Методическая статья

Микрохирургическая диссекция свежих образцов мастэктомии человека для визуализации фасциальных и связочных опорных структур молочной железы

28 просмотров

11 сентября 2026 г.

В этой статье

Краткое содержание

В данной работе описывается микрохирургическая диссекция фасциальных и связочных опорных структур в тканях молочной железы, удаленных в ходе профилактической мастэктомии. Полученные результаты представляют собой ценный ресурс для хирургов и анатомов, изучающих анатомию женской молочной железы человека.

Аннотация

Связочные и фасциальные опорные структуры, такие как связки Купера и система поверхностных фасций, являются важными структурными компонентами женской молочной железы, определяя ее форму, обеспечивая механическую поддержку и определяя хирургические плоскости при операциях на груди. Хотя в предыдущих исследованиях эти структуры изучались с помощью трупной диссекции, интраоперационного наблюдения и биомеханического анализа, не было сообщений, описывающих их взаимосвязи с использованием микрохирургической диссекции свежей ткани молочной железы человека. В данном исследовании образцы свежей нефиксированной ткани молочной железы были получены от пациенток, перенесших профилактическую мастэктомию, и рассечены патологоанатомом на сагиттальные срезы толщиной 2 cm. Микрохирургическая диссекция каждого среза проводилась при увеличении примерно 5×–10× для визуализации и изучения связок Купера, поверхностного слоя поверхностной фасции (SLSF) и глубокого слоя поверхностной фасции (DLSF). Используя данный протокол, была проведена микрохирургическая диссекция 24 образцов ткани молочной железы, что позволило визуализировать наблюдаемую структурную непрерывность между связками Купера, SLSF, дермой, DLSF и пекторальной фасцией. В частности, было замечено, что связки Купера проходят через SLSF в дерму и кзади через DLSF по направлению к фасции, покрывающей большую грудную мышцу. Данный протокол обеспечивает прямую визуализацию фасциально-связочной опорной сети молочной железы и способствует анатомическому пониманию взаимосвязей между этими структурами. Это исследование и разработанный протокол могут служить ценными образовательными и исследовательскими ресурсами для хирургов-маммологов, пластических хирургов и междисциплинарных исследователей, стремящихся к более глубокому пониманию фасциально-связочных опорных структур молочной железы.

Введение

Анатомия молочной железы давно является предметом интереса как в клинической практике, так и в анатомических исследованиях, особенно в силу ее значения для эстетической хирургии груди и лечения рака молочной железы. Одним из наиболее важных, но недостаточно изученных компонентов анатомии груди являются связки Купера — сеть волокнистой соединительной ткани, пронизывающая молочную железу и обеспечивающая ее структурную поддержку. Впервые описанные сэром Эстли Купером в его книге XIX века  On the Anatomy of the Breast, связки Купера играют критическую роль в поддержании формы и положения груди, закрепляя кожу на подлежащей фасции большой грудной мышцы1. Их значимость как в хирургических, так и в эстетических процедурах возросла, особенно по мере развития хирургии груди. В 1990-х годах Тед Локвуд подчеркнул важность поверхностной фасциальной системы, особенно в контексте операций по контурированию груди и тела. В его работах акцентировалось внимание на роли этого фасциального слоя в сохранении формы груди, распределении механических сил во время операции и обеспечении хирургического слоя для таких процедур, как подтяжка груди (мастопексия) и реконструкция молочной железы2,3. С тех пор внимание к анатомии груди усилилось, и в различных исследованиях связки Купера и поверхностная фасциальная система изучались с помощью трупной диссекции4,5,6, гистологического анализа7, визуализации8, эндоскопии9, интраоперационных наблюдений4 и биомеханических исследований7,10,11. В совокупности эти исследования расширили современное понимание структурной организации фасциальной системы груди и выявили разнообразие анатомических наблюдений, описанных в литературе.

Эти исследования расширили наше понимание структурной динамики молочной железы и того, как она изменяется в физиологических и патологических условиях. Однако в них отсутствуют детальные мелкомасштабные наблюдения, необходимые для полного понимания взаимосвязей между тканями, которые становятся видны при микрохирургическом диссекировании. Несмотря на обилие информации, полученной в ходе макроскопических диссекций и клинических процедур, сообщения о микрохирургическом диссекировании этих структур в тканях молочной железы человека отсутствуют. Такие наблюдения имеют решающее значение для более глубокого понимания того, как эти анатомические системы взаимодействуют для поддержания архитектуры молочной железы. Таким образом, сохраняется значительный пробел в знаниях о характеристиках связок Купера и поверхностной фасциальной системы. Для хирургов, особенно специалистов по онкологии молочной железы и пластической хирургии, детальное понимание этих систем важно для планирования операций и анатомической ориентации во время таких процедур, как реконструкция, мастэктомия и увеличение груди12.

