Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Исследовательская статья

ARHGAP22 как потенциальный прогностический биомаркер при светлоклеточном почечно-клеточном раке: анализ иммунитета опухоли и сетей коэкспрессии

92 просмотров

⸱

DOI:

10.3791/72307

⸱

3 сентября 2026 г.

* These authors contributed equally

В этой статье

Краткое содержание

В данном исследовании оценивается экспрессия ARHGAP22 при светлоклеточной почечноклеточной карциноме и ее связь с прогнозом, клинико-патологическими характеристиками, иммунным микроокружением опухоли и расчетной чувствительностью к лекарственным препаратам.

Аннотация

Светлоклеточный почечноклеточный рак (сКПР) является наиболее распространенным подтипом рака почки и характеризуется значительной клинической гетерогенностью, что подчеркивает необходимость в надежных прогностических биомаркерах. В данном исследовании с использованием транскриптомных и клинических данных когорты The Cancer Genome Atlas Kidney Renal Clear Cell Carcinoma (TCGA-KIRC), а также внешних валидационных данных и сведений об экспрессии белков из Human Protein Atlas (HPA) оценивались характер экспрессии, прогностическая значимость и иммунные ассоциации ARHGAP22 при сКПР. Экспрессия ARHGAP22 сравнивалась в опухолевых и прилегающих нормальных тканях, оценивалась ее связь с общей выживаемостью, клинико-патологическими характеристиками, показателями микроокружения опухоли и расчетными фракциями иммунных клеток. Также были проведены анализы коэкспрессии и функционального обогащения для определения потенциальных биологических связей. На транскриптомном уровне ARHGAP22 был значительно повышен в тканях сКПР, и соответствующие различия наблюдались на иммуногистохимических изображениях. Высокая экспрессия ARHGAP22 была связана с более короткой общей выживаемостью, запущенными клинико-патологическими признаками и более высокими значениями ImmuneScore, StromalScore и ESTIMATEScore. Анализ на основе CIBERSORT показал, что в группе с высокой экспрессией после коррекции на уровень ложных открытий наблюдались более высокие расчетные фракции макрофагов M2 и регуляторных Т-клеток, а также более низкие расчетные фракции наивных В-клеток, покоящихся тучных клеток и активированных дендритных клеток. Анализы функционального обогащения связали гены, ассоциированные с ARHGAP22, с иммунными процессами, миграцией клеток, а также хемокин- и цитокин-опосредованными сигнальными путями. Эти результаты позволяют предположить, что ARHGAP22 может служить потенциальным прогностическим и иммунным биомаркером при сКПР, хотя требуется дальнейшая независимая клиническая и экспериментальная валидация.

Введение

Светлоклеточный почечно-клеточный рак (спкКР) является наиболее распространенным гистологическим подтипом почечно-клеточного рака, составляя примерно 70%–80% всех случаев и внося значительный вклад в смертность, связанную с раком почки1˒2. За последние годы общая заболеваемость почечно-клеточным раком возросла, при этом наблюдаются заметные эпидемиологические различия между регионами. Установленные факторы риска включают курение, ожирение, гипертонию и хроническую болезнь почек3˒4. Светлоклеточный почечно-клеточный рак характеризуется выраженной агрессивностью и молекулярной гетерогенностью. У части пациентов при постановке диагноза обнаруживается метастатическое заболевание, а послеоперационные рецидивы и прогрессирование остаются частыми явлениями2˒5. На молекулярном уровне инактивация гена von Hippel–Lindau (VHL) и устойчивая активация сигналинга индуцибельного фактора гипоксии (HIF) признаны ключевыми событиями в патогенезе спкКР и сопровождаются широкомасштабными геномными и эпигенетическими изменениями6˒7. Хотя таргетная терапия и иммунотерапия улучшили исходы при распространенных формах заболевания, ответы на лечение остаются крайне неоднородными, что подчеркивает необходимость в надежных прогностических и иммуносвязанных биомаркерах8,9,10.

