Предсказание функциональных мотивов связывания HNF4α и HNF1α в промоторе F7
Компьютерный поиск мотивов с использованием FIMO и базы данных JASPAR 2022 выявил три высокодостоверных мотива связывания HNF4α и три мотива HNF1α в промоторной области длиной 1 kb выше по течению от гена F7. Предсказанные мотивы располагались в консервативных областях промотора и соответствовали последовательностям распознавания ядерных факторов гепатоцитов (p < 1 × 10⁻4). Примечательно, что два из этих предсказанных мотивов находились вблизи ранее описанных мутаций, связанных с наследственным дефицитом фактора VII. Мотив, связанный с HNF4α, располагался рядом с вариантом промотора c.-61T>G. Треки ChIP-seq из проекта ENCODE (HepG2) продемонстрировали обогащение сигналов связывания HNF4α и HNF1α в этих областях промотора, что подтверждает их предполагаемую регуляторную значимость в рамках данного компьютерного анализа (Рисунок 1).
Корреляция между F7 и экспрессией факторов транскрипции печени
Данные транскриптомики образцов тканей печени из базы GTEx (n = 226) выявили значимую положительную корреляцию между экспрессией F7 и HNF4A (r Пирсона = 0.68, p < 0.001), а также между экспрессией F7 и HNF1A (r = 0.61, p < 0.01). Эти корреляции подтверждают известные регуляторные связи между F7, HNF4α и HNF1A17,18. В рамках вычислительной схемы они служат этапом внутренней валидации, подтверждающим, что конвейер обработки данных отражает установленные биологические закономерности перед его применением к контекстам вариантов промоторов (Рисунок 2).
Анализ регуляторной сети и ландшафта хроматина
Моделирование сетей с помощью STRING и Cytoscape позволило предсказать, что HNF4α и HNF1α выступают в качестве центральных узлов в сети печеночной транскрипции, обогащенной генами коагуляции. Эпигеномные данные ENCODE подтвердили, что промотор F7 в клетках HepG2 и первичных образцах печени перекрывается с областями, отмеченными активными модификациями гистонов (H3K4me3, H3K27ac) и открытым хроматином (Дополнительная таблица 3 и Рисунок 1). Сравнительные наборы транскриптомных данных показали, что F7, HNF4A и HNF1A коэкспрессируются в HepG2, Huh7 и Hep3B, хотя уровни экспрессии варьируют между линиями. Там, где это было возможно, профили доступности промотора и гистонов в Huh7 и Hep3B в целом совпадали с HepG2, что подтверждает единообразие ландшафта активного хроматина промотора в клеточных линиях, производных от гепатоцитов (Дополнительный рисунок 1), в то время как в непеченочных клеточных линиях (например, K562, HeLa) наблюдалось существенное снижение доступности хроматина. Эти результаты подтверждают печеночно-специфическую регуляцию F7, одновременно подчеркивая вариабельность между моделями печени (Рисунок 3).
Дизайн гРНК для CRISPRa и симуляция реактивации транскрипции
Для воздействия на проксимальный промотор F7 вблизи высокооценочных мотивов HNF4α были разработаны четыре gRNA (Дополнительная таблица 4). Все они соответствовали заранее определенным критериям высокой целевой активности (>60) и минимальным прогнозируемым побочным эффектам. Согласно моделированию, dCas9-VP64 и dCas9-p300 по отдельности повышали прогнозируемую экспрессию F7 до 68% и 76% от уровня дикого типа соответственно, в то время как комбинированная активация dCas9-VP64+p300 повышала прогнозируемую экспрессию до 87% от уровня дикого типа (Рисунок 4B; Дополнительная таблица 5). При этом активность промотора дикого типа была принята за 100% (1,0), и все смоделированные значения были нормированы относительно этого эталона. Эти результаты указывают на то, что комбинированная активация с помощью CRISPRa потенциально может компенсировать транскрипционную репрессию, вызванную мутациями промотора, хотя данные значения представляют собой расчетные прогнозы, а не экспериментально измеренную экспрессию. Важно отметить, что зависимость восстановления F7 с помощью CRISPRa от активности эндогенного HNF4A была эксплицитно оценена с помощью динамического регуляторного моделирования. CRISPRa усиливала транскрипцию F7, но оставалась зависимой от функционального HNF4A; следовательно, прогнозируемое восстановление существенно снижалось в условиях нарушения доступности или функции HNF4A (Рисунок 4).