Настоящее исследование направлено на восполнение этого пробела путем детального микрохирургического изучения связок Купера и системы поверхностных фасций в тканях молочной железы, полученных из образцов после профилактической мастэктомии. Используя срезы тканей, мы провели препарирование этих структур с помощью методов микрохирургического препарирования, описанных в приведенном ниже протоколе. В отличие от предыдущих кадаверных или макроскопических исследований, данный протокол позволяет осуществлять микрохирургическую визуализацию связок Купера и системы поверхностных фасций в свежей ткани молочной железы человека.

Данное исследование предоставляет четкие, визуально документированные доказательства взаимосвязи между связками Купера, поверхностной фасциальной системой и окружающими тканями молочной железы на микрохирургическом уровне. Эти анатомические наблюдения могут способствовать будущим анатомическим и хирургическим исследованиям. Потенциальное применение этих результатов в онкологической хирургии молочной железы требует дальнейшего подтверждения с использованием образцов тканей пациентов с раком молочной железы. Для начинающих хирургов-маммологов и пластических хирургов, а также для междисциплинарных исследователей представленные здесь данные послужат образовательным инструментом, углубляющим понимание сложных деталей фасциальной и связочной анатомии молочной железы.

Протокол

Данный протокол был одобрен Институциональным наблюдательным советом (IRB) Техасского университета MD Anderson Cancer Center 06.05.2016 под номером записи PA16-0364. В соответствии с правилами учреждения, от всех пациентов, предоставивших образцы тканей молочной железы после профилактической мастэктомии, было получено письменное информированное согласие.

ПРИМЕЧАНИЕ: В данном протоколе подробно описаны этапы микрохирургической диссекции тканей молочной железы для визуализации и изучения связок и фасций структурной системы поддержки молочной железы. Хирурги-маммологи в учреждении, где проводилось данное исследование, обычно используют электрокоагуляцию для диссекции фасции большой грудной мышцы (пекторальной фасции) при отделении препарата мастэктомии от грудной стенки во время тотальной мастэктомии с сохранением кожи или соска. Подготовка образца, его ориентация и микрохирургическая диссекция подробно описаны в следующих разделах.

1. Приготовление срезов тканей из образцов мастэктомии

  1. Сбор образцов после мастэктомии.
    1. Получите ткань молочной железы у пациентов, перенесших профилактическую мастэктомию, после одобрения протокола институциональным советом по этике (IRB). Получите информированное согласие и соберите ткани в соответствии с этическими и клиническими рекомендациями.
  2. Секционирование образцов после мастэктомии.
    1. Сразу после мастэктомии проведите макроскопическое исследование и начните обработку образца. Эту процедуру выполняет патоморфолог молочной железы. Схема стратегии секционирования образца представлена на Рисунке 1.
    2. Перед секционированием ориентируйте и маркируйте красителем неповрежденный образец мастэктомии в соответствии со стандартной патологоанатомической цветовой схемой: красный (верхний), оранжевый (нижний), зеленый (передний) и черный (задний).
    3. Используя патологоанатомический скальпель с лезвием №20, рассеките образец на сагиттальные срезы толщиной примерно 2 cm, сохраняя его исходную анатомическую ориентацию. В дальнейшем используйте нанесенные метки красителя для сохранения анатомической ориентации среза ткани при последующем перемещении и микродиссекции.
    4. Для микрохирургической диссекции используйте один репрезентативный периферический срез ткани, предоставленный патоморфологом, поскольку центральные срезы, содержащие сосок или его часть, обычно оставляют для стандартного клинико-патологического исследования.
  3. Перенос и хранение ткани молочной железы.
    1. Заверните каждый срез ткани в бумажное полотенце, смоченное физиологическим раствором, и поместите срез в пластиковый пакет для биоопасных отходов. Перенесите завернутый срез в институциональный банк тканей (ITB), где они хранятся в холодильнике при 4 °C до проведения микрохирургической диссекции.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Образцы не замораживают и не разогревают перед диссекцией. Время от момента мастэктомии до помещения в холодильник обычно составляет 2–3 h. Микрохирургическая диссекция обычно проводится в течение 6–24 h после мастэктомии. Влияние продолжительности хранения на качество ткани в данном исследовании формально не оценивалось.