Rho-гуанозинтрифосфатазы (Rho GTPases) представляют собой молекулярные переключатели, которые регулируют перестройку цитоскелета, полярность клеток, адгезию, миграцию и инвазию, и играют многогранную роль в туморогенезе и прогрессировании рака11˒12. Помимо регуляции пролиферации, апоптоза и подвижности опухолевых клеток, сигналинг Rho GTPase способствует ангиогенезу, воспалительным реакциям и перестройке иммунного микроокружения опухоли13,14,15. Биологическая значимость сигналинга Rho GTPase при прозрачноклеточном почечноклеточном раке (ccRCC) привлекает все больше внимания. Было сообщено, что сигналинг Rac способствует росту ccRCC и ангиогенному переключению, тогда как ccRCC, вызванный VHL/HIF, может зависеть от пути Rho GTPase/Rho-ассоциированной протеинкиназы с обмоточным доменом (ROCK)16˒17. Генные сигнатуры, связанные с Rho GTPase, также ассоциировались с плохим прогнозом, иммуносупрессивным статусом и дифференциальным ответом на иммунотерапию при ccRCC, что позволяет предположить, что данный путь может представлять собой важную молекулярную связь между прогрессированием опухоли и опухолевым иммунитетом18˒19.

ARHGAP22 принадлежит к семейству Rho GTPase-активирующих белков (RhoGAP) и подсемейству, связанному с FilGAP, и функционирует преимущественно как специфичный для Rac RhoGAP, участвующий в антагонистической регуляции оси RhoA–Rac120˒21. Белок содержит плекстриновый гомологический (PH) домен и RhoGAP-домен и может регулировать активность Rac через эндосомальную локализацию и транспорт к плазматической мембране, влияя тем самым на формирование ламеллиподий, распластывание и миграцию клеток20˒22˒23. Предыдущие исследования связали ARHGAP22 с динамикой цитоскелета, подвижностью опухолевых клеток, иммунным микроокружением опухоли, а также с потенциальной ролью биомаркера при нескольких видах злокачественных новообразований20,23,24,25. Однако профиль экспрессии, прогностическая значимость, иммунные ассоциации и потенциальная терапевтическая релевантность ARHGAP22 при прозрачноклеточном почечно-клеточном раке (ccRCC) остаются недостаточно изученными. В связи с этим в настоящем исследовании оценивалось, связана ли экспрессия ARHGAP22 с клиникопатологическим прогрессированием, прогнозом для пациентов, иммунной инфильтрацией, расчетной чувствительностью к препаратам и сетями коэкспрессии при ccRCC, с целью определения его потенциальной ценности в качестве прогностического и иммуносвязанного биомаркера.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

В данном исследовании использовались общедоступные обезличенные данные из TCGA, HPA и других баз данных с открытым доступом; работа не предусматривала набора новых участников-людей, проведения экспериментов на животных или использования идентифицируемой частной информации. Таким образом, дополнительного одобрения институционального комитета по этике и информированного согласия не требовалось. Подробная информация об инструментах, использованных в протоколе, представлена в Таблице материалов.

1. Общедоступные наборы данных и биоинформационный анализ
Были использованы общедоступные наборы данных; прямых исследований с участием людей или животных не проводилось. Транскриптомные и клинические данные были получены из проекта The Cancer Genome Atlas Kidney Renal Clear Cell Carcinoma (TCGA-KIRC), а данные об экспрессии белков — из базы Human Protein Atlas. Данный вычислительный подход позволил эффективно проскринировать крупномасштабные транскриптомные и клинические наборы данных, способствовал предварительному выявлению потенциальных биомаркеров и заложил основу для последующей экспериментальной валидации. Все вычислительные анализы были выполнены с использованием статистического программного обеспечения.

