-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
Использование GELFREE 8100 Фракционирование Система Молекулярный вес основе фракционирования с жи...
Использование GELFREE 8100 Фракционирование Система Молекулярный вес основе фракционирования с жи...
JoVE Journal
Biology
This content is Free Access.
JoVE Journal Biology
Using the GELFREE 8100 Fractionation System for Molecular Weight-Based Fractionation with Liquid Phase Recovery

Использование GELFREE 8100 Фракционирование Система Молекулярный вес основе фракционирования с жидким этапе восстановления

Full Text
17,149 Views
07:57 min
December 3, 2009

DOI: 10.3791/1842-v

Chuck Witkowski1, Jay Harkins1

1Research and Development,Protein Discovery, Inc.

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This video demonstrates the GELFREE 8100 Fractionation System, which efficiently partitions complex protein samples based on molecular weight. The process allows for high recovery of fractions in liquid phase, facilitating further analysis.

Key Study Components

Area of Science

  • Protein fractionation
  • Electrophoresis
  • Biochemical analysis

Background

  • The GELFREE 8100 system is designed for high-throughput protein analysis.
  • It allows for the separation of proteins without the use of gels.
  • This method is particularly useful for complex samples like tissue homogenates.
  • Efficient fractionation can enhance downstream applications.

Purpose of Study

  • To showcase the functionality of the GELFREE 8100 Fractionation System.
  • To demonstrate the ease of use and efficiency of the system.
  • To provide insights into the fractionation process and resultant data.

Methods Used

  • Preparation of protein samples with specific buffers.
  • Use of a disposable cartridge for fractionation.
  • Electrophoretic separation based on molecular weight.
  • Collection of fractions for further analysis.

Main Results

  • Successful partitioning of protein samples into multiple fractions.
  • Demonstrated reproducibility and efficiency in fraction collection.
  • Visual results from polyacrylamide gel electrophoresis analysis.
  • Potential for immediate downstream applications in analysis.

Conclusions

  • The GELFREE 8100 system provides a reliable method for protein fractionation.
  • It simplifies the workflow for researchers in protein analysis.
  • The technology enhances the ability to analyze complex protein mixtures.

Frequently Asked Questions

What types of samples can be used with the GELFREE 8100?
The system is suitable for various protein samples, including complex tissue homogenates.
How long does the fractionation process take?
The process can fractionate up to eight samples in about 90 minutes.
What is the maximum protein load per channel?
You can load up to one milligram of total protein per channel.
Can the fractions be used immediately after collection?
Yes, the collected fractions can be used for downstream applications immediately.
Is the system user-friendly?
Yes, it features an easy-to-use graphical user interface for operation.
What types of downstream analyses can be performed with the fractions?
Fractions can be analyzed using techniques like liquid chromatography and mass spectrometry.

Сопровождающее видео описывает использование GELFREE 8100 Фракционирование систему, какие разделы сложных образцов белка на основе молекулярного веса и восстанавливает фракций в жидкую фазу. Видео описывает, как работает технология, как она используется, а также предоставляет полученные данные, с полиакриламидном геле анализ фракционированного бычьего гомогената печени.

Здравствуйте, меня зовут Джей Харкинс. Я научный сотрудник в Protein Discovery. Сегодня я продемонстрирую, насколько легко использовать новую систему фракционирования 8, 100 без геля для достижения фракционирования на основе молекулярной массы с высоким уровнем восстановления.

Используя гелеобразный раствор, вы можете загрузить до одного миллиграмма общего белка на канал и воспроизводимо фракционировать до восьми образцов примерно за 90 минут. Итак, система включает в себя прибор, одноразовый картридж и все буферы, необходимые для проведения эксперимента. Итак, приступим.

Начните эту процедуру с установки и маркировки до восьми пробирок по 500 микролитров на каждую пробирку. Добавьте до одного миллиграмм образца белка в объеме до 112 микролитров. Количество белка в образце зависит от сложности образца.

Для более сложных образцов, таких как гомогенат ткани, используемый для этой демонстрации, от 150 до 200 микрограммов на канал дадут наилучшие результаты. Далее добавьте 30 микролитров пяти х буфера для проб, который входит в комплект картриджей без геля. К каждому образцу белка добавьте восемь микролитров одного моляра DTT.

Затем отрегулируйте каждый образец с водой до конечного объема 150 микролитров. Затем нагрейте флаконы в течение пяти минут при температуре 95 градусов Цельсия, чтобы денатурировать образец. Дайте нагретым образцам остыть до комнатной температуры, пока образец остывает.