2. Подготовка к микрохирургической операции

  1. Подготовьте микроскоп.
    1. Установите операционный микроскоп и настройте увеличение от 5× до 10× для обеспечения оптимальной визуализации структур ткани при проведении точного микрохирургического рассечения. Используйте адаптер для подключения смартфона к микроскопу (Рисунок 2>) и убедитесь, что поле зрения выровнено правильно.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Настройка со смартфоном обеспечивает достаточное качество изображения для визуализации, документации и видеозаписи процесса рассечения. В качестве альтернативы, при наличии, может быть использован операционный микроскоп со встроенной камерой.
  2. Подготовьте инструменты для диссекции.
    1. Разложите все инструменты для диссекции, включая пинцеты и ножницы, на платформе для диссекции для обеспечения быстрого доступа к ним во время процедуры.
  3. Настройте вакуумную систему и раствор.
    1. Используйте вакуумную систему, оснащенную аспирационным наконечником Фрейзера диаметром 3 mm, для удаления тканей в процессе диссекции. Установите давление вакуума в диапазоне от 180 mmHg до 200 mmHg.
    2. Используйте физиологический раствор для увлажнения срезов ткани и предотвращения их высыхания на протяжении всей процедуры.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Если требуется более сильное всасывание, временно прикройте отверстие для вентиляции наконечника Фрейзера большим пальцем. Осторожно применяйте аспирацию к жировой ткани по обе стороны от связки, удаляя ровно столько жировой ткани, сколько необходимо для обнажения связки. Избегайте прямого воздействия вакуума на связку или фасциальные структуры. Держите наготове дополнительный физиологический раствор для промывки аспирационного наконечника в случае его засорения или ослабления силы всасывания. Это обеспечит непрерывную аспирацию и предотвратит перерывы в процессе диссекции.

3. Процесс диссекции

ПРИМЕЧАНИЕ: Работа со свежей тканью молочной железы человека должна проводиться в соответствии с установленным в учреждении регламентом по биобезопасности. На протяжении всего процесса обработки образцов и микрохирургического препарирования необходимо использовать одноразовые перчатки, лабораторный халат и хирургическую маску. Сбор аспирированного материала из настенной вакуумной системы учреждения следует осуществлять с помощью одноразового контейнера для сбора аспирата, оснащенного механизмом защиты от перелива, чтобы предотвратить случайное попадание жидкостей и остатков аспирации в настенную вакуумную систему. Утилизация острых предметов, образцов тканей, аспирированного материала и других биоопасных материалов должна производиться в соответствии с правилами биобезопасности учреждения.

  1. Подтвердите ориентацию ткани.
    1. Следуйте ориентации, отмеченной патологоанатомом (Рисунок 3).
    2. Перед микродиссекцией стандартно ориентируйте срез ткани так, чтобы задняя поверхность (помеченная черными чернилами) была обращена к диссектору, а поверхность кожи — к ассистенту.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Такая стандартизированная ориентация располагает пекторальную фасцию ближе к диссектору и позволяет систематически идентифицировать DLSF, связки Купера и SLSF в последовательной анатомической последовательности во время диссекции.
    3. Дважды проверьте ориентацию при малом увеличении, идентифицировав ключевые анатомические ориентиры, такие как эпидермис, дерма, подкожная клетчатка и пекторальная фасция.
  2. Идентифицируйте систему поверхностных фасций.
    1. Найдите и изучите систему поверхностных фасций, обращая внимание на то, как она соединяется с кожей и интегрируется с подкожной жировой тканью и более глубокими слоями.
    2. Найдите поверхностный слой поверхностной фасции (SLSF):
      1. Идентифицируйте слой SLSF, который обычно представляет собой отчетливый тонкий, частично прозрачный фасциальный слой под кожей и подкожной жировой тканью.
      2. При увеличении 5×–10× он выглядит как относительно непрерывная линейная мембрана, идущая параллельно дерме, что отличает его от окружающей жировой ткани. В фасции часто наблюдается жировая долька, «пересекающая» её и создающая «отверстие». Тщательно следуйте по этой плоскости во время диссекции, чтобы подтвердить принадлежность фасции и визуализировать её прикрепления к окружающим структурам (Рисунок 4A,A’).
    3. Найдите глубокий слой поверхностной фасции (DLSF):
      1. Идентифицируйте DLSF как частично прозрачный фасциальный слой, расположенный непосредственно поверх пекторальной фасции и простирающийся поперечно по грудной стенке. Он идет параллельно пекторальной фасции и образует непрерывную фасциальную плоскость при осторожной диссекции.
      2. Тщательно проследите за этой структурой во время диссекции, чтобы подтвердить принадлежность фасции и визуализировать прилегающие анатомические структуры (Рисунок 5A,A’).
        ПРИМЕЧАНИЕ: DLSF лежит близко к пекторальной фасции и может быть трудноразличима в некоторых образцах. По сравнению с поверхностным слоем, глубокий слой идентифицировать сложнее, и его обнаружение и подтверждение обычно требуют дополнительного времени и осторожной диссекции. Если ожидаемую непрерывную фасциальную плоскость не удается уверенно идентифицировать, вернитесь к малым увеличениям, чтобы заново найти фасциальную плоскость перед продолжением диссекции.
  3. Проследите ход связок Купера и диссецируйте жировые карманы.
    1. Распознайте связки Купера как гладкие прозрачные пучки волокон толщиной обычно менее 1 mm, идущие примерно перпендикулярно дерме, SLSF, DLSF и пекторальной фасции. Они тесно прилегают к окружающим жировым долькам и протокам молочной железы. Непрерывно следуйте за связками при осторожной тракции.
    2. (Исключение) Диссекция связок Купера может быть невозможна в образцах с плотной железистой тканью. Тщательно идентифицируйте предполагаемую связочную структуру и проследите её ход как в поверхностном, так и в глубоком направлениях, сохраняя её взаимоотношения с окружающими тканями.
      1. Задокументируйте наблюдаемый анатомический ход, включая то, заканчивается ли она, разветвляется, сливается с соседними фасциальными структурами или разрывается во время диссекции.
      2. Осторожно манипулируйте связочными тканями с помощью микропинцета, чтобы предотвратить повреждение фасции. Связки Купера состоят из коллагеновых волокон, ориентированных преимущественно в одном направлении, тогда как обычные фиброзные перегородки содержат пучки коллагеновых волокон, расположенных в разных направлениях.
    3. По мере проведения диссекции рассекайте связочное покрытие прилежащих жировых карманов, чтобы обнажить жировую ткань для диссекции.
      1. Для разрезанных образцов с обнаженной жировой тканью осторожно примените аспирацию к жировой ткани по обе стороны от целевой связки, чтобы удалить ровно столько жировой ткани, сколько необходимо для обнажения края связки с целью облегчения её микрохирургической диссекции (с помощью ножниц). Избегайте прямой аспирации связки или фасциальных структур. Жировая ткань организована в дольки, которые остаются прикрепленными к окружающим связкам Купера.
      2. Осторожно удалите жировую ткань, чтобы обнажить связочный каркас и облегчить визуализацию анатомических взаимоотношений между связками Купера, системой поверхностных фасций и окружающей жировой тканью (Рисунок 6).
    4. Поддерживайте гидратацию с помощью промывания физиологическим раствором.
      1. На протяжении всей процедуры используйте промывание нормальным физиологическим раствором для предотвращения высыхания тканей.
      2. Выполняйте промывание по мере необходимости, ориентируясь на внешний вид ткани, а не на заранее определенную скорость потока или общий объем.
      3. Отрегулируйте аспирационный отвод по мере необходимости, чтобы очистить поле диссекции от излишков жидкости и детрита, обеспечивая беспрепятственное наблюдение и точную диссекцию каждой связки.