2. Сбор данных и выбор образцов
Был осуществлен доступ к порталу данных Genomic Data Commons, где был выбран проект TCGA-KIRC. Были загружены данные профилирования транскриптома и соответствующая клиническая информация для светлоклеточного почечно-клеточного рака (ccRCC). Для последующего транскриптомного анализа использовались данные об экспрессии матричной РНК, нормализованные по количеству транскриптов на миллион (TPM). Значения экспрессии ARHGAP22 были извлечены из транскриптомной матрицы TCGA-KIRC и сопоставлены с соответствующими клиническими записями с помощью штрихкодов образцов TCGA. В анализ были включены ткани первичной опухоли и прилегающие нормальные ткани почки, для которых были доступны данные об экспрессии ARHGAP22 и клинические аннотации. Образцы с отсутствующими значениями экспрессии ARHGAP22, неполной ключевой клинической информацией или данными о выживаемости, дублирующимися записями или временем выживаемости менее 30 дней были исключены. После фильтрации для дальнейшего анализа было оставлено 533 образца опухоли и 72 образца прилегающей нормальной ткани.

3. Панрак-анализ экспрессии
Панрак-анализ экспрессии ARHGAP22 проводили с помощью модуля Gene_DE программы TIMER2.0 (http://timer.cistrome.org/; доступ 12 апреля 2026 г.). Данные РНК-секвенирования TCGA использовали для сравнения экспрессии ARHGAP22 в опухолевых тканях и соответствующих нормальных тканях при различных типах рака. Значения экспрессии были представлены как log2(TPM), а дифференциальная экспрессия оценивалась с помощью критерия суммы рангов Уилкоксона, реализованного в TIMER2.0. Двустороннее значение P менее 0,05 считалось статистически значимым.

4. Внешняя валидация по данным GEO
Внешняя валидация была проведена с использованием набора данных GSE167573 из базы Gene Expression Omnibus с помощью онлайн-платформы BEST (https://rookieutopia.hiplot.com.cn/app_direct/BEST/; доступна 9 июля 2026 г.). Экспрессию ARHGAP22 в тканях ccRCC и нормальных тканях почек сравнивали с использованием нормализованных данных экспрессии, предоставленных платформой, и оценивали с помощью непарированного t-критерия Стьюдента. Для анализа выживаемости пациенты были разделены на группы с высокой и низкой экспрессией с использованием метода оптимального порога данной платформы; общая выживаемость оценивалась с помощью анализа Каплана–Мейера с применением логарифмического рангового критерия. Двустороннее значение P менее 0,05 считалось статистически значимым.

5. Анализ экспрессии ARHGAP22
Данные об экспрессии матричной РНК ARHGAP22, нормализованные по TPM, были извлечены из когорты TCGA-KIRC и преобразованы в log2(TPM + 1) перед проведением статистического анализа. Была оценена разница в экспрессии ARHGAP22 между тканями первичной опухоли и прилегающими нормальными тканями почек. Для непарных сравнений между опухолевыми и нормальными тканями использовался критерий суммы рангов Уилкоксона. Для парного анализа с помощью штрих-кодов пациентов TCGA были определены соответствующие пары «опухоль-норма», и для сравнения экспрессии ARHGAP22 между прилегающими нормальными тканями и соответствующими опухолевыми тканями применялся критерий знаковых рангов Уилкоксона. Двустороннее значение P < 0,05 считалось статистически значимым.

6. Анализ выживаемости и рабочих характеристик приемника
Анализ выживаемости и зависящий от времени анализ рабочих характеристик приемника (ROC-анализ) проводили с использованием образцов опухолей TCGA-KIRC с имеющимися данными клинического наблюдения. Общая продолжительность выживаемости была переведена из дней в годы. Пациенты были разделены на группы с высокой и низкой экспрессией ARHGAP22 с использованием медианного значения экспрессии ARHGAP22; этот же порог последовательно применялся во всех анализах, включающих группировку на основе экспрессии. Кривые Каплана-Мейера были построены с использованием пакетов survival и survminer. Различия между группами оценивали с помощью лог-рангового критерия. Регрессия пропорциональных рисков Кокса использовалась для оценки отношений рисков и 95% доверительных интервалов. Зависящие от времени ROC-кривые были построены с помощью пакета timeROC. Площади под кривой для периодов в 1, 3 и 5 лет рассчитывали методом взвешивания Алена. Двустороннее значение P менее 0,05 считалось статистически значимым.