Извлеките картридж без геля 8, 100 из пакета из фольги. Снимите и выбросьте герметик для пластин. Извлеките буфер для хранения из отсеков для картриджей с помощью пипетки.

Если будут использоваться все восемь камер картриджа, переверните картридж, чтобы слить буфер хранения из отсеков. Далее в каждый из анодных буферных резервуаров добавляется восемь миллилитров геля для свободного хода. В каждый из буферных резервуаров катода добавляется по шесть миллилитров, а в каждую из камер сбора впрыскивается по 100 микролитров.

С помощью восьмиканального пипеттера объемом от 100 до 200 микролитров удалите и отбросьте любой буфер, который вытек из резервуара с катодным буфером в камеру загрузки проб, и немедленно загрузите образцы в камеры загрузки. После загрузки образцов поместите картридж в станцию фракционирования без геля 8, 100. Затем опустите электродные решетки и закройте крышку с помощью простого в программировании графического интерфейса пользователя на сенсорном дисплее прибора, перейдите к списку доступных предварительно запрограммированных методов.

Выберите подходящий способ, нажав кнопку метода. Нажмите кнопку извлечения и введите номер нужного предварительно запрограммированного метода С помощью экранной клавиатуры нажмите OK. Затем нажмите кнопку «Применить».

Примененный метод появится в нижней части главного экрана. Каждый из предварительно запрограммированных методов состоит из заданных напряжений и временных пауз, предназначенных для разрешения белков в определенном диапазоне молекулярных масс. После того, как подходящий метод будет выбран, нажмите кнопку канала на главном экране.

Затем выберите каналы, которые будут использоваться в прогоне. Чтобы выбрать все восемь каналов, нажмите кнопку «Выбрать все». Затем нажмите «Готово».

Чтобы вернуться к основному экрану, убедитесь, что защитная крышка закрыта, а индикатор горит зеленым цветом в нижней части экрана. Теперь нажмите «Старт», чтобы начать эксперимент во время работы системы, круги, показанные в поле в левой части экрана, отображают состояние каждого канала. Зеленый кружок указывает на то, что канал активен.

Приложенные напряжения и токи отображаются справа от кругов состояния канала. Gel free 8, 100 автоматически приостановит сбор фракции с интервалом, указанным в методе. Когда инструмент будет поставлен на паузу для сбора дробей, появится текстовое поле, уведомляющее вас о том, что произошла пауза, а круги состояния станут желтыми.

Внутри картриджа между анодным и катодным резервуарами подается постоянное напряжение. Под действием этого потенциала белковая смесь электрофоретически приводится в движение из загрузочной камеры в специально разработанную прецизионную отливку. Гелевые белки сначала укладываются внутри острой полосы в укладывающемся геле, а затем разрешаются на основе их соответствующих молекулярных масс в разрешающем геле.

Когда белки вымываются из геля, они захватываются и концентрируются в жидкой фазе. В коллекции камеры геле нет. Затем прибор ставится на паузу.

На основе заранее выбранных временных интервалов и фракции собираются с помощью пипетки. Затем потенциал снова прикладывают для того, чтобы в конечном итоге захватить вторую интересующую молекулярную массовую фракцию. Затем этот процесс повторяется до тех пор, пока не будут собраны все желаемые фракции.

Каждый картридж содержит восемь независимых электрофоретических каналов, поэтому пользователь может запустить столько каналов, сколько ему нужно, и сохранить неиспользуемые каналы для использования в будущем. Чтобы удалить фракции, откройте крышку прибора, после чего воспользуйтесь пипеткой с внутренним каналом. Перелейте 150 микролитров жидкости из каждой из камер сбора в сборные пробирки или многолуночный планшет.

После удаления фракций дважды промойте камеру сбора гелевым буфером со свободным ходом, добавив 100 микролитров на канал и дважды пипетируя вверх и вниз. После промывки добавьте 100 микролитров геля в буфер для свободного течения обратно в камеры сбора. Закройте крышку и нажмите кнопку возобновления.

Гелевый free 8, 100 будет работать до следующего временного интервала. Общее время, оставшееся до окончания эксперимента, отображается в правой части экрана. Нажмите кнопку над полем отображения времени, чтобы переключиться между оставшимся временем и временем паузы.