4. Видеодокументация

  1. Запишите весь процесс диссекции.
    1. Используйте встроенную систему камер микроскопа для захвата всего процесса диссекции в режиме реального времени для последующего обращения и анализа, чтобы убедиться, что ни один этап не был упущен. Проводите диссекцию под оптическим увеличением 5×–10× с помощью операционного микроскопа.
  2. Сосредоточьтесь на ключевых анатомических структурах.
    1. В процессе диссекции и записи последовательно увеличивайте кратность с низкой до высокой при изучении критически важных структур, включая связки Купера и их структурную связь с поверхностной фасциальной системой, чтобы получить детальные изображения, демонстрирующие их взаимоотношение с окружающими тканями.
  3. Аннотируйте полученные результаты.
    1. Во время диссекции записывайте голосовые комментарии. После получения видеоматериала просмотрите записанное видео и аудио, чтобы добавить текстовые аннотации на этапе постпродакшна.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Эти аннотации выделяют ключевые анатомические структуры, этапы процедуры и важные наблюдения, тем самым повышая образовательную ценность и ясность итогового видео.

Результаты

В течение 1 года была проведена микрохирургическая диссекция 24 образцов односторонней профилактической мастэктомии, полученных от 24 пациентов. Степень видимости отдельных фасциальных и связочных структур варьировалась между образцами; поэтому представленные здесь репрезентативные изображения были выбраны для иллюстрации протокола, анатомического вида фасциальных и связочных структур, а также наблюдаемых анатомических взаимоотношений между связками Купера, DLSF, SLSF и окружающей жировой тканью. Сводка репрезентативных анатомических наблюдений, задокументированных с помощью данного протокола, приведена в Таблице 2. Репрезентативные примеры описаны ниже.

Связки Купера простираются до SLSF и дермы:
Мы заметили, что связки Купера, по всей видимости, пересекают SLSF и распространяются в дерму, укрепляя структурную целостность поверхностной архитектуры молочной железы. Эти расширения указывают на наличие более сложной сети, чем было описано ранее13, что может потребовать дальнейшего изучения и возможного обновления номенклатуры для дифференциации этих расширенных сегментов (Рисунок 7A).

Связки Купера соединяются с DLSF и фасцией большой грудной мышцы:
Мы заметили, что связки Купера, по всей видимости, распространяются кзади через DLSF и продолжаются в фасции, покрывающей большую грудную мышцу. Это наблюдение подчеркивает ранее недооцененную структурную взаимосвязь, которая может иметь значение для хирургических методик, включающих манипуляции с глубокой фасцией (Рисунок 7B). Взаимосвязь между связками Купера и SLSF дополнительно продемонстрирована на Рисунке 8. Осторожное приподнимание SLSF обеспечивает дополнительный репрезентативный вид ее непрерывности со связкой Купера, что облегчает визуализацию их анатомических соотношений.