7. Анализ клинико-патологических ассоциаций
Связь между экспрессией ARHGAP22 и клинико-патологическими характеристиками анализировали с использованием образцов опухолей TCGA-KIRC. Нормальные образцы были исключены. Возраст разделили на две категории: 65 лет и моложе, а также старше 65 лет. Образцы с неизвестными или отсутствующими аннотациями исключали из соответствующего анализа. Для сравнения двух групп использовали критерий ранговых сумм Уилкоксона, а для сравнения трех и более групп — критерий Краскела — Уоллиса. Скрипичные диаграммы (violin plots) создавали с помощью пакетов ggpubr, ggplot2 и scales. Для визуализации тепловой карты пациентов разделили на группы с высокой и низкой экспрессией ARHGAP22, используя медианное значение в качестве порога. Связи между группами экспрессии и клинико-патологическими переменными оценивали с помощью критерия хи-квадрат. Тепловые карты генерировали с использованием ComplexHeatmap после предварительной обработки с помощью limma. Двустороннее значение P < 0,05 считали статистически значимым.

8. Построение номограммы
Прогностическая номограмма была построена путем интеграции экспрессии ARHGAP22 с имеющимися клинико-патологическими характеристиками в модели регрессии пропорциональных рисков Кокса. Модель использовалась для оценки общей выживаемости через 1, 3 и 5 лет в когорте TCGA-KIRC. Индивидуальные показатели риска пациентов рассчитывались с использованием построенной модели Кокса. Калибровочные кривые для общей выживаемости через 1, 3 и 5 лет были созданы методом Каплана–Мейера с 1000 итерациями бутстреп-ресемплинга. Оценивалось соответствие между вероятностями выживаемости, предсказанными номограммой, и наблюдаемыми исходами выживаемости. Регрессия Кокса выполнялась с использованием пакета survival. Визуализация номограммы и калибровочный анализ проводились с помощью regplot и rms. Двустороннее значение P менее 0,05 считалось статистически значимым.

9. Анализ коэкспрессии
Транскриптомные данные образцов опухолей TCGA-KIRC были использованы для оценки взаимосвязей коэкспрессии между ARHGAP22 и всеми остальными генами с помощью корреляционного анализа Пирсона. Гены с абсолютным коэффициентом корреляции Пирсона более 0,6 и значением P менее 0,001 были определены как значимо коэкспрессируемые гены. Значимо коэкспрессируемые гены были ранжированы в соответствии с абсолютным значением коэффициента корреляции. Гены с наивысшим рангом были выбраны для построения корреляционной матрицы, а для визуализации сети коэкспрессии, связанной с ARHGAP22, была построена хордовая диаграмма.

10. Анализ дифференциально экспрессируемых генов и функционального обогащения
Анализ дифференциальной экспрессии между группами с высоким и низким уровнем экспрессии ARHGAP22 проводили с использованием критерия суммы рангов Вилкоксона с поправкой на ложную скорость обнаружения (FDR). Гены с абсолютным значением log2 кратности изменения (fold change) более 1 и FDR менее 0,05 определялись как статистически значимо дифференциально экспрессируемые гены. Результаты визуализировали с помощью графика «вулкан» (volcano plot) и тепловой карты. Анализ обогащения по Gene Ontology и Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes проводили с использованием пакета clusterProfiler. Символы генов были преобразованы в идентификаторы Entrez с помощью org.Hs.eg.db. Термины Gene Ontology и пути Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes, имеющие номинальное значение P менее 0,05 и скорректированное по FDR значение P менее 0,05, считались статистически значимо обогащенными. Анализ обогащения наборов генов (GSEA) проводили с использованием наборов генов Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes из файла базы данных молекулярных сигнатур c2.cp.kegg.v7.4.symbols.gmt. Гены ранжировали по значению log2 кратности изменения, а наборы генов с номинальным P-value < 0,05 считали статистически значимо обогащенными.

