Идентификация и функциональная аннотация совместно экспрессируемых генов купроптоза и ферроптоза
Были интегрированы четыре обучающих набора данных, включающих 421 образец с язвенным колитом (UC) и 97 здоровых контролей. Всего было выявлено 551 дифференциально экспрессируемых ген, из которых 362 гена имели повышенную экспрессию, а 189 — пониженную. Корреляционный анализ позволил определить 444 гена, коррелирующих с ферроптозом и купроптозом, а пересечение с дифференциально экспрессируемыми генами позволило выделить 32 совместно экспрессируемых дифференциально экспрессируемых гена, связанных с купроптозом и ферроптозом (CF-DEGs).
32 CF-DEG были обогащены по ответам на повреждение, ионы меди, транспорт жирных кислот, липополисахариды, воспалительные заболевания кишечника, сигнализацию NF-κB, сигнализацию TNF и ферроптоз (Дополнительная таблица 4).
Приоритизация основных биомаркеров с помощью интегрированного машинного обучения и WGCNA
С помощью взвешенного анализа сетей коэкспрессии генов (WGCNA) были определены модули MEpurple, MEbrown и MEblack как модули, наиболее сильно связанные с ЯК. В совокупности выбранные модули содержали 1 426 генов (Дополнительная таблица 5).
Метод наименьших абсолютных отклонений с выбором признаков (LASSO), метод опорных векторов с рекурсивным исключением признаков (SVM-RFE) и случайный лес отобрали 21, 32 и 19 признаков соответственно. Тринадцать генов были общими для всех трех моделей. Интеграция консенсуса машинного обучения, ядра белок-белковых взаимодействий, ранжированного с помощью CytoHubba, и выбранных модулей WGCNA позволила выявить пять потенциальных биомаркеров, ассоциированных с ЯКБ: LCN2, IDO1, CXCL2, NOS2 и CD274.
Диагностическая оценка и анализ обогащения путей биомаркерной сигнатуры
Все пять потенциальных биомаркеров положительно коррелировали между собой и демонстрировали повышенную экспрессию при НЯК в обучающей когорте (Рисунок 2A, B). Для каждого маркера значение площади под ROC-кривой составило > 0,80 в обучающей когорте и > 0,75 в независимой валидационной когорте GSE47908 (Рисунок 2C–E).
Номограмма на основе пяти генов продемонстрировала хорошую калибровку (значение P критерия Хосмера–Лемешоу > 0,05, средняя абсолютная ошибка < 0,1) и высокую дискриминационную способность в исследуемой когорте: площадь под кривой и индекс конкордации составили 0,945, при этом 95% доверительный интервал для индекса конкордации составил 0,922–0,968 (Рисунок 3).
Анализ обогащения наборов генов связал пять кандидатов с сигнальными путями JAK–STAT, интерферон–RIPK1/3 и Toll-подобных рецепторов–NF-κB (Рисунок 4).

Рисунок 2: Экспрессия потенциальных биомаркеров и диагностическая эффективность. (A) Тепловая карта корреляции. (B, C) Экспрессия биомаркеров и операционные характеристики приемника (ROC-кривые) в обучающей когорте. (D, E) Экспрессия биомаркеров и операционные характеристики приемника (ROC-кривые) в валидационной когорте GSE47908. ROC: операционная характеристика приемника; AUC: площадь под кривой; UC: язвенный колит. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Рисунок 3: Разработка и оценка номограммы для UC. (A) Номограмма пяти генов. (B) Калибровочный график. (C) ROC-кривая. ROC: рабочая характеристика приемника; UC: язвенный колит; AUC: площадь под кривой; C-index: индекс конкордации. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Рисунок 4: Анализ обогащения наборов генов для пяти потенциальных биомаркеров. (A–E) Результаты анализа обогащения наборов генов для LCN2, IDO1, CXCL2, NOS2 и CD274 соответственно. GSEA: анализ обогащения наборов генов. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
Анализ ландшафта иммунного микроокружения и регуляторных сетей
В образцах UC наблюдалось увеличение доли нейтрофилов, активированных Т-клеток памяти CD4⁺, макрофагов M1 и активированных тучных клеток, при взаимном снижении количества макрофагов M2, покоящихся тучных клеток и покоящихся дендритных клеток. Эти закономерности подтвердились в валидационной когорте (Рисунок 5A–E).