Репрезентативные рисунки и Таблица 2 обобщают данные анатомические наблюдения и иллюстрируют непрерывность и анатомические взаимосвязи между связками Купера, фасциальными слоями и окружающей жировой тканью.

Схема анатомии молочной железы, измерение от соска до грудной клетки; анатомическое исследование, медицинская иллюстрация.
Рисунок 1Схематическое изображение сагиттального распила образца. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Схема микроскопии с монтажным устройством и операционным микроскопом для высокоточного оптического исследования.
Рисунок 2Адаптер для подключения смартфона к микроскопу. (A) Адаптер. (B) Смартфон, прикрепленный к микроскопу. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Диссекция грудной фасции человека; обозначенные части; анатомическое исследование; учебная схема.
Рисунок 3Репрезентативный сагиттальный срез ткани молочной железы перед микрохирургической диссекциейОриентация образца определяется по верхнему, нижнему, переднему краям и поверхности пекторальной фасции. Показанная поверхность представляет собой медиальный срез ткани в сагиттальной плоскости; противоположная поверхность соответствует латеральному краю молочной железы. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Диссекция подкожного жира и премаммарной жировой ткани с диаграммой, указывающей анатомическую ориентацию.
Рисунок 4Идентификация поверхностного слоя поверхностной фасции (ПСПФ). (A) Репрезентативное изображение микрохирургической диссекции, демонстрирующее поверхностную слизистую фасцию (SLSF) подкожным жиром. (А’) Соответствующая схема, иллюстрирующая анатомическое расположение SLSF. Указана анатомическая ориентация. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Диссекция постмаммарной жировой ткани; схема анатомических слоев; хирургическое исследование.
Рисунок 5Идентификация глубокого слоя поверхностного фасциального слоя (DLSF). (A) Репрезентативный микрохирургический диссекционный препарат, демонстрирующий глубокую латеральную фасцию (DLSF), расположенную непосредственно поверх пекторальной фасции. (А’) Соответствующая схема, иллюстрирующая анатомическое расположение DLSF. Указана анатомическая ориентация. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть эту фигуру в увеличенном размере.

Хирургическая процедура извлечения ткани из образца; этапы процесса A–D; показаны инструменты для диссекции.
Рисунок 6Пошаговое препарирование, демонстрирующее постепенное обнажение поверхностного слоя поверхностной фасции (SLSF) и связанной с ним связки КупераОриентация: верх = передняя часть; низ = задняя часть; лево = верхняя часть; право = нижняя часть. Образец представлен при взгляде со медиальной стороны.A) Связка Купера приподнимается пинцетом и отделяется от окружающей жировой ткани с помощью ножниц. Желтая стрелка указывает на связку Купера. (BЖировые дольки почти полностью отделены (отмечено желтой стрелкой) от связки.C) Поверхностный слой фасции (SLSF, указан синими стрелками) окружен подкожно-жировой клетчаткой (отмечена желтой стрелкой). (D) SLSF изолируют после удаления внутренней и внешней жировой ткани. Синяя стрелка указывает на SLSF. Нажмите здесь, чтобы просмотреть этот рисунок в увеличенном масштабе.

Схема анатомической диссекции с указанием ориентации сухожилий и мышц.
Рисунок 7Репрезентативная визуализация анатомических взаимоотношений между связками Купера и поверхностной фасциальной системой. (A) Связки Купера, по всей видимости, проходят через поверхностный слой поверхностной фасции (зеленая линия) к дерме, на что указывают желтые стрелки. (B) Связка Купера (желтая стрелка), по-видимому, проходит сквозь глубокий слой поверхностной фасции (зеленая линия) до пекторальной фасции, что указано синей стрелкой. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Анатомическая диссекция медиальной области плеча, стрелки указывают на сравнение слоев тканей; для образовательных целей.
Рисунок 8Взаимосвязь между связкой Купера и поверхностным слоем поверхностной фасции (SLSF). (A) Связка Купера была селективно маркирована шовным материалом после анатомической идентификации для целей документирования и отмечена желтой стрелкой. SLSF отмечена синими стрелками. (B) SLSF была осторожно приподнята, чтобы более наглядно продемонстрировать ее анатомическую взаимосвязь с отмеченной швом связкой Купера (желтая стрелка). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

ХарактеристикаЗначение
Пациенты, n24
Образцы мастэктомии, n24 (все односторонние)
Возраст, лет52.5 ± 12.2 (33–86)
ИМТ, кг/м²29.49 ± 5.62 (20.55–42.38)
Профилактическая мастэктомия24 (100%)
Предшествующая операция на молочной железе0 (0%)
Предшествующая лучевая терапия0 (0%)
мутация BRCA11 (4.2%)
мутация BRCA22 (8.3%)
Отсутствие документально подтвержденной мутации в генах BRCA1/221 (87.5%)

Таблица 1: Демографические данные пациентов и характеристики образцов.

