RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
ru_RU
Menu
Menu
Menu
Menu
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
- Экспериментальные модели метастазирования помогают оценить потенциал опухолевых клеток к экстравазации и пролиферации в определенных местах после внутрисосудистого введения. Для начала приготовьте одноклеточную суспензию клеток меланомы в нужной концентрации с использованием соответствующей среды. Загрузите суспензию в шприц.
Затем зафиксируйте мышь в камере и закрепите ее так, чтобы ее хвост был доступен. Поверните мышь на 90 градусов, чтобы визуализировать ее боковую вену. Используйте тепловую лампу для повышения температуры окружающей среды, чтобы расширить хвостовую вену. Теперь введите иглу по направлению к дистальному концу хвоста и введите приготовленную суспензию клеток меланомы в расширенную вену.
Введенные метастатические опухолевые клетки мигрируют по кровеносной системе. В конце концов, некоторые из этих клеток экстравазируются из кровообращения в отдаленные органы, такие как легкие. Эти опухолевые клетки приспосабливаются к новому микроокружению, размножаются и создают экспериментальные метастатические очаги.
В следующем протоколе мы продемонстрируем инъекцию клеток меланомы B16-BL6 в мышиную модель в хвостовую вену для изучения их метастатического потенциала.
- После того, как все клеточные суспензии B16-BL6 будут приготовлены, выберите мышь. Держа его за хвост, направьте животное вперед на дыбы в удерживающее устройство. Когда туловище мыши находится в основной камере, а ее хвост находится за пределами устройства, продолжайте тянуть животное к концу удерживающего устройства.
Далее вставьте ограничитель-поршень и продолжайте нажимать на поршень до тех пор, пока мышь не будет надежно закреплена. Как только животное окажется на месте, поверните мышь на 90 градусов так, чтобы одна из боковых хвостовых вен была обращена вверх. Затем с помощью спиртовой салфетки энергично очистите ту сторону хвоста мыши, где вена наиболее заметна.
Чтобы подготовиться к инъекции, сначала соберите в шприц 300 микролитров из суспензии 0,5 миллиона клеток на миллилитр. После этого изгоняйте пузырьки из шприца, переворачивая его, щелкая его боком и нажимая на поршень. После удаления пузырьков извлеките клеточную культуру, чтобы получить окончательный объем 250 микролитров в шприце
.Продолжайте вытягивать хвост мыши недоминирующей рукой. Держите его так, чтобы указательный палец приподнимал проксимальный конец хвоста, а большой палец надавливал на дистальный отдел. Доминирующей рукой введите иглу в вену по направлению к дистальному концу хвоста, под минутным углом вниз. Затем, введите иглу дальше, отрегулировав ее так, чтобы она совпадала с углом наклона хвостовой вены.
После того, как игла была введена, примерно на 1 сантиметр в хвостовую вену, начните нажимать на поршень, удерживая шприц неподвижно. Остановите кровотечение, приложив марлю к месту входа. После того, как клеточная суспензия будет выброшена, извлеките иглу из вены и выбросьте ее. Затем извлеките поршень из ограничителя и поместите мышь в клетку для реципиента.
Related Videos
11:19
Related Videos
12.7K Views
07:44
Related Videos
10.3K Views
05:59
Related Videos
12K Views