11. Анализ иммунной инфильтрации и иммунных контрольных точек
Анализ иммунной инфильтрации и иммунных контрольных точек проводили с использованием образцов опухолей TCGA-KIRC. Значения StromalScore, ImmuneScore и ESTIMATEScore рассчитывали с помощью пакета estimate. Доли иммунных клеток оценивали с помощью R-скрипта CIBERSORT с использованием 1 000 перестановок и квантильной нормализации. Были отобраны образцы, для которых P-значение деконволюции CIBERSORT было меньше 0,05. Пациентов разделили на группы с высокой и низкой экспрессией ARHGAP22 (ARHGAP22-high и ARHGAP22-low) в соответствии с медианным уровнем экспрессии ARHGAP22. Различия в показателях ESTIMATE и долях иммунных клеток между двумя группами оценивали с помощью критерия суммы рангов Уилкоксона. Корреляцию между экспрессией ARHGAP22 и генами иммунных контрольных точек оценивали методом корреляционного анализа Пирсона. P-значения при множественных сравнениях иммунных клеток и тестах корреляции иммунных контрольных точек корректировали с помощью метода FDR Бенджамина–Хохберга; статистически значимым считался показатель FDR менее 0,05. Значимые по FDR гены иммунных контрольных точек визуализировали с помощью тепловых карт корреляции, построенных с помощью corrplot. Предобработка и визуализация данных выполнялись преимущественно с использованием limma, ggpubr и corrplot.

12. Прогнозирование чувствительности к препаратам
Данные транскриптомики опухолей TCGA-KIRC использовались после исключения образцов нормальной ткани. Значения расчетной полумаксимальной ингибирующей концентрации вычисляли с помощью пакета oncoPredict и эталонного набора данных Genomics of Drug Sensitivity in Cancer 2. Пациентов разделили на группы с высоким и низким уровнем экспрессии ARHGAP22, используя медианное значение экспрессии ARHGAP22. Сравнение расчетных значений полумаксимальной ингибирующей концентрации между группами проводили с помощью критерия суммы рангов Вилкоксона. Значения P при сравнении нескольких препаратов корректировали методом Бенджамини — Хохберга; статистически значимым считали уровень FDR менее 0.05. Результаты интерпретировали как расчетные оценки чувствительности к препаратам, а не как экспериментально подтвержденные или клинически наблюдаемые ответы на терапию.

13. Валидация по атласу белков человека (Human Protein Atlas)
Был осуществлен доступ к базе данных Human Protein Atlas и проведен поиск по ARHGAP22. Был изучен раздел «Ткани» (Tissue) для оценки экспрессии белка ARHGAP22 в нормальной ткани почки. Затем был открыт раздел «Патология» (Pathology), выбрана светлоклеточная почечно-клеточная карцинома и изучена экспрессия белка ARHGAP22 в опухолевой ткани. Были получены и отобраны репрезентативные иммуногистохимические изображения нормальной ткани почки и ткани ccRCC для включения в рукопись с целью сравнения экспрессии белка ARHGAP22 в нормальных и опухолевых тканях.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Общий профиль экспрессии ARHGAP22 в различных типах рака
Общий транскрипционный профиль показал выраженную гетерогенность экспрессии ARHGAP22 в различных типах опухолей и соответствующих нормальных тканях (Рисунок 1). В нескольких типах солидных опухолей наблюдалась общая тенденция к повышению экспрессии ARHGAP22. Экспрессия ARHGAP22 была значимо выше в опухолевых тканях, чем в соответствующих нормальных тканях при инвазивной карциноме молочной железы, холангиокарциноме,...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Почечно-клеточный рак (ПКР) является одним из наиболее распространенных злокачественных новообразований мочевыделительной системы, а светлоклеточный почечно-клеточный рак (сПКР) представляет собой преобладающий гистологический подтип и является основной причиной смертности, связанной с ПКР. За последние годы общая заболеваемость ПКР возросла, при этом наблюдается заметная географическая вариативность. Установленными факторами риска являются курение, ожирение, гипертония и хроническая болезнь почек3