Пять кандидатов положительно коррелировали с нейтрофилами, активированными Т-клетками памяти CD4⁺ и макрофагами M1, и отрицательно — с покоящимися тучными клетками и макрофагами M2 (Рисунок 5F–J). Сеть «ген-miRNA» содержала 98 узлов и 146 ребер. hsa-miR-34a-5p и hsa-miR-16-5p продемонстрировали наибольшую связность биомаркеров, в то время как AR и RELA были наиболее связанными транскрипционными факторами (Рисунок 6).

Рисунок 5: Анализ иммунной инфильтрации. (A) Состав иммунных клеток. (B) Межгрупповые различия в пропорциях иммунных клеток. (C) Тепловая карта корреляции иммунных клеток. (D, E) Инфильтрация иммунных клеток в обучающей и валидационной когортах. (F–J) Корреляции между потенциальными биомаркерами и популяциями иммунных клеток. UC: язвенный колит. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Рисунок 6: Предполагаемые сети miRNA и транскрипционных факторов. (A) Сеть ген–miRNA. Круги обозначают потенциальные биомаркеры, квадраты — miRNA. (B) Сеть транскрипционный фактор–ген. Ромбы обозначают потенциальные биомаркеры, перевернутые треугольники — транскрипционные факторы. miRNA: микроРНК; TF: транскрипционный фактор. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
Динамика пространственно-временной экспрессии с разрешением до одной клетки
После контроля качества 31 712 клеток образовали 22 кластера, которые были аннотированы как девять основных популяций клеток (Рисунок 7A–C). Доли эпителиальных клеток и плазматических клеток были выше при ЯКБ. LCN2 и NOS2 были обогащены в эпителиальных клетках, тогда как IDO1, CXCL2 и CD274 были обогащены в миелоидных клетках (Рисунок 7D–G).
Субкластеризация эпителиальных клеток выявила 11 подмножеств, при этом в данном подмножестве наблюдалось увеличение числа воспалительных колоноцитов и обогащение LCN2 и NOS2 (Рисунок 8). Субкластеризация миелоидных клеток выявила семь подмножеств, характеризующихся увеличением числа моноцитов, уменьшением числа макрофагов и обогащением моноцитов IDO1, CXCL2 и CD274 (Рисунок 9).
Воспаленные колоноциты накапливались на поздних этапах эпителиальной траектории, что сопровождалось усилением экспрессии LCN2 и NOS2 (Рисунок 10). Моноциты демонстрировали выраженную траекторию, связанную с НЯК, с динамической экспрессией IDO1, CXCL2 и CD274 (Рисунок 11).
Воспаленные колоноциты продемонстрировали наиболее выраженную исходящую сигнализацию и интенсивное взаимодействие с моноцитами. Пара лиганд–рецептор APP–CD74 была ведущей между этими субпопуляциями (Рисунок 12).

