Подготовка и использование Phantom Поражения к практике изобразительного Биопсия Стремление иглы

Для подготовки имитации очага поражения вырежьте из картона квадрат размером 6 на 6 дюймов, который будет служить базовой пластиной. Покройте базовую пластину слоем герметика толщиной 0,5 дюйма. Затем отрежьте кусочек банана длиной 2,5 дюйма и осторожно вдавите его в герметик.

Банан служит ядром фантомного поражения. Полностью погрузите ядро в герметик, избегая образования пузырьков воздуха. Накройте ядро куском пищевой пленки и придайте ему форму гладкого холмика. Оставьте конструкцию из герметика затвердевать в теплом месте до полного отверждения.

Снимите пластиковую пленку, чтобы отработать навыки проведения ТАБ (тонкоигольной аспирационной биопсии) для извлечения образца из сердцевины банана и потренироваться в подготовке мазков. Я доктор Вино из отделения цитопатологии кафедры патологии Медицинского колледжа Висконсина. А я доктор Джордж Вар세기, стажер по цитопатологии того же отделения.

Сегодня мы продемонстрируем процедуру подготовки фантомного образования для отработки навыков выполнения тонкоигольной аспирационной биопсии (ТИАБ) с использованием простых и доступных инструментов и материалов. Как правило, этот метод используется для ознакомления специалистов-стажеров по цитопатологии и ординаторов-патологоанатомов с процедурой прижизненной аспирационной биопсии. В дальнейшем, в процессе обучения, стажеры и ординаторы будут совершенствовать свои навыки, выполняя аспирационную биопсию клинически пальпируемых образований под руководством преподавателей.

Итак, приступим. Подготовьте фантом повреждения за один или два дня до предполагаемого занятия по технике ТАБ (тонкоигольной аспирационной биопсии). Перед началом работы подготовьте на столе лист картона, строительный пистолет для герметика, неочищенный банан и пищевую пленку.

Первым этапом подготовки фантомного образования является вырезание из картона квадратного куска размером шесть на шесть дюймов, который будет служить базовой пластиной. Затем отрежьте сегмент банана длиной примерно два дюйма, который станет ядром фантомного образования. После того как ядро фантомного образования будет готово, с помощью строительного пистолета нанесите на базовую пластину слой герметика толщиной около полудюйма.

Слегка вдавите ядро фантомного поражения в сырой герметик. Затем нанесите слой герметика поверх ядра фантомного поражения, чтобы полностью его погрузить. Работая в перчатках, будьте осторожны, чтобы в герметике не образовались пузырьки воздуха.

Вручную распределите герметик вокруг сердцевины фантомного поражения, чтобы полностью ее окружить. Теперь накройте получившийся холмик куском пищевой пленки размером шесть на шесть дюймов и придайте ему гладкую выпуклую форму. Поместите холмик из герметика в теплое место для отверждения на шесть-восемь часов дольше, чем указано в инструкции по применению для данной марки герметика.

Герметик застывает при воздействии воздуха. Вы можете оставить образец при комнатной температуре выше 60 градусов Фаренгейта или инкубировать при 37 °C, чтобы ускорить процесс отверждения. После отверждения герметик становится твердым, и пластиковую пленку можно легко снять.

Фантомное образование для ТАБ теперь готово к использованию для отработки процедуры ТАБ. Теперь, когда вы подготовили фантомное образование и оно застыло, вы можете использовать его для практики проведения тонкоигольной аспирационной биопсии (ТАБ). В данном примере мы используем заборник тканей с функциональным клапаном, однако в целом можно использовать любую систему для ТАБ.

THFB состоит из иглы для прокола образца, ступицы иглы для сбора аспирированного материала, шприца для контроля давления внутри устройства и клапана для соединения и разъединения ступицы иглы со шприцем. Начните с подготовки узла ТАБ, при этом клапан, соединяющий ступицу иглы со шприцем, должен быть закрыт. Теперь потяните поршень шприца назад, чтобы создать вакуум в цилиндре шприца.