Репрезентативная анатомическая находкаДополнительный рисунок
Поверхностный слой поверхностной фасции (ПСПФ) можно определить как непрерывный фасциальный слой, расположенный под дермой.Рисунок 4, Рисунок 6, Рисунок 8
Глубокий слой поверхностной фасции (ГСПФ) можно идентифицировать кпереди от пекторальной фасции, где он проходит параллельно ей.Рисунок 5
Связки Купера проходят через поверхностную слизистую фасцию в дерму.Рисунок 7A
Связки Купера продолжаются кзади через глубокий слой поверхностной фасции (DLSF) по направлению к фасции, покрывающей большую грудную мышцу.Рисунок 7B

Таблица 2: Репрезентативные анатомические признаки, выявленные с помощью протокола микрохирургической диссекции.

Обсуждение

Процесс диссекции, описанный в данном исследовании, акцентирует внимание на нескольких критических этапах, необходимых для достижения оптимальной визуализации связок Купера и поверхностной фасциальной системы. Правильное сагиттальное рассечение тканей молочной железы на срезы толщиной 2 cm под руководством патологоанатома имеет фундаментальное значение для сохранения анатомической ориентации и целостности исследуемых структур. Кроме того, использование хирургического микроскопа с увеличением 5×–10× обеспечивает точность диссекции и наблюдения за деликатными структурами. Ирригация срезов тканей физиологическим раствором и использование системы аспирации необходимы для поддержания гидратации тканей и обеспечения визуальной четкости в ходе диссекции.

Для решения технических проблем, возникших в ходе диссекции, а также для повышения согласованности и четкости анатомической визуализации был введен ряд процедурных доработок. Для улучшения манипуляций с тканями и облегчения идентификации фасциальных и связочных структур использовалось повышенное оптическое увеличение с помощью операционного микроскопа и микрохирургических инструментов с тонкими наконечниками . Для обеспечения мониторинга в реальном времени и записи в высоком разрешении применялся адаптер для смартфона, подключенный к хирургическому микроскопу. В качестве альтернативы может быть использован микроскоп с интегрированным видеовыходом. На протяжении всей процедуры проводилось периодическое промывание наконечника аспиратора и перемежающаяся ирригация физиологическим раствором для предотвращения засорения и поддержания адекватного всасывания. Поддерживайте ткани в достаточно увлажненном состоянии. Гидратация сохраняет естественный вид фасциальных и связочных структур для их более точной идентификации. С помощью осторожной аспирации удаляйте лишь необходимое количество жировой ткани по обе стороны от целевой связки, чтобы улучшить визуализацию краев связочных и фасциальных структур, сохраняя при этом саму целевую связку или фасциальную структуру. В совокупности эти доработки повышают воспроизводимость процедуры, улучшают визуализацию фасциальных и связочных структур и увеличивают образовательную ценность протокола.

Несмотря на вышеперечисленные методологические достижения, сохраняются некоторые ограничения. Анатомическая идентификация SLSF, DLSF, связок Купера и пекторальной фасции определялась в ходе микрохирургического препарирования на основе макроанатомических характеристик и взаиморасположения тканей. Идентификация фасциальных и связочных структур не была независимо подтверждена патологоанатомом по молочной железе или анатомом, а гистологическая или микроскопическая корреляция не проводилась, так как это не входило в цели данного исследования. Тем не менее, идентификация этих структур основывалась на 40-летнем опыте старшего автора в проведении реконструкции молочной железы и других видов операций на груди. Таким образом, отсутствие независимой анатомической и гистологической валидации представляет собой небольшое, но определенное ограничение данного исследования.

Электрокоагуляция регулярно используется при мастэктомии в рамках стандартной хирургической практики в нашем учреждении. Хотя все образцы прошли через один и тот же процесс забора тканей, термическое повреждение вследствие электрокоагуляции могло изменить макроскопический вид структуры пекторальной фасции. Поскольку термические артефакты не оценивались официально, их влияние на анатомическую идентификацию пекторальной фасции в данном исследовании не было полностью изучено. Тем не менее, пекторальная фасция идентифицировалась на основании ее расположения относительно самого образца мастэктомии, т. е. она является последним структурным слоем, входящим в состав образца при отделении хирургом ткани молочной железы от грудных мышц. Идентификация DLSF остается сложной задачей из-за ее переменной близости к пекторальной фасции и различного характера расположения в разных образцах. Кроме того, использование тканей пациентов, перенесших профилактическую мастэктомию, может привести к систематической ошибке отбора, так как такие образцы могут не в полной мере отражать анатомические вариации, встречающиеся в общей популяции. Кроме того, использование 5×–10× Увеличение, хотя и достаточное для данного протокола, может не позволить зафиксировать ультратонкие детали, доступные при более высоком увеличении. Другим потенциальным ограничением данного исследования является возрастной диапазон пациентов. Все образцы были получены от женщин в возрасте примерно от 33 до 86 лет, и, следовательно, могут не полностью отражать анатомические особенности женщин вне этого диапазона. Наконец, данное исследование было разработано для представления протокола микрохирургической диссекции, а не для проспективной валидации эффективности исследования и количественных показателей, таких как частота идентификации, время диссекции, частота технических сбоев и вариабельность, связанная с оператором. Таким образом, количественные показатели систематически не регистрировались.

