Данное исследование было одобрено комитетом по этике при аффилированной больнице медицинского университета Сючжоу (номер одобрения: XYFY2024-KL238-01); требование о получении дополнительного информированного согласия от пациентов было отменено. Используемые реагенты и оборудование перечислены в таблице материалов.
Пациенты и образцы
Данное исследование представляло собой ретроспективное когортное исследование. С ноября 2020 г. по декабрь 2023 г. в Affiliated Hospital of Xuzhou Medical University последовательно набирали в общей сложности 270 пациентов с острым нарушением мозгового кровообращения (ОНМК). Процесс отбора пациентов обобщен на Дополнительном рисунке 1. Соответствующие критериям пациенты выявлялись путем ежедневного скрининга всех новых поступлений в отделение инсульта. Начало симптомов в течение 72 ч до госпитализации подтверждалось путем изучения записей скорой медицинской помощи и верифицировалось сертифицированным неврологом на основании анамнеза пациента и опроса родственников. Размер выборки рассчитывался исходя из возможности обнаружить значимую разницу в уровнях miR-486-3p между группами. При допущении величины эффекта 0,5, двустороннем α = 0,05 и мощности (1-β) = 0,80 требовалось минимум 64 пациента в каждой группе. Окончательный размер групп отражает фактический набор и более высокую распространенность СОАС в популяции пациентов с инсультом, а не заранее определенное распределение. Пациенты с сочетанием ОНМК и СОАС наблюдались в течение 1 года для оценки прогноза.
Критериями включения были: (1) острый ишемический инсульт с началом симптомов в течение 72 ч до поступления, подтвержденный магнитно-резонансной томографией. (2) Способность понимать и заполнять опросники исследования, а также проходить неврологическую оценку. (3) Тяжесть ОИИ оценивалась по шкале инсульта Национальных институтов здоровья (NIHSS) при поступлении. При значении NIHSS <5 инсульт классифицировался как легкий ОИИ; при значении NIHSS от 5 до 20 он считался ОИИ средней тяжести. Основные критерии исключения включали: наличие в анамнезе злокачественных новообразований, предшествующую тяжелую физическую инвалидность или психические расстройства, тяжелую сердечную, легочную или почечную недостаточность, обширные хирургические вмешательства или травмы в течение предшествующих 3 месяцев, активные инфекции или аутоиммунные заболевания; перенесенный инсульт в течение последних 6 месяцев; иммуносупрессивную терапию; а также ранее установленный диагноз или лечение ОСАЭ (включая терапию с созданием положительного давления в дыхательных путях).
Для подтверждения с помощью МРТ всем пациентам была проведена стандартная МРТ головного мозга на системе 3.0-T, включая следующие последовательности: T1-взвешенную, T2-взвешенную, режим подавления сигнала от свободной жидкости (FLAIR), диффузионно-взвешенную МРТ (DWI) и картирование измеряемого коэффициента диффузии (ADC). Острый инфаркт определялся как наличие гиперинтенсивного сигнала на DWI с соответствующим гипоинтенсивным сигналом на ADC. Все МР-сканы интерпретировались двумя опытными нейрорадиологами, которые не имели доступа к клиническим данным; расхождения разрешались путем консенсуса. Оценка по шкале NIHSS проводилась при поступлении сертифицированными неврологами до начала любого тромболитического или эндоваскулярного лечения.
Венозную кровь натощак собирали в интервале от 24 ч до 48 ч после начала инсульта, после ночного голодания продолжительностью не менее 8 ч. Забор крови проводили с 6:00 до 8:00, чтобы минимизировать влияние циркадных ритмов. В вакуумные пробирки с ЭДТА собирали в общей сложности 5 mL периферической венозной крови. В течение 2 ч после забора образцы крови центрифугировали в охлаждаемой центрифуге при 1 500 × g в течение 15 мин при 4 °C. Супернатант сыворотки осторожно переносили по аликвотам в микроцентрифужные пробирки объемом 1,5 mL, свободные от РНказ, и немедленно хранили при −80 °C до экстракции РНК. Повторных циклов замораживания-оттаивания строго избегали; все аликвоты подвергались максимум одному циклу замораживания-оттаивания перед анализом.