Затем введите кончик иглы в очаг поражения. Откройте клапан, чтобы соединить основание иглы с вакуумом в цилиндре шприца. Вакуум втягивает материал из очага поражения в иглу и далее в основание иглы.

Перемещайте иглу вперед и назад в области поражения, чтобы аспирировать репрезентативную пробу клеточных компонентов. Поддерживая вакуум, берите пробы из различных участков поражения, вводя иглу в разные стороны. По завершении забора проб поверните вентиль, чтобы отключить вакуум в цилиндре шприца, и выровняйте давление с внешними условиями, открыв вентиль.

Затем поверните клапан, чтобы отсоединить его от внешней среды и цилиндра шприца. Извлеките иглу из очага поражения при закрытом клапане. Сохранение клапана в закрытом состоянии поддерживает небольшое отрицательное давление в конце разъемного конца, что предотвращает вытекание образца обратно в очаг поражения за счет капиллярного эффекта.

Подобно эффекту пипетирования, образец ткани теперь надежно удерживается в основании иглы. Извлеките иглу из держателя и нанесите аспират на предметное стекло для приготовления прямого мазка. После того как капля аспирата будет нанесена на стекло, ее можно распределить различными способами в зависимости от характера материала; обычно мы распределяем образец между двумя стеклами методом, показанным здесь.

Если образец разбавлен кровью, слейте излишки крови, наклонив предметное стекло, прежде чем накрыть его вторым стеклом. Если аспират представляет собой преимущественно суспензию без микрофрагментов (например, при лимфопролиферативных поражениях), его можно распределить методом «ребристости» (ribbing method), при котором край одного стекла используется для создания серии мазков в виде ребер на другом стекле, либо методом размазывания, когда одно стекло используется для создания пленки на втором стекле. После подготовки мазков их можно обрабатывать и фиксировать различными способами.

При использовании различных методов окрашивания наилучшим подходом является быстрое высушивание всех мазков на воздухе в течение одной-двух минут. Сушку более густых и влажных мазков можно ускорить, перемещая предметные стекла в воздухе из стороны в сторону или, что предпочтительнее, с помощью фена или ручного портативного вентилятора на батарейках. При использовании вентилятора соблюдайте осторожность, чтобы предотвратить аэрозолизацию, особенно в случае очагов поражения с предполагаемой инфекцией; после высыхания мазков окрасьте их в соответствии с вашим протоколом экспериментов.

В данном видео мы демонстрируем окрашивание мазка, высушенного на воздухе, красителем D quick stain, который является одним из красителей серии Романовского для экспресс-анализа. Следуйте инструкциям производителя. Мы обнаружили, что высушивание на воздухе значительно повышает четкость окрашивания, что показано на этом примере мазков, окрашенных по методу Папаниколау.

Анализ этих первичных окрасок позволит определить необходимость проведения дополнительных исследований, таких как селективная электронная микроскопия клеточного блока, микробиологический посев или другие тесты. Успешное завершение работы с фантомным образованием обеспечит надлежащий забор материала из образования, в данном случае — пастообразного растительного материала из банана. Этот материал можно нанести на предметные стекла для отработки техники изготовления мазков и окрашивания.

Таким образом, мы продемонстрировали вам способ приготовления фантомного образования для отработки навыков тонкоигольной аспирационной биопсии (ТИАБ). При проведении данного эксперимента важно помнить, что фантомное образование следует подготовить минимум за 36 часов до сеанса тестирования навыков, так как герметизирующему гелю требуется время для затвердевания. Еще одним важным моментом является соблюдение правильной последовательности создания и сброса вакуума при выполнении процедуры ТИАБ для получения оптимального объема аспиратного материала.

На этом всё. Спасибо за просмотр и успехов в практике. Большое спасибо.