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Благодарности

В данном исследовании использовались общедоступные данные The Cancer Genome Atlas (TCGA). Мы выражаем благодарность исследовательской сети TCGA за создание и предоставление этих ресурсов.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
circlize R packageVersion 0.4.16CRANИспользуется для построения циркос-диаграмм и хордовых диаграмм.
clusterProfiler R packageVersion 4.12.0BioconductorИспользуется для анализа обогащения GO, KEGG и GSEA.
ComplexHeatmap R packageVersion 2.20.0BioconductorИспользуется для визуализации сложных тепловых карт и тепловых карт клинических аннотаций.
e1071 R packageVersion 1.7.16CRANИспользуется для регрессии на основе метода опорных векторов в анализе с применением CIBERSORT.
enrichplot R packageVersion 1.24.0BioconductorИспользуется для визуализации результатов функционального обогащения.
estimate R packageVersion 1.0.13R package/source packageИспользуется для расчета показателей стромального, иммунного компонентов и общего балла ESTIMATE.
ggExtra R packageVersion 0.10.1CRANИспользуется для построения диаграмм рассеяния с маргинальными распределениями плотности.
ggplot2 R packageVersion 3.5.1CRANИспользуется для общей визуализации данных.
ggpubr R packageVersion 0.6.0CRANИспользуется для построения диаграмм размаха (boxplot), скрипичных диаграмм и статистических сравнений.
ggrepel R packageVersion 0.9.5CRANИспользуется для создания неперекрывающихся текстовых меток на вулкан-плотах.
limma R packageVersion 3.60.4BioconductorИспользуется для предварительной обработки данных экспрессии и анализа дифференциальной экспрессии.
oncoPredict R packageVersion 1.2CRANИспользуется для прогнозирования чувствительности к препаратам на основе транскриптомных данных.
org.Hs.eg.db R packageVersion 3.19.1BioconductorИспользуется для аннотации генов и преобразования символов генов в идентификаторы Entrez.
pheatmap R packageVersion 1.0.12CRANИспользуется для визуализации тепловых карт.
preprocessCore R packageVersion 1.68.0BioconductorИспользуется для квантильной нормализации в анализе с применением CIBERSORT.
R softwareVersion 4.4.0R Foundation for Statistical ComputingИспользуется для статистического анализа и визуализации.
RColorBrewer R packageVersion 1.1.3CRANИспользуется для генерации цветовых палитр при визуализации.
regplot R packageVersion 1.1CRANИспользуется для визуализации номограмм.
reshape2 R packageVersion 1.4.4CRANИспользуется для изменения структуры данных перед визуализацией.
rms R packageVersion 6.8.1CRANИспользуется для построения прогностических моделей, анализа калибровки и анализа с применением номограмм.
scales R packageVersion 1.4.0CRANИспользуется для настройки масштаба и прозрачности цветов.
survival R packageVersion 3.5.8CRANИспользуется для регрессии Кокса и анализа выживаемости по методу Каплана-Мейера.
survminer R packageVersion 0.4.9CRANИспользуется для визуализации кривых выживаемости Каплана-Мейера.
timeROC R packageVersion 0.4CRANИспользуется для анализа зависимых от времени ROC-кривых.

