RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
ru_RU
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/2236-v
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Следующий протокол предусматривает обучение для адаптации человека индуцированных плюрипотентных стволовых (IPS) Клетки для фидерных без культуры с помощью полного KnockOut сыворотки питатель-Free Замена среды (КСР-FF). Как только адаптированные, инструкции для постоянного обслуживания также обеспечены.
Общая цель этой процедуры заключается в адаптации и поддержании индуцированных плюрипотентных стволовых клеток человека к культуре без фидера с использованием полной замены сыворотки с нокаутом, свободной от питательной среды. Это достигается путем предварительной подготовки пластин с гелевым покрытием, покрытием TRX или пластинами с покрытием Cell Start. Вторым этапом процедуры является передача IPS от MEF к питательной среде, свободной от подачи, с использованием дискового пространства.
Заключительным этапом процедуры является постоянное поддержание чистоты питателя IPS-ячеек. В конечном счете, могут быть получены результаты, которые показывают аналогичный рост клеток и стволовость, обнаруженные в культурах метамфетамина, путем иммуноокрашивания плюрипотентными маркерами. Привет, меня зовут Кейт Вагнер, я работаю на сайте GIB в компании Life Technologies.
Основное преимущество этой методики перед существующими заключается в том, что вы можете сэкономить время и повысить консистенцию клеточной культуры при использовании замены нокаутирующей сыворотки на протяжении всего рабочего процесса. На сегодняшний день семейство нокаутных продуктов включает в себя полный список сред и реагентов для фидерных, бесфидерных и бесксеноэкстраксионных условий для эмбриональных стволовых клеток человека, эмбриональных стволовых клеток мыши и индуцированных плюрипотентных стволовых клеток. KSR может быть использован для выращивания деривации, расширения, криоконсервации и начальных этапов дифференциации.
В этом видео вы узнаете, как адаптировать и упаковывать клетки с использованием KSR в условиях отсутствия кормушек. Посуды для культур, покрытых гелем TRX, необходимы для адаптации и упаковки индуцированных человеком плюрипотентных стволовых клеток в условиях отсутствия кормителей за день до приготовления этих покрытых покрытием блюд, медленно разморозьте одну тубу геля TRX, оставив ее в холодильнике на ночь, на следующий день разбавьте тубу размороженного геля TRX от одного до 100 в базальной среде, переложив один миллилитр геля Rex в бутылку, содержащую 99 миллилитров базального Терпимая. Аккуратно перемешайте раствор.
Мы рекомендуем использовать нокаут D-M-E-M-F 12 в качестве базальной среды, но для других вариантов см. Текст протокола. Покройте всю поверхность каждой чашки для культуры раствором геля Rex. На каждую 60-миллиметровую посуду добавьте по 1,5 миллилитров раствора гелевого трека.
Выдерживайте посуду в течение одного часа при температуре 37 градусов Цельсия. Дополнительные тарелки можно завернуть в парфюм и хранить в холодильнике до четырех недель. Дополнительно разбавленный гель TRX можно выделять и хранить при температуре от минус 20 до минус 80 градусов Цельсия, но перед использованием следует избегать многократных циклов замораживания и оттаивания.
Переложите посуду с покрытием из геля TRX в лимонную или проточную вытяжку и дайте ей сбалансироваться до комнатной температуры. Кроме того, подготовьте все остальные необходимые реагенты и убедитесь, что все среды сбалансированы до 37 градусов Цельсия и соответствующим образом газообразны. Адаптировать ПИПК человека к питательной среде без первой культуры.
IPSC находится на клетках, питающих метамфетамин до тех пор, пока они не станут слитыми на 70-80%. Отсасывайте среду из каждой 60-миллиметровой посуды для культуры и добавляйте соответствующее количество раствора диспа, которое составляет один миллилитр. В этом случае инкубируйте посуду при температуре 37 градусов Цельсия в течение трех-пяти минут.
Отсадите раствор диспа из каждой чашки для культивирования и осторожно промойте клетки, питающиеся метамфетамином, с помощью DPBS два-три раза. Затем добавьте соответствующее количество полной среды для замены сыворотки в каждую чашку для культур. С помощью скребка для ячеек аккуратно соскребите ячейки с поверхности посуды.
Соберите клеточную суспензию из каждой посуды в отдельные 15 миллилитровые конические трубки. Промойте каждую чашку для культивирования соответствующим количеством полной заменительной среды для сыворотки и добавьте промывочную среду в конические пробирки объемом 15 миллилитров, содержащие центрифугу для клеточной суспензии. 15 миллилитровые конические трубки при температуре 200 G в течение пяти минут при комнатной температуре для гранулирования клеток.