Группировка пациентов
Участники были распределены по группам на основании показателей AHI, полученных в результате полисомнографии. Все записи проводились в госпитальной лаборатории сна с 22:00 до 6:00 продолжительностью не менее 7 h. Мониторинг физиологических каналов включал: электроэнцефалографию (EEG; шесть каналов), электроокулографию (EOG; два канала), электромиографию (EMG; подбородок и двусторонние передние большеберцовые мышцы), электрокардиографию (ECG; один отведение), назальный поток воздуха (термистор и датчик давления), торакальные и абдоминальные дыхательные усилия (респираторная индукционная плетизмография) и пульсоксиметрию (SpO2). Расчет AHI выполнял техник по исследованию сна. Оценка стадий сна и респираторных событий проводилась вручную сертифицированным техником по сну в соответствии с руководством по скорингу Американской академии медицины сна (AASM) 2012 года с использованием программного обеспечения Somnolyzer 24×7. Согласно общепринятым диагностическим критериям Американской академии медицины сна, AHI от 5 и более событий в час является стандартным порогом для диагностики OSA. Таким образом, участники с AHI < 5 были отнесены к группе ACI (n = 100), в то время как участники с AHI ≥ 5 были отнесены к группе ACI в сочетании с OSAS (n = 170). Среди пациентов с AHI ≥ 5 (группа ACI в сочетании с OSAS, n = 170) было проведено дальнейшее разделение на три подгруппы по степени тяжести на основе установленных критериев: легкая OSAS (5 ≤ AHI < 15, n = 60), умеренная OSAS (15 ≤ AHI < 30, n = 75) и тяжелая OSAS (AHI ≥ 30, n = 35). Такая стратификация позволила оценить дозозависимую взаимосвязь между гипоксической нагрузкой, экспрессией miR‑486‑3p и маркерами воспаления. Пациенты, ранее проходившие лечение по поводу OSAS (например, CPAP), не включались в исследование, чтобы избежать искажения исходных показателей AHI.
Оценка прогноза
Контрольный срок через 1 год позволяет купировать острые эффекты и проявиться кумулятивной гипоксической нагрузке при OSAS, обеспечивая надежное окно для оценки его прогностического влияния. Клинический прогноз пациентов с ACI в сочетании с OSAS оценивали по модифицированной шкале Рэнкина (mRS) после начала заболевания. Все оценки по mRS проводились сертифицированными неврологами, прошедшими стандартизированное обучение перед исследованием, с использованием структурированной формы интервью mRS. Межэкспертная надежность была оценена с помощью коэффициента каппа >0,85. Последующее наблюдение проводилось в ходе запланированного визита в амбулаторную клинику. Для пациентов, не имевших возможности посетить клинику лично, обученная исследовательская медсестра проводила структурированное телефонное интервью по стандартизированному сценарию. Все эксперты были ослеплены относительно уровней miR-486-3p и статуса OSAS у пациентов. Для обеспечения согласованности между амбулаторными и телефонными оценками в обоих форматах использовался один и тот же структурированный опросник, а все эксперты прошли предварительную калибровочную процедуру перед началом исследования. Пациенты с баллами 0–2 были включены в группу с благоприятным прогнозом, а пациенты с баллами 3–6 — в группу с неблагоприятным прогнозом. Потеря пациентов для последующего наблюдения отсутствовала. SAQLI, ESS, TNF-α и HIF-1α оценивались как прогностические переменные, а не использовались для определения групп прогноза. Оценки по NIHSS, SAQLI и ESS проводились обученным исследовательским персоналом. SAQLI и ESS заполнялись в виде опросников при участии интервьюера в тихом помещении.
Индексы оценки
NIHSS представляет собой количественную шкалу для оценки инсульта11, при которой более высокие баллы указывают на большую степень тяжести OCI. SAQLI — это опросник качества жизни при OSA по шкале от 1 до 7, где более высокие баллы свидетельствуют о более низком качестве жизни; опросник охватывает повседневную деятельность, социальные взаимодействия, эмоциональное состояние, симптомы и симптомы, связанные с лечением12. ESS используется для оценки дневной сонливости по самоотчетам пациентов, диапазон баллов составляет от 0 до 24, при этом показатель > 10 указывает на наличие дневной сонливости13.
Экстракция РНК и обратная транскрипция
Общую РНК экстрагировали из 200 µL сыворотки с использованием реагента TRIzol. Кратко: образцы сыворотки смешивали с 800 µL TRIzol, инкубировали при комнатной температуре в течение 5 min и центрифугировали при 12,000 × g в течение 15 min при 4 °C. Добавляли хлороформ (200 µL), смесь интенсивно встряхивали в течение 15 s, инкубировали 3 min и центрифугировали при 12,000 × g в течение 15 min при 4 °C. Водную фазу переносили в новую пробирку, РНК осаждали 500 µL изопропанола, инкубировали при −20 °C в течение 1 h и центрифугировали при 12,000 × g в течение 10 min при 4 °C. Осадок РНК промывали 75% этанолом, высушивали на воздухе и растворяли в 20 µL воды, свободной от РНказ. Концентрацию и чистоту РНК оценивали с помощью микрообъемного спектрофотометра; для последующего анализа принимали образцы с соотношением A260/A280 от 1.8 до 2.0. Целостность РНК проверяли методом электрофореза в агарозном геле.
Обратную транскрипцию проводили с использованием 500 ng суммарной РНК и набора Reverse Transcription Kit в общем объеме реакции 20 µL с применением праймеров на случайных гексамерах согласно протоколу производителя. Реакцию обратной транскрипции проводили при 25 °C в течение 10 min, при 42 °C в течение 60 min и при 70 °C в течение 5 min. Полученную кДНК хранили при −20 °C до использования.