Ссылки

  1. Winter TD et al. Using Mendelian randomization to investigate etiologic heterogeneity across renal cell carcinoma subtypes. Int J Epidemiol. 2025;54(6):dyaf177. https://doi.org/10.1093/ije/dyaf177
  2. Hsieh JJ et al. Renal cell carcinoma. Nat Rev Dis Primers. 2017;3:17009. https://doi.org/10.1038/nrdp.2017.9
  3. Capitanio U et al. Epidemiology of renal cell carcinoma. Eur Urol. 2019;75(1):74-84.
  4. Siegel RL, Miller KD, Fuchs HE, Jemal A. Cancer statistics, 2022. CA Cancer J Clin. 2022;72(1):7-33.
  5. Wiechno P et al. Contemporary treatment of metastatic renal cell carcinoma. Med Oncol. 2018;35(12):156. https://doi.org/10.1007/s12032-018-1217-1
  6. Chen W et al. Targeting renal cell carcinoma with a HIF-2 antagonist. Nature. 2016;539(7627):112-117.
  7. Rydzanicz M, Wrzesiński T, Bluyssen HA, Wesoły J. Genomics and epigenomics of clear cell renal cell carcinoma: recent developments and potential applications. Cancer Lett. 2013;341(2):111-126.
  8. Barata PC, Rini BI. Treatment of renal cell carcinoma: current status and future directions. CA Cancer J Clin. 2017;67(6):507-524.
  9. Chowdhury N, Drake CG. Kidney cancer: an overview of current therapeutic approaches. Urol Clin North Am. 2020;47(4):419-431.
  10. Gulati S, Vaishampayan U. Current state of systemic therapies for advanced renal cell carcinoma. Curr Oncol Rep. 2020;22(3):26. https://doi.org/10.1007/s11912-020-0892-1
  11. Haga RB, Ridley AJ. Rho GTPases: regulation and roles in cancer cell biology. Small GTPases. 2016;7(4):207-221.
  12. Sahai E, Marshall CJ. RHO-GTPases and cancer. Nat Rev Cancer. 2002;2(2):133-142.
  13. Bustelo XR. RHO GTPases in cancer: known facts, open questions, and therapeutic challenges. Biochem Soc Trans. 2018;46(3):741-760.
  14. Crosas-Molist E et al. Rho GTPase signaling in cancer progression and dissemination. Physiol Rev. 2022;102(1):455-510.
  15. Li H, Peyrollier K, Kilic G, Brakebusch C. Rho GTPases and cancer. BioFactors. 2014;40(2):226-235.
  16. Goka ET, Chaturvedi P, Lopez DTM, Lippman ME. Rac signaling drives clear cell renal carcinoma tumor growth by priming the tumor microenvironment for an angiogenic switch. Mol Cancer Ther. 2020;19(7):1462-1473.
  17. Thompson JM, Landman J, Razorenova OV. Targeting the RhoGTPase/ROCK pathway for the treatment of VHL/HIF pathway-driven cancers. Small GTPases. 2020;11(1):32-38.
  18. Feng J et al. RhoJ promotes the progression of clear cell renal cell carcinoma via .the TNF-α/NF-κB axis. Transl Androl Urol. 2025;14(7):1849-1864.
  19. Guo K et al. Activation of RHO-GTPase gene pattern correlates with adverse clinical outcome and immune microenvironment in clear cell renal cell carcinoma. Clin Exp Med. 2025;25(1):67. https://doi.org/10.1007/s10238-025-01593-3
  20. Mori M, Saito K, Ohta Y. ARHGAP22 localizes at endosomes and regulates actin cytoskeleton. PLoS One. 2014;9(6):e100271. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0100271
  21. Nakamura F. FilGAP and its close relatives: a mediator of Rho-Rac antagonism that regulates cell morphology and migration. Biochem J. 2013;453(1):17-25.
  22. Hu SH et al. The weak complex between RhoGAP protein ARHGAP22 and signal regulatory protein 14-3-3 has 1:2 stoichiometry and a single peptide binding mode. PLoS One. 2012;7(8):e41731. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0041731
  23. Mori M et al. Endosomal localization of RacGAP protein ARHGAP22 regulates its GAP activity in human melanoma cells. Anticancer Res. 2022;42(12):5763-5771.
  24. El-Masry OS, Alamri AM, Alzahrani F, Alsamman K. ADAMTS14, ARHGAP22, and EPDR1 as potential novel targets in acute myeloid leukaemia. Heliyon. 2022;8(3):e09065. https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2022.e09065