In silico-стратегия CRISPR-Cas9 HDR для восстановления мотива
Среди вариантов промотора, которые, как сообщалось, влияют на распознавание HNF4α, в качестве репрезентативного варианта, связанного с HNF4α, был выбран вариант c.-61T>G, тогда как c.-94C>G рассматривался отдельно как известный вариант сайта Sp1, а не как установленная мутация, нарушающая связывание HNF4α. Стратегии коррекции CRISPR-Cas9 HDR были смоделированы in silico для варианта, связанного с HNF4α. Для фланкирования сайта варианта были выбраны две gRNA, обозначенные как gRNA-L и gRNA-R, которые оценивались как по отдельности, так и в комбинации. Соответствующий одноцепочечный шаблон для HDR-репарации включал референсную последовательность промотора, содержащую канонический сайт связывания HNF4α, с плечами гомологии длиной 100 bp. Оценка in silico с использованием Cas-OFFinder и CRISPRscan применялась для анализа предсказанной специфичности гида и активности расщепления, а моделирование на основе ICE использовалось для оценки теоретических результатов редактирования. Предсказанная эффективность редактирования варьировалась в зависимости от конфигурации гида, при этом комбинированный дизайн gRNA-L/gRNA-R оценивался как стратегия с двойным гидом, а не как третья независимая gRNA. Хотя вариант c.-94C>G был сохранен в более широком анализе промотора из-за его установленной регуляторной значимости, в модели HDR он не интерпретировался как вариант, нарушающий мотив HNF4α. Эти результаты представляют собой компьютерные прогнозы возможной коррекции последовательности промотора и не устанавливают экспериментальную эффективность HDR, восстановление связывания HNF4α или восстановление активности промотора F7 дикого типа (Рисунок 5).
Доступность хроматина и потенциал эпигенетической активации
Анализ данных ATAC-seq и гиперчувствительности к DNase I в клетках HepG2 показал, что все сайты-мишени CRISPRa расположены в областях с высокой доступностью хроматина. Интеграция этих результатов с данными HNF4α ChIP-seq и обогащением H3K27ac дополнительно подтвердила потенциал активации этих сайтов. Моделирование эпигенетического редактирования предсказало благоприятные результаты ремоделирования хроматина и прогнозируемое усиление привлечения факторов транскрипции при активации с помощью CRISPRa (Рисунок 6).
Оценка общегеномной специфичности дизайна гРНК
In silico-скрининг gRNA для CRISPRa выявил высокую специфичность последовательностей как для подходов CRISPRa, так и для HDR (Дополнительная таблица 6). Анализ с помощью CRISPOR и Benchling позволил исключить любые gRNA с высокой вероятностью наличия нецелевых эффектов (off-target) в транскрипционно активных областях промоторов. Для дизайнов CRISPRa данные ATAC-seq и H3K27ac из базы данных ENCODE указали на то, что все выбранные сайты-мишени располагались в областях открытого хроматина, специфичных для F7. Никакие кандидатные gRNA не перекрывались с областями энхансеров или общими элементами промоторов. Аннотации состояний хроматина ChromHMM и Segway дополнительно подтвердили классификацию этих областей как активных промоторов, специфичных для гепатоцитов, без перекрытия с промоторами соседних корегулируемых генов. Комбинированная вычислительная оценка специфичности, интегрирующая сходство нецелевых последовательностей, доступность хроматина и регуляторную аннотацию, предсказала низкую вероятность непреднамеренной трансактивации (0.4%–0.6%) для выбранных направляющих CRISPRa (Рисунок 7). Распространенные проблемы вычислительного рабочего процесса, их вероятные причины и рекомендуемые корректирующие действия обобщены в Дополнительной таблице 7 для обеспечения воспроизводимости и единообразного внедрения.