RT-qPCR
Экспрессию miR-486-3p определяли с помощью набора для ПЦР в реальном времени на основе SYBR Green для количественного анализа микроРНК на системе количественной ПЦР в реальном времени (qPCR). Реакционная смесь содержала 10 µL 2× SYBR Green Master Mix, 2 µL матрицы кДНК (разведенной 1:5), 1 µL каждого праймера (10 µM) и нуклеаза-free воду до конечного объема 20 µL. Последовательности праймеров следующие (5'-3'): miR-486-3p-прямой: TCGGCAGCGGGGCAGCUCAGU, обратный: CTCAACTGGTGTCGTGGA; и U6-прямой: CTCGCTTCGGCAGCACA, обратный: AACGCTTCACGAATTTGCGT. Условия циклов qPCR были следующими: 95 °C в течение 2 min, затем 40 циклов по 95 °C в течение 30 s, 60 °C в течение 30 s и 72 °C в течение 60 s. Каждый образец анализировали в трех повторностях, в каждую серию включали отрицательный контроль (без матрицы). Специфичность амплификации подтверждали анализом кривых плавления в диапазоне от 60 °C до 95 °C. Пороговый цикл (Ct) определялся автоматически с помощью программного обеспечения QuantStudio 6 Pro (v1.5) с использованием стандартных настроек порога. Уровень miR-486-3p рассчитывали методом 2-ΔΔCT с нормализацией по U6. U6 была валидирована как стабильный референсный ген в наших образцах сыворотки с использованием алгоритма NormFinder для обеспечения согласованности между группами. Межсерийный и внутрисерийный коэффициенты вариации составляли <5%.
ИФА
Концентрации C-реактивного белка (CRP), TNF-α и HIF-1α в сыворотке определяли с помощью набора для ИФА. Экспериментальные процедуры проводили в соответствии с инструкциями производителя. Вкратце, образцы сыворотки размораживали на льду и разводили 1:2 в прилагаемом буфере для разведения. Образцы и стандарты вносили в предварительно покрытые 96-луночные планшеты (100 µL/лунку) и инкубировали в течение 2 ч при 37°C. После четырехкратной промывки 300 µL промывочного буфера добавляли 100 µL конъюгированных с биотином детектирующих антител и инкубировали в течение 1 ч при 37°C. После еще одного этапа промывки добавляли 100 µL стрептавидина, конъюгированного с пероксидазой хрена, и инкубировали в течение 30 мин при 37°C в темноте. Добавляли хромогенный субстрат (тетраметилбензидин, 100 µL) и инкубировали в течение 15 мин при 37°C в защищенном от света месте. Реакцию останавливали добавлением 50 µL стоп-раствора, после чего измеряли оптическую плотность при 450 nm с помощью микропланшетного ридера. Концентрации рассчитывали по стандартным кривым, построенным с использованием известных концентраций рекомбинантных белков. Каждый образец измеряли в дубликате, для анализа использовали среднее значение. В каждый планшет включали образцы контроля качества, предоставленные производителем; результаты принимали только в том случае, если значения КК находились в пределах диапазона, указанного производителем.
Контроль качества и воспроизводимость
Все лабораторные анализы проводились в соответствии с рекомендациями MIQE (Minimum Information for Publication of Quantitative Real-Time PCR Experiments) для RT-qPCR и соответствующими стандартами отчетности для ELISA. Основное оборудование калибровалось согласно графикам производителей. В каждую серию анализов RT-qPCR и ELISA включались отрицательные и положительные контрольные образцы для мониторинга вариабельности между планшетами. Все данные регистрировались и обрабатывались с помощью Microsoft Excel; автор, ответственный за переписку, предоставит подробные экспериментальные протоколы и необработанные данные по обоснованному запросу.
Статистический анализ
Данные анализировали с помощью SPSS 23.0 и программного обеспечения для статистического анализа и построения графиков. Нормальность распределения оценивали с помощью критерия Шапиро–Уилка. Непрерывные переменные представлены как среднее ± SD или медиана (IQR); их сравнивали с помощью t-критерия или U-критерия Манна–Уитни, в зависимости от распределения. Категориальные переменные сравнивали с помощью критерия χ2. Корреляции изучали с помощью анализа Пирсона или Спирмена в зависимости от распределения данных. Прогностическую значимость определяли с помощью ROC-кривой и проверяли путем 5-кратной перекрестной проверки. Оптимальное пороговое значение для miR-486-3p определяли путем максимизации индекса Юдена. Для оценки корреляций использовали корреляционный анализ Пирсона и Спирмена. Для прогностического анализа пациентов стратифицировали по медиане экспрессии miR‑486‑3p; для сравнения показателей выживаемости между группами использовали кривые Каплана–Мейера с лог-ранговым критерием. Переменные с P < 0.1 в однофакторной регрессии Кокса включали в многофакторную модель Кокса. Значение P < 0.05 считали статистически значимым.