  25. Yang C et al. Transcriptomic analysis identified ARHGAP family as a novel biomarker associated with tumor-promoting immune infiltration and nanomechanical characteristics in bladder cancer. Front Cell Dev Biol. 2021;9:657219. https://doi.org/10.3389/fcell.2021.657219
  26. Schiavoni V et al. Recent advances in the management of clear cell renal cell carcinoma: novel biomarkers and targeted therapies. Cancers (Basel). 2023;15(12):3207. https://doi.org/10.3390/cancers15123207
  27. Sanz-Moreno V et al. Rac activation and inactivation control plasticity of tumor cell movement. Cell. 2008;135(3):510-523.
  28. Sakaguchi T et al. Bromodomain protein BRD4 inhibitor JQ1 regulates potential prognostic molecules in advanced renal cell carcinoma. Oncotarget. 2018;9(33):23003-23017.
  29. Stránská J et al. Copy number variation and clinical response to chemotherapy and bevacizumab in Czech patients with metastatic colorectal cancer. Klin Onkol. 2024;37(4):277-285.
  30. Parihar JS, Tunuguntla HS. Role of chemokines in renal cell carcinoma. Rev Urol. 2014;16(3):118-121.
  31. Chen Z, Wu R, Ma J, Zheng J. C chemokines are prognostic biomarkers correlated with diverse immune cell infiltrations in clear cell renal cell carcinoma. Transl Cancer Res. 2022;11(8):2501-2522.
  32. Şenbabaoğlu Y et al. Tumor immune microenvironment characterization in clear cell renal cell carcinoma identifies prognostic and immunotherapeutically relevant messenger RNA signatures. Genome Biol. 2016;17(1):231. https://doi.org/10.1186/s13059-016-1092-z
  33. Song DM et al. LIG1 is a novel marker for bladder cancer prognosis: evidence based on experimental studies, machine learning, and single-cell sequencing. Front Immunol. 2024;15:1419126. https://doi.org/10.3389/fimmu.2024.1419126
  34. Vuong L, Kotecha RR, Voss MH, Hakimi AA. Tumor microenvironment dynamics in clear-cell renal cell carcinoma. Cancer Discov. 2019;9(10):1349-1357.
  35. Burgers FH et al. Immunological features of clear-cell renal-cell carcinoma and resistance to immune checkpoint inhibitors. Nat Rev Nephrol. 2025;21(10):687-701.
  36. Davidsson S et al. Infiltration of M2 macrophages and regulatory T cells plays a role in recurrence of renal cell carcinoma. Eur Urol Open Sci. 2020;20:62-71.
  37. Zhang X et al. Tumor-associated M2 macrophages in the immune microenvironment influence the progression of renal clear cell carcinoma by regulating M2 macrophage-associated genes. Front Oncol. 2023;13:1157861. https://doi.org/10.3389/fonc.2023.1157861
  38. Tronik-Le Roux D et al. Comprehensive landscape of immune checkpoints uncovered in clear cell renal cell carcinoma reveals new and emerging therapeutic targets. Cancer Immunol Immunother. 2020;69(7):1237-1252.
  39. Hong J et al. A zinc metabolism-related gene signature for predicting prognosis and characteristics of breast cancer. Front Immunol. 2023;14:1276280. https://doi.org/10.3389/fimmu.2023.1276280
  40. Xu W et al. Prognostic immunophenotyping clusters of clear cell renal cell carcinoma defined by the unique tumor immune microenvironment. Front Cell Dev Biol. 2021;9:785410. https://doi.org/10.3389/fcell.2021.785410
  41. Gu J et al. A novel immune-related gene signature for predicting immunotherapy outcomes and survival in clear cell renal cell carcinoma. Sci Rep. 2023;13(1):18922. https://doi.org/10.1038/s41598-023-45966-8

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Теги

Светлоклеточный почечно-клеточный ракэкспрессия ARHGAP22инфильтрация иммунных клетоккогорта TCGA-KIRCфункциональное обогащениемикроокружение опухолиэкспрессия белков