Рисунок 7: Экспрессия потенциальных биомаркеров в популяциях клеток. (A) Клеточные кластеры. (B) Маркеры аннотации. (C) Девять аннотированных популяций клеток. (D, E) Распределение и пропорции клеток в образцах здоровых людей и пациентов с ЯК. (F, G) Визуализация экспрессии потенциальных биомаркеров с помощью UMAP и пузырьковой диаграммы. UC: ulcerative colitis (язвенный колит); UMAP: uniform manifold approximation and projection (однородное многомерное приближение и проекция). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Рисунок 8: Субкластеризация эпителиальных клеток и экспрессия кандидатов. (A) Первоначальные кластеры эпителиальных клеток. (B) Маркеры аннотации. (C) Аннотированные подмножества эпителиальных клеток. (D) Доли подмножеств в образцах здоровых людей и пациентов с UC. (E) Экспрессия LCN2 и NOS2 в подмножествах эпителиальных клеток. t-SNE: t-распределенное стохастическое вложение соседей; UC: язвенный колит. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Рисунок 9: Субкластеризация миелоидных клеток и экспрессия кандидатных генов. (A) Первичные кластеры миелоидных клеток. (B) Маркеры аннотации. (C) Аннотированные подмножества миелоидных клеток. (D) Доли подмножеств в образцах здоровых людей и пациентов с UC. (E) Экспрессия IDO1, CXCL2 и CD274 в подмножествах миелоидных клеток. t-SNE: t-распределенное стохастическое вложение соседей; UC: язвенный колит. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Рисунок 10: Анализ псевдовремени эпителиальных клеток. (A) Траектория псевдовремени и назначение состояний. (B) Распределение здоровых эпителиальных клеток и клеток при ЯК вдоль траектории. (C) Динамика экспрессии LCN2 и NOS2 в зависимости от псевдовремени. ЯК: язвенный колит. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Рисунок 11: Анализ псевдовремени миелоидных клеток. (A) Траектория псевдовремени и назначение состояний. (B) Распределение здоровых миелоидных клеток и клеток при НЯК вдоль траектории. (C) Динамика экспрессии IDO1, CXCL2 и CD274 в зависимости от псевдовремени. НЯК: неспецифический язвенный колит. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Рисунок 12: Эпителиально-миелоидное взаимодействие. (A) Количество и сила взаимодействий. (B) Сила исходящих и входящих сигналов. (C) Взаимодействия с участием воспаленных колоноцитов. (D) Тепловая карта силы взаимодействия. (E) Пары лиганд-рецептор с участием воспаленных колоноцитов. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
In vitro экспериментальная валидация вмешательств при ферроптозе и купроптозе
Воздействие липополисахарида (LPS) снизило жизнеспособность клеток Caco-2 и повысило экспрессию IL-6 и IL-1β по сравнению с контролем (Рисунок 13A–C и Дополнительный рисунок 5).
LPS повышал уровень Fe2⁺, малонового диальдегида, а также содержание матричной РНК LCN2, IDO1, CXCL2 и NOS2, тогда как ферростатин-1 обращал каждое из этих изменений, вызванных LPS (Рисунок 13D–I). При сравнении групп LPS и LPS + ферростатин-1 точные двусторонние значения P варьировались от 9,45 × 10⁻5 до 0,0027 после усреднения технических повторов внутри каждого биологического повтора.
LPS снижал жизнеспособность и повышал уровни IL-6, IL-1β, FDX1/DLAT, CD274, а также интенсивность медь-чувствительной флуоресценции, тогда как тетратиомолибдат обращал эти изменения (Рисунок 14 A–E). При сравнении групп LPS и LPS + тетратиомолибдат точные двусторонние значения P варьировали от < 1 × 10⁻15 до 0,0008.
В совокупности проведенный анализ позволил выявить пять диагностических кандидатов, ассоциированных с НЯК, локализовать их экспрессию в эпителиальных и миелоидных популяциях, а также показать, что LCN2, IDO1, CXCL2 и NOS2 реагировали на ингибирование ферроптоза, в то время как CD274 реагировал на хелатирование меди в клетках Caco-2.

Рисунок 13: Ферростатин-1 ослабляет вызванные LPS воспалительные и связанные с ферроптозом изменения в клетках Caco-2. (A) Жизнеспособность клеток. (B, C) Экспрессия матричной РНК IL-6 и IL-1β. (D, E) Внутриклеточные уровни малонового диальдегида и Fe2⁺. (F–I) Экспрессия матричной РНК LCN2, IDO1, CXCL2 и NOS2. Технические трипликаты были усреднены внутри каждого независимого биологического повтора; планки погрешностей указывают стандартное отклонение. Доступное количество биологических повторов: Контроль n = 4 на панелях A и C, Контроль n = 2 на панели F и n = 6 для всех остальных комбинаций панелей/групп. Точные двусторонние значения P и проверка допущений приведены в Дополнительной таблице 5. Fer-1: ферростатин-1; LPS: липополисахарид; MDA: малоновый диальдегид. Нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Рисунок 14: Тетратиомолибдат ослабляет индуцированные LPS воспалительные и связанные с купроптозом изменения в клетках Caco-2. (A) Жизнеспособность клеток. (B, C) Экспрессия матричной РНК IL-6 и IL-1β. (D) Экспрессия матричной РНК FDX1 и DLAT. (E) Экспрессия матричной РНК CD274. (F) Внутриклеточная флуоресценция Cu2⁺; масштабный отрезок = 50 µm. Технические трипликаты были усреднены в каждом из шести независимых биологических повторов на группу; планки погрешностей указывают стандартное отклонение. Точные двусторонние значения P и проверки допущений приведены в Дополнительной таблице 5. TTM: тетратиомолибдат; LPS: липополисахарид. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
Необработанные и обработанные данные, скрипты анализа и исходные электронные таблицы экспериментов с клетками доступны в открытом доступе по адресу https://doi.org/10.5281/zenodo.21202720.