Данный протокол позволяет проводить микрохирургическую визуализацию связок Купера и поверхностной фасциальной системы в свежей ткани молочной железы человека, предлагая рекомендуемый подход к изучению их анатомических взаимосвязей. Представленные наблюдения подтверждают общую концепцию, согласно которой паренхима молочной железы располагается между поверхностным и глубоким слоями поверхностной фасциальной системы и пересекается связками Купера. Тем не менее, в предыдущих анатомических описаниях существуют различия в охвате и номенклатуре. Rehnke et al. предложили более широкую трехмерную модель, в которой передний и задний листки окружают тело молочной железы (corpus mammae) и сливаются на периферии с глубокой фасцией грудной стенки, образуя циркуммаммарную связку4. В отличие от этого, настоящий протокол сосредоточен на воспроизводимой идентификации SLSF, DLSF, связок Купера и пекторальной фасции. Для сравнения, терминология, обобщенная Duncan et al., в частности, поверхностный и глубокий слои поверхностной фасциальной системы и связки Купера, более точно соответствует структурам, выявленным в ходе наших диссекций13. Опираясь на эти предыдущие подходы, данный протокол предлагает дополнительный метод микрохирургической диссекции для прямой визуализации этих структур и их трехмерных взаимосвязей в свежей ткани молочной железы человека. Обеспечивая более четкое понимание этих связей, данная методика расширяет базу анатомических знаний и создает основу для будущих анатомических и хирургических исследований. По сравнению с исследованиями на трупном материале, использование в данном протоколе свежих нефиксированных образцов тканей может обеспечить лучшую сохранность естественной лигаментарной архитектуры молочной железы14.

Результаты данного исследования могут иметь значение для будущих анатомических исследований и обучения хирургов. Для маммологов и пластических хирургов детальная визуализация связок Купера, поверхностной фасциальной системы и их непрерывности с пекторальной фасцией дает ценные анатомические ориентиры для идентификации тканевых структур, которые визуализируются и используются при реконструкции молочной железы, подготовке кармана для имплантата, мастопексии и мастэктомии. Сохранение поверхностного фасциального слоя и его связочных прикреплений может помочь в поддержании естественного поддерживающего каркаса при определенных операциях на молочной железе, где поверхностная фасциальная система сохраняется, например, при реконструкции после сегментарной мастэктомии. Однако эти потенциальные области применения требуют дальнейшего клинического подтверждения. Данный протокол диссекции может быть применим в биомеханических исследованиях, где детальное анатомическое понимание имеет решающее значение для моделирования механического поведения тканей молочной железы. Помимо анатомической характеристики, этот протокол может способствовать проведению будущих исследований по сопоставлению данных визуализации с макроанатомией, поддерживать конечно-элементное моделирование и хирургическую симуляцию, а также способствовать разработке учебных ресурсов по анатомии. Протокол может служить полезным ресурсом для дальнейшего изучения анатомии молочной железы и изменений при патологических состояниях, таких как рак или травма15.

В заключение, данное исследование представляет стандартизированный протокол микрохирургической диссекции для визуализации связок Купера и поверхностной фасциальной системы в свежей ткани молочной железы человека. Этот протокол является полезным ресурсом для будущих анатомических, трансляционных и хирургических исследований.

Раскрытие информации

Настоящим мы заявляем об отсутствии конфликтов интересов в отношении данной научной статьи. Инструменты с искусственным интеллектом (ChatGPT и Grammarly) использовались исключительно для языкового редактирования. Все научное содержание было проверено и одобрено авторами.

