания и контакты с ключевыми аминокислотными остатками. Двумерные диаграммы представляют водородные связи и другие взаимодействия между катехином и выбранными белками. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Рисунок 7. Молекулярно-динамическое моделирование комплексов белок-лиганд. (A) Среднеквадратичное отклонение комплексов в ходе моделирования. (B) Изменение радиуса инерции с течением времени. (C) Доступная растворителю площадь поверхности в ходе моделирования. (D) Количество водородных связей между катехином и целевыми белками с течением времени. (E) Среднеквадратичные флуктуации остатков белка в каждом комплексе. Сокращения: RMSD = среднеквадратичное отклонение; Rg = радиус инерции; SASA = доступная растворителю площадь поверхности; RMSF = среднеквадратичные флуктуации. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
Дополнительная таблица S1. Повышающие экспрессию дифференциально экспрессируемые гены в образцах при педиатрической пневмонии по сравнению со здоровым контролем, включая символы генов, значения log2 fold change, P-значения, скорректированные P-значения и соответствующие статистические данные limma. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать этот файл.
Дополнительная таблица S2. Таблица взаимодействий соединений Paeonia и мишеней, использованная для сетевого анализа, включая идентификаторы соединений, названия соединений и соответствующие гены-мишени. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать этот файл.
Дополнительная таблица S3. Таблица маркерных генов отдельных клеток из GSE295484, включающая P-значения, средние значения log2 fold change, проценты экспрессии, скорректированные P-значения, аннотации клеточных кластеров и символы генов. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать этот файл.