ДОСТУПНОСТЬ ДАННЫХ:
Авторы подтверждают, что все данные, подтверждающие результаты этого исследования, представлены в статье и доступны в Zenodo: https://doi.org/10.5281/zenodo.21735831

Рисунок 1: Предполагаемые мотивы связывания HNF4α и HNF1α в промоторе F7. Схематическое изображение участка промотора гена F7 длиной 1 kb выше по течению, на котором показаны шесть предполагаемых мотивов связывания для HNF4α и HNF1α (цветные прямоугольники). Они совмещены с показателями консервативности у позвоночных (PhyloP) и аннотированы известными вариантами, связанными с заболеваниями (красная метка), включая патогенную мутацию c.-61T>G. Пики HNF4α ChIP-seq в клетках HepG2 указывают на обогащение. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Рисунок 2: Корреляция между F7 и транскрипционными факторами печени. (A) Экспрессия F7 демонстрирует сильную положительную корреляцию с HNF4A (r = 0.68, p < 0.001). (B) Экспрессия F7 также положительно коррелирует с HNF1A (r = 0.61, p < 0.01). Каждая точка представляет собой образец печени из набора данных GTEx. Показаны линии регрессии с 95% доверительными интервалами. Данные корреляции являются ассоциативными и не устанавливают прямой регуляторной причинно-следственной связи. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Рисунок 3: Обогащение печеночной регуляторной сети и ландшафт хроматина. (A) Транскрипционная сеть, полученная с помощью STRING и центрированная на HNF4α, демонстрирует прогнозируемые регуляторные связи с F7 и другими генами, связанными со свертыванием крови. (B) Дорожки браузера в стиле UCSC иллюстрируют открытый хроматин (DNase I), модификации гистонов (H3K4me3/H3K27ac) и сегментацию состояния хроматина (ChromHMM) вокруг промотора F7 в клетках HepG2, что соответствует транскрипционно активной области. (C) Сравнительная транскриптомика показывает коэкспрессию F7, HNF4A и HNF1A в линиях клеток печени (HepG2, Huh7, Hep3B) с различными уровнями, в то время как в непеченочных линиях (K562, HeLa) наблюдается сниженная экспрессия. Доступность промотора и профили гистонов в Huh7 и Hep3B в целом совпадали с данными для HepG2. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Рисунок 4: Дизайн gRNA для CRISPRa и симуляция транскрипционной активации. (A) Схема, показывающая предполагаемое расположение гидовых РНК для CRISPRa (gRNA1–gRNA4) относительно мотивов связывания HNF4α и сайта начала транскрипции (TSS) гена F7. (B) Симулированный уровень транскрипции F7 при использовании различных стратегий CRISPRa в контексте промотора дикого типа и мутантного промотора. Экспрессия F7 была нормализована относительно промотора дикого типа, принятого за 100% (1.0). В модели мутантного промотора прогнозируемая экспрессия составила 35% от дикого типа, увеличиваясь до 68% при использовании dCas9-VP64, до 76% с dCas9-p300 и до 87% при комбинированной активации dCas9-VP64+p300, тем самым превышая порог в 85%. Симуляции in silico включали эпигеномные и транскриптомные данные клеток HepG2 и представляют собой вычислительные прогнозы, а не экспериментально измеренные уровни экспрессии. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Рисунок 5: Стратегия HDR на основе CRISPR-Cas9 для коррекции мотива. (A) Схема области промотора F7, показывающая вариант c.-61T>G (связанный с HNFa), который является мишенью для коррекции. Вариант c.-94C>G (связанный со Sp1) указан для справки, так как он не был мишенью в данной стратегии. Были разработаны две направляющие РНК SpCas9 (gRNA-L и gRNA-R), фланкирующие сайт c.-61T>G. (B) Одноцепочечный шаблон для репарации HDR (sODN), содержащий референсный нуклеотид (T) в позиции c.-61, фланкированный плечами гомологии длиной 100 bp. (C) Предсказания эффективности редактирования, смоделированные с помощью ICE, для отдельных направляющих РНК и конфигурации с двумя направляющими (gRNA-L + gRNA-R). Согласно прогнозу, стратегия с двумя направляющими обеспечит самую высокую теоретическую эффективность HDR. Все результаты представляют собой компьютерные предсказания и не демонстрируют успешный HDR, восстановление связывания HNF4a или восстановление транскрипции F7. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Рисунок 6: Доступность хроматина и потенциал активации сайтов-мишеней CRISPRa. (A) Треки ATAC-seq, гиперчувствительности к DNase I и обогащения H3K27ac в области 1 кб выше промотора F7 иллюстрируют регионы повышенной доступности хроматина и активного регуляторного хроматина. Вертикальные пунктирные линии указывают положения пяти сайтов-мишеней gRNA для CRISPRa (gRNA@−780, gRNA@−740, gRNA@−580, gRNA@−360 и gRNA@−200). (B) Прогнозируемые показатели транскрипционной активации для каждой gRNA указывают на то, что воздействие на доступные и обогащенные H3K27ac регионы может привести к более сильной активации F7, при этом самая высокая прогнозируемая активность наблюдается у gRNA@−580. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Рисунок 7: Конвейер вычислительной фильтрации для определения специфичности gRNA. Схематический обзор конвейера in silico, используемого для идентификации высокоспецифичных gRNA для CRISPRa и HDR. Процесс объединяет фильтрацию на основе последовательностей (CRISPOR, Benchling), эпигенетический контекст (ATAC-seq, H3K27ac), сегментацию состояния хроматина (ChromHMM, Segway) и инструменты общегеномного предсказания нецелевых эффектов (Cas-OFFinder, CRISPRscan) для минимизации прогнозируемых рисков трансактивации и расщепления. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
Дополнительный рисунок 1: Сравнительные профили доступности хроматина и ассоциированных с промотором модификаций гистонов в области промотора F7 в клетках HepG2, Huh7 и Hep3B. Нормализованная доступность по данным ATAC-seq (A), а также обогащение H3K27ac (B) и H3K4me3 (C) демонстрируют в целом согласованный активный хроматин промотора во всех трех клеточных линиях, производных от гепатоцитов (D), что подтверждает возможность их использования в качестве вычислительных моделей для анализа регуляции F7.Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать этот файл.
