23 июля 2009 г.
Это видео показывает, как вызвать аневризмы брюшной аорты (ААА) у мышей с помощью переходных внутрипросветный вливание эластазы поджелудочной железы свиньи в инфраренального сегмент брюшной аорты. Модель имеет возможность добавлять широкий понимание патобиологии AAA в связи с появлением многочисленных трансгенных мышей и гена нокаутом.
Данная хирургическая процедура, используемая для создания аневризмы брюшной аорты, начинается с срединного разреза брюшной стенки. Органы брюшной полости отодвигаются в сторону, и все ветви аорты лигируются. Проксимальный и дистальный отделы аорты перевязываются.
Сердце прокалывают иглой, после чего через термоусадочную полиэтиленовую трубку вводят большое количество эластазы. По завершении введения аутотомию аорты закрывают. Лигатуры удаляют, аорта заполняется кровью, и брюшную полость зашивают.
Затем мыши дают восстановиться; полное расширение аневризмы происходит через 14 дней. Здравствуйте, я Джулиан Асма из лаборатории фетальных клеток кафедры сердечно-сосудистой медицины Стэнфордского университета. Сегодня я продемонстрирую вам процедуру инъекции эластазы для создания экспериментальной модели аневризмы брюшной аорты у мышей.
Мы используем эту процедуру в вашей лаборатории для изучения ПЭ брюшной аорты. Итак, приступим. Для начала экспериментов выберите подходящую мышь, например, линии C 57 black six, и проведите ей общую анестезию путем ингаляции изофлурана до потери сознания. Пожалуйста, имейте в виду, что скорость роста аневризмы будет различаться у разных линий мышей.
Извлеките анестезированную мышь из камеры и поместите ее на adequately освещенную рабочую станцию. Выбрейте шерсть на животе от конца грудины до основания конечностей. Для удаления остатков волосков используйте крем для депиляции.
Протрите обнаженную кожу 70% спиртом до полного удаления шерсти из бритой области. Затем обработайте кожу бетадином минимум три раза, используя спиртовые протирания между процедурами. Положите мышь на спину на операционное поле, чтобы поддерживать ее в состоянии наркоза.
Во время операции установите в ноздрю трубку для подачи изофлурана с той же скоростью потока, которая использовалась для введения в состояние наркоза. Эластазу хранят на льду, после чего набирают в шприц. Затем шприц фиксируют зажимом и размещают рядом с операционным полем, после чего подсоединяют катетер.
Важно поддерживать стерильность кончика катетера, для чего его следует поместить в стерильный флакон. Перед тем как вскрыть мышь, убедитесь в соблюдении правил асептики. Начните с надевания стерильных перчаток.
Хирургические инструменты, ножницы, иглодержатели и пинцеты должны быть санитарно обработаны перед операцией. Уделите внимание подготовке и постарайтесь устранить любые другие потенциальные источники загрязнения во время операции. Если в ходе процедуры стерильность была нарушена, повторно стерилизуйте инструмент в стерилизаторе с раскаленными шариками.
После завершения всех подготовительных действий начните операцию с длинного срединного разреза брюшной стенки для доступа в брюшную полость. Сместите содержимое брюшной полости в свободное пространство или выведите его за пределы живота с помощью стерильной марли, чтобы обнажить брюшную аорту. Теперь с помощью пинцета осторожно изолируйте брюшную аорту на участке от уровня левой почечной вены до бифуркации.
В представленном случае имеется одна ветвь, расположенная выше места лигирования аорты, поэтому ее перевязывать не требуется. Если между местами дистального и проксимального лигирования аорты имеются другие ветви аорты, перевяжите эти ветви на расстоянии одного сантиметра от места бифуркации с помощью швов 10-0. На проксимальном и дистальном участках аорты наложите временные лигатуры из шелка 6.0 для остановки кровотока.
Теперь выполните автотомию в области бифуркации. Начните с прокола бифуркации иглой 30-го калибра. Через место автотомии AOR можно ввести термоформованную полиэтиленовую трубку и зафиксировать ее узлом.
С помощью пинцета осторожно и аккуратно введите трубку в аорту. Будьте внимательны, чтобы не повредить слой эндотелия, используя давление 100 milliliters. Аорту перфузировали эластазой из физиологического раствора из пакета, подвешенного на высоте 136 centimeters.
Убедитесь, что в трубке нет воздуха, иначе давление будет определено неточно. Физраствор содержит 4,5 единиц на миллилитр панкреатической эластазы свиньи I типа; заполнение аорты должно занять от 5 до 15 минут.
Во время перфузии аорта обычно расширяется примерно до 140% от своего первоначального диаметра. По завершении процедуры удалите систему перфузии и зашейте аортотомию швом 10-го размера, чтобы избежать сужения. После закрытия отверстия необходимо также удалить дистальную лигатуру.
При отсутствии или незначительном кровотечении из места восстановившейся автотомии проксимальную лигатуру удаляют. В случае кровотечения накладывают дополнительные временные пропитываемые лигатуры 6.0 на проксимальный и дистальный отделы аорты и накладывают еще один шов для полного закрытия автотомии аорты. После удаления проксимальной лигатуры расширенная аорта немедленно заполнится кровью.
После завершения процедуры на аорте верните кишечник в брюшную полость. Если кишечник был отведен, он переместится внутрь единым массивом, поэтому беспокоиться о его расположении не стоит. Когда все органы будут возвращены на свои места, наружную рану можно закрыть в два слоя, используя шесть швов из нейлона и полипропилена.
Теперь введите мыши местный анестетик, например, по одной капле 0,25% ICAN на сантиметр разреза. Также введите одну дозу противовоспалительного препарата Carin в дозе 5 мг/кг путем подкожной инъекции. Хирургическая операция завершена, и мышь следует поместить в теплое место до полного восстановления сознания.
Восстановление обычно происходит в течение 15 минут. Когда мышь приходит в сознание, ее возвращают в индивидуальную клетку и периодически наблюдают за ее состоянием до полного восстановления. После процедуры аорта обычно расширяется примерно до 140–160% от своего первоначального диаметра.
Эта первичная дилатация наблюдается со стабилизацией до седьмого дня. Быстрая вторичная дилатация происходит между седьмым и 14-м днем. К 14-му дню аневризма может быть обнаружена в подпочечной аорте.
Я только что продемонстрировал вам способ индукции абдоминальной аневризмы аорты с помощью эластазы у мышей. При выполнении этой процедуры важно избегать образования тромбов внутри аорты. На этом все.
Благодарим за просмотр и желаем успехов в вашем эксперименте.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
В данном видео демонстрируется хирургическая процедура индуцирования аневризмы брюшной аорты (АБА) у мышей с использованием свиной панкреатической эластазы. Эта модель позволяет изучить патобиологию АБА с помощью различных трансгенных и нокаутных линий мышей.
Модель абдоминальной аортальной аневризмы (ААА), индуцированной эластазой у мышей, позволяет проводить механистическую оценку рисков и валидацию мишеней для исследований сосудистых заболеваний. Данная платформа обеспечивает прогностическую достоверность при доклинической оценке терапевтических кандидатов и способствует трансляционной преемственности за счет использования генетически модифицированных линий мышей. Ее воспроизводимость и масштабируемость делают ее основой для сортировки портфеля препаратов при разработке лекарств для лечения сердечно-сосудистых заболеваний.
Эта модель объединяет все этапы: от раннего поиска до идентификации ведущих соединений и доклинической валидации в рамках разработки сердечно-сосудистых препаратов.