Благодарности

Авторы благодарят NIH за финансовую поддержку в рамках проекта «Улучшенное биомеханическое моделирование молочной железы для женского здоровья» (R01EB032533). Особая благодарность Эстер Сей, Саре Халл и Тине Альварадо за вклад в данное исследование, включая отбор пациентов, получение согласия, сбор образцов и подготовку оборудования. Авторы также искренне благодарят Дон Чалер, заместителя директора по редакционным услугам Медицинской исследовательской библиотеки Техасского университета MD Anderson Cancer Center, за тщательное редактирование и ценные предложения, которые значительно улучшили ясность и читаемость рукописи. Это было бы невозможно без их усилий.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
0.9% раствор NaClОбщего назначенияН/ДИспользуется для ирригации тканей и периодического промывания аспирационного наконечника Фрейзера во время диссекции.
Адаптер (для смартфона и микроскопа)GOSKYСтандартныйАдаптер для смартфона, используемый для крепления камеры к операционному микроскопу.
КамераAppleiPhone SE (2-е поколение)Используется для видеозаписи через операционный микроскоп.
Краситель CDI для маркировки тканейCancer Diagnostics, Inc.#0727-1, #0727-3, #0727-4, #0727-6Используется для окрашивания целого препарата мастэктомии перед секционированием для ориентации (Красный = верхний полюс, Оранжевый = нижний полюс, Зеленый = передняя поверхность, Черный = задняя поверхность).
ПинцетPrecision Medical DevicesН/ДИспользуется для микрохирургических манипуляций с тканями.
Аспирационный наконечник ФрейзераIntegra MiltexМодель не указанаИнструмент — 3-мм аспирационный наконечник Фрейзера, используемый для аспирации тканей во время диссекции. 
Стационарный госпитальный аспираторН/ДН/ДСтационарная система аспирации, подключенная к источнику вакуума в операционной.
Микроножницы Precision Medical DevicesS1059 1575Используются для тонкой микрохирургической диссекции тканей.
Лезвие скальпеля №20Swann-MortonПримерИспользуется для грубой подрезки препарата.
Нерассасывающийся шовный материал (Шелк)EthiconMersilk 4-0Используется для маркировки анатомических структур для фото- и видеодокументации.
Рукоятка скальпеляОбщие хирургические принадлежностиН/ДСовместима с лезвием скальпеля №20.
Хирургический микроскопMed Link Z880 Операционный микроскоп, используемый для микрохирургической диссекции
Чашки для культивирования тканейCorning430167Используются для содержания физраствора для периодического промывания аспирационного наконечника Фрейзера.

Ссылки

  1. Cooper AP. On the Anatomy of the breast. Longman, Orme, Green, Brown, and Longmans; London; 1840.
  2. Lockwood T. Reduction mammaplasty and mastopexy with superficial fascial system suspension. Plast Reconstr Surg. 1999;103(5):1411-20.
  3. Lockwood TE. Superficial fascial system (SFS) of the trunk and extremities: a new concept. Plast Reconstr Surg. 1991;87(6):1009-18.
  4. Rehnke RD, Groening RM, Van Buskirk ER, Clarke JM. Anatomy of the superficial fascia system of the breast: A comprehensive theory of breast fascial anatomy. Plast Reconstr Surg. 2018;142(5):1135-44.
  5. Hall MI, et al. A reinterpretation of human breast anatomy includes all the layers of the anterior body wall. Anat Rec (Hoboken). 2024;307(11):3564-73.
  6. Gaskin KM, Peoples GE, McGhee DE. The attachments of the breast to the chest wall: A dissection study. Plast Reconstr Surg. 2020;146(1):11e-22e.
  7. Briot N, Chagnon G, Burlet L, Gil H, Girard E, Payan Y. Experimental characterisation and modelling of breast Cooper's ligaments. Biomech Model Mechanobiol. 2022;21(4):1157-68.
  8. Duraes M, et al. New insights on breast anatomy based on magnetic resonance imaging and surgical observations. Clin Anat. 2026;doi: 10.1002/ca.70071.
  9. Liu Q, et al. Endoscopic anatomy of the breast fascia system: Peripheral-to-central approach. Plast Reconstr Surg Glob Open. 2025;13(11):e7315.
  10. Teixeira AM, Martins P. A review of bioengineering techniques applied to breast tissue: Mechanical properties, tissue engineering and finite element analysis. Front Bioeng Biotechnol. 2023;11:1161815.
  11. Bhattarai A, Reece GP, Brock KK, Ravi-Chandar K. A comprehensive biomechanical material characterization of the human breast fibro-structural support system. J Mech Behav Biomed Mater. 2026;175:107283.
  12. Matousek SA, Corlett RJ, Ashton MW. Understanding the fascial supporting network of the breast: key ligamentous structures in breast augmentation and a proposed system of nomenclature. Plast Reconstr Surg. 2014;133(2):273-81.
  13. Duncan AM, Al Youha S, Joukhadar N, Konder R, Stecco C, Wheelock ME. Anatomy of the breast fascial system: A systematic review of the literature. Plast Reconstr Surg. 2022;149(1):28-40.
  14. Hubbell DS, Dwornik JJ, Alway SE, Eliason R, Norenberg RE. Teaching gross anatomy using living tissue. Clin Anat. 2002;15(2):157-9.
  15. Vidya R, Ghulam H, Wild J. Breast anatomy: The importance of understanding the superficial fascial system for oncoplastic dissection. Plast Reconstr Surg. 2019;144(2):320e.

Перепечатки и разрешения

Теги

Эта статья была опубликована

Видео скоро будет доступно