Дополнительный рисунок 1: Предобработка данных и диагностика дифференциальной экспрессии. (A–F) Распределения образцов до (A–C) и после (D–F) коррекции пакетного эффекта. (G) График «вулкан» (volcano plot) дифференциально экспрессируемых генов. (H) Тепловая карта паттернов нормализованной экспрессии. DEGs: дифференциально экспрессируемые гены; GEO: Gene Expression Omnibus.Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать этот файл.
Дополнительная фигура 2: Анализ обогащения CF-DEG. (A) Обогащение по Gene Ontology. (B) Обогащение по Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes. CF-DEG: коэкспрессируемые дифференциально экспрессируемые гены купроптоза и ферроптоза; GO: Gene Ontology; KEGG: Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes.Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать этот файл.
Дополнительный рисунок 3: Диагностика скрининга WGCNA. (A) Выбор мягкого порога. (B) Кластеризация собственных генов модулей. (C) Дендрограмма ген-модулей. (D) Связи между модулями и признаками. (E–G) Соотношения значимости генов и принадлежности к модулю для пурпурного, коричневого и черного модулей. WGCNA: weighted gene co-expression network analysis; UC: язвенный колит.Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать этот файл.
Дополнительный рисунок 4: Многоэтапный скрининг биомаркеров. (A, B) Отбор признаков методом LASSO. (C, D) Отбор признаков методом SVM-RFE. (E, F) Ранжирование признаков методом случайного леса. (G) Консенсус трех моделей. (H, I) Сеть PPI и основные узлы CytoHubba. (J) Интеграция результатов машинного обучения, WGCNA и PPI. (K) Хромосомная локализация пяти кандидатов. LASSO: least absolute shrinkage and selection operator; SVM-RFE: support vector machine–recursive feature elimination; RF: случайный лес; PPI: белок-белковое взаимодействие; WGCNA: weighted gene co-expression network analysis.Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать этот файл.
Дополнительный рисунок 5: Валидация модели LPS в клетках Caco-2. (A) Жизнеспособность клеток. (B, C) Экспрессия матричной РНК IL-6 и IL-1β. Технические трипликаты были усреднены в рамках шести независимых биологических повторов на группу; планки погрешностей указывают стандартное отклонение. LPS: липополисахарид.Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать этот файл.
Дополнительная таблица 1: Наборы данных GEO, использованные для поиска и валидации. Номера доступа к наборам данных, платформы, состав образцов и распределение по когортам для наборов данных GEO, включенных в анализ по поиску и валидации. GEO: Gene Expression Omnibus.Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать этот файл.
Дополнительная таблица 2: Последовательности праймеров для количественной ПЦР с обратной транскрипцией. Последовательности праймеров, использованные для анализа методом количественной ПЦР с обратной транскрипцией генов, изученных в данной работе.Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать этот файл.
Дополнительная таблица 3: Статистические данные для рисунков 13, 14 и дополнительного рисунка 1. Количество биологических повторностей, проверка допущений, методы статистического анализа и точные значения P для указанных экспериментальных сравнений.Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать этот файл.
Дополнительная таблица 4: Дифференциально экспрессируемые гены, коэкспрессируемые при купроптозе и ферроптозе. Список CF-DEG, выявленных путем пересечения генов, коррелирующих с ферроптозом и купроптозом, с дифференциально экспрессируемыми генами.Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать этот файл.
Дополнительная таблица 5: Гены в модулях WGCNA, выбранные для скрининга биомаркеров. Список генов, входящих в модули WGCNA, отобранные для последующего скрининга биомаркеров. WGCNA: взвешенный анализ сетей коэкспрессии генов.Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать этот файл.