Дополнительная таблица 1: Параметры, использованные в вычислительной транскрипционной модели. Сводка значений параметров, использованных в симуляции транскрипционной регуляции F7 на базе CellDesigner. Параметры включают коэффициенты активности транскрипционных факторов HNF4α и HNF1α, модификаторы доступности промотора, полученные из наборов данных хроматина ENCODE, константы скорости транскрипции и параметры деградации мРНК.Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать этот файл.
Дополнительная таблица 2: Контрольные точки вычислительного рабочего процесса. Обзор конвейера анализа in silico, включая вычислительные инструменты, входные наборы данных, основные критерии фильтрации и ожидаемые результаты на каждом этапе аннотации промоторов, предсказания сайтов связывания факторов транскрипции, подбора гидов CRISPRa, оценки доступности хроматина, анализа нецелевых эффектов и моделирования редактирования генома. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать этот файл.
Дополнительная таблица 3: Сравнительные профили доступности хроматина и гистоновых модификаций, ассоциированных с промотором, в области промотора F7 в клетках HepG2, Huh7 и Hep3B, полученные на основе данных ENCODE. Нормализованная доступность по данным ATAC-seq, обогащение H3K27ac и H3K4me3, а также аннотации состояний промотора ChromHMM демонстрируют в целом согласованную архитектуру активного промотора в трех клеточных линиях, производных от гепатоцитов. Значения представляют собой полученные расчетным путем сводные данные, используемые для поддержки сравнительного анализа in silico.Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать этот файл.
Дополнительная таблица 4: Полный анализ специфичности и нецелевого воздействия кандидатных гидовых РНК CRISPRa, нацеленных на промотор F7. В таблице обобщены последовательности гидовых РНК, прогнозируемая эффективность воздействия на цель, показатели специфичности, прогнозы нецелевого воздействия, доступность хроматина, регуляторные аннотации и комплексный рейтинг, использованный для вычислительного отбора гидов. Все значения представляют собой прогнозы in silico.Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать этот файл.
Дополнительная таблица 5: Прогнозируемые регуляторные показатели были получены с использованием вычислительной модели, объединяющей доступность промотора, занятость транскрипционных факторов и параметры активации CRISPRa. Значения представляют собой нормализованные оценки in silico относительно промотора F7 дикого типа (принят за 1,0; 100% экспрессии). Данные симуляции служат для генерации гипотез и не являются экспериментально измеренными показателями транскрипционной активности F7.Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать этот файл.
Дополнительная таблица 6: Общегеномный анализ нецелевого воздействия и расчет комплексного показателя специфичности для выбранных гидовых РНК CRISPRa и HDR, нацеленных на промотор F7. В таблице обобщены данные о прогнозируемой эффективности воздействия на целевой участок, показатели специфичности, профили нецелевого воздействия, контекст хроматина и комплексные показатели риска, использованные для оценки специфичности гидовых РНК и оценки риска общегеномной трансактивации in silico.Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать этот файл.
Дополнительная таблица 7: Сводка распространенных проблем вычислительного рабочего процесса, возникающих при анализе промотора F7, и рекомендуемые корректирующие действия для обеспечения воспроизводимости, согласованности данных и надежных результатов моделирования in silico.Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать этот файл.