После того, как все фракции собраны, их можно сразу же использовать для дальнейшей подготовки, такой как изоэлектрическая фокусировка или гель-электрофорез, или для анализа с помощью жидкостной хроматографии, масс-спектрометрии или иммуноаффинности. В этой демонстрации восемь образцов белка по 200 микрограммов каждый были разделены на 12 фракций каждая, что в общей сложности составило 96 фракций. Чтобы визуализировать результаты фракционирования и аликвоты каждой из 12 фракций из бычьей печени, образец гомогената был затем запущен на стандартном 1D-геле и окрашен серебром.

Как показано на этом рисунке, образец белка был фракционирован на 12 различных фракций, охватывающих диапазон молекулярной массы от 3,5 килодальтон до 150 килодальтон. Показанный здесь гель подчеркивает способность безгелевой системы 8, 100 фракционировать большое количество белка на различные молекулярно-массовые фракции. Это невероятно мощный инструмент для нисходящей и восходящей протеомики с использованием масс-спектрометрии, а также экспериментов по иммуноаффинности, где требуется одна очищенная фракция молекулярной массы неповрежденного белка.

Было приятно показать вам, как легко использовать систему фракционирования 8, 100 без геля для воспроизводимого разделения образца на дискретные фракции молекулярной массы и достижения высокого восстановления жидкой фазы. Вот и все. Спасибо за просмотр и удачи в ваших экспериментах.

Explore More Videos

Основные протоколы клеточной биологии выпуск 34 GELFREE SDS PAGE гель-электрофорез фракционирования белков разделение электрофорез протеомика масс-спектрометрия

Related Videos

Твердофазный микроэкстракционный отбор проб: метод извлечения проб из тканей трансплантатов на основе зондов

03:42

Твердофазный микроэкстракционный отбор проб: метод извлечения проб из тканей трансплантатов на основе зондов

Related Videos

3.5K Views

Многоступенчатая Подготовка Техника восстановить нескольких метаболита классов соединений для углубленного и информационному Metabolomic анализа

11:25

Многоступенчатая Подготовка Техника восстановить нескольких метаболита классов соединений для углубленного и информационному Metabolomic анализа

Related Videos

35.1K Views

Простой фракционированный метод экстракции для комплексного анализа метаболитов, липидов и белков из одного образца

11:17

Простой фракционированный метод экстракции для комплексного анализа метаболитов, липидов и белков из одного образца

Related Videos

37K Views

Глубокая протеома профилирование Изобарический маркировки, обширные жидкостная хроматография, масс-спектрометрии и при содействии программного обеспечения количественной оценки

10:37

Глубокая протеома профилирование Изобарический маркировки, обширные жидкостная хроматография, масс-спектрометрии и при содействии программного обеспечения количественной оценки

Related Videos

12.8K Views

Количественная оценка конкретных участков белка лизин ацетилирования и стехиометрии Succinylation с помощью приобретения данных независимые масс-спектрометрия

12:49

Количественная оценка конкретных участков белка лизин ацетилирования и стехиометрии Succinylation с помощью приобретения данных независимые масс-спектрометрия

Related Videos

12.2K Views

Фракционирование лигноцеллюлозной биомассы с использованием процесса OrganoCat

06:19

Фракционирование лигноцеллюлозной биомассы с использованием процесса OrganoCat

Related Videos

4.7K Views

Жидкостная хроматография в сочетании с показателем преломления или масс-спектрометрическим обнаружением для профилирования метаболитов в бесклеточных системах на основе лизата

14:42

Жидкостная хроматография в сочетании с показателем преломления или масс-спектрометрическим обнаружением для профилирования метаболитов в бесклеточных системах на основе лизата

Related Videos

5.8K Views

Гликопротеомика под контролем гликомики способствует комплексному профилированию гликопротеома в сложных опухолевых микроокружениях

10:59

Гликопротеомика под контролем гликомики способствует комплексному профилированию гликопротеома в сложных опухолевых микроокружениях

Related Videos

1.9K Views

Определение четырех компонентов в системе доставки РНК липидных наночастиц с помощью жидкостной хроматографии в сочетании с детектором испарительного рассеяния света

08:54

Определение четырех компонентов в системе доставки РНК липидных наночастиц с помощью жидкостной хроматографии в сочетании с детектором испарительного рассеяния света

Related Videos

1.5K Views

Подготовка и Фракционирование Xenopus laevis Яйцо Экстракты

07:45

Подготовка и Фракционирование Xenopus laevis Яйцо Экстракты

Related Videos

12.6K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code