После центрифугирования тщательно отаскайте и выбросьте супернат, не нарушая клеточную гранулу. Осторожно переверните трубку, чтобы полностью выбить клеточную гранулу со дна пробирки. Добавьте соответствующее количество полной замены сыворотки, подайте питательную среду без питательной среды в соответствии с желаемым соотношением разделения.
И аккуратно суспензируйте гранулу. Не разбивайте комки клеток на меньший размер, потому что меньшие комки плохо прилипают к поверхности. Отсадите любой остаточный раствор геля TRE из ранее приготовленных культуральных чашек, покрытых гелем Rex, и медленно добавьте соответствующее количество клеточной суспензии в каждую чашку для культивирования.
Переместите чашку для культивирования вперед и назад и из стороны в сторону несколько раз, чтобы рассеять клетки по поверхности чашки. Аккуратно поместите чашки для культур в инкубатор с температурой 37 градусов Цельсия с увлажненной атмосферой от четырех до 6% CO2 в погрешности воздуха. После этого ежедневно заменяйте отработанную среду до тех пор, пока клетки не станут примерно на 70-80% сливающимися.
Когда индуцированные человеком плюрипотентные стволовые клетки выращивают полную замену сыворотке, свободная питательная среда на 70-80% сливаются, они готовы к субкультуре. Если есть какие-либо дифференцированные клетки, удалите их перед упаковкой. Отсадите отработанную среду из 60-миллиметровой чашки для культивирования с помощью пипетки и дважды промойте клетки.
С помощью DPBS аккуратно добавьте один миллилитр предварительно подогретого дискового раствора в чашку для культивирования. Поворачивайте чашку для культивирования, чтобы покрыть всю поверхность клетки. Инкубируйте культуру при температуре 37 градусов Цельсия в течение трех-пяти минут.
Затем аспирируйте раствор dis space и дважды аккуратно промойте клетки DPBS, добавьте полную замену сыворотки, питательную среду без питательной среды и аккуратно соскребите клетки с поверхности чашки для культивирования. С помощью скребка для клеток переложите клетки в стерильную центрифужную пробирку объемом 15 миллилитров. Промойте чашку для культуры дважды с полной заменой сыворотки.
Питатель не содержит среды, аккуратно распыляя все ячейки, которые не отделились. Вытяните среду из обоих полосканий с ячейками в 15 миллилитровую трубку. Центрифугируйте пробирку при 200 G в течение пяти минут при комнатной температуре, чтобы гранулировать клетки, не повреждая клеточную гранулу.
Осторожно аспирируйте и выбросьте надосадочную жидкость. Осторожно переверните трубку, чтобы полностью выбить клеточную гранулу со дна пробирки. Аккуратно ресуспендируйте клетки для полного замещения сыворотки.
Подавайте свободную среду с помощью пятимиллилитровой серологической пипетки. Не оценивайте трижды. Переложите ячейки в свежую 60-миллиметровую форму, покрытую гелем TRX в желаемом соотношении.
Переместите чашку для культуры вперед и назад и из стороны в сторону несколько раз, чтобы рассеять клетки по ее поверхности. Поместите чашку для культуры в инкубатор с температурой 37 градусов Цельсия с увлажненной атмосферой от четырех до 6% углекислого газа в воздухе на следующий день. Аккуратно замените отработанную среду с полной заменой сыворотки.
Подача свободной среды для удаления клеточного мусора. В дальнейшем заменяйте использованный носитель каждый день. На этом изображении фазового контраста показаны индуцированные плюрипотентные стволовые клетки человека, выращенные на чашках для культур, покрытых гелевым покрытием TRX, с использованием полной замены сыворотки, не содержащей питательной среды.
Морфология ПЛИК, аналогичная человеческим эмбриональным стволовым клеткам, характеризующаяся большими ядрами и скудным окрашиванием цитоплазменных иммунов, показывает, что культивируемая МПК с нокаутирующей заменительной средой сыворотки и коктейлем фактора роста экспрессировала плюрипотентные маркеры, OCT 4 и SSEA 4. После просмотра этого видео у вас должно быть хорошее понимание того, как адаптировать и поддерживать замену IPC и нокаут-сыворотки без питательных веществ. Вот и все.
Спасибо за просмотр и удачи в ваших экспериментах.
Related Videos
06:47
Related Videos
18.6K Views
09:38
Related Videos
92K Views
13:18
Related Videos
21.7K Views
10:33
Related Videos
14.5K Views
08:14
Related Videos
13.1K Views
09:56
Related Videos
7.3K Views
11:29
Related Videos
9.7K Views
07:21
Related Videos
900 Views
07:23
Related Videos
1.7K Views
11:08
Related Videos
1.5K Views