15 июля 2010 г.
Этот протокол описывает подробную процедуру cryopreserving плюрипотентных клеток человека в нокаут среду криоконсервации SR и восстановления этих клеток в полной KnockOut SR подачи Free (КСР-FF), средний или подачи основе KnockOut SR среды.
Общая цель этой процедуры заключается в криоконсервации и восстановлении клеток IPS в условиях культивирования на основе фидера или без него. Это достигается путем начала упаковки ПИПК в обычном режиме. Вторым этапом процедуры является перевод клеток в свободную от сыворотки замораживающую среду.
Третьим этапом процедуры является криоконсервация, как обычно. Заключительным этапом процедуры является размораживание клеток и начало технического обслуживания. В конечном счете, могут быть получены результаты, которые показывают успешное замораживание и размораживание IPS-клеток в свободно замораживающей среде сыворотки за счет здоровой морфологии и восстановления после оттаивания.
Привет, меня зовут Кейт Вагнер, я работаю на сайте GCO в Life Technologies. Визуальная демонстрация этого протокола имеет решающее значение, потому что ИПК могут быть очень чувствительны к замерзанию и тонкому T. Что делает этот протокол проще, так это то, что замену нокаутирующей сыворотки можно использовать на протяжении всего рабочего процесса.
На сегодняшний день семейство продуктов KSR включает в себя полный список сред и реагентов для кормовой и свободной от ксиноинобактерий культуры эмбриональных стволовых клеток и индуцированных плюрипотентных стволовых клеток. KSR может быть использован для выращивания деривации, криоконсервации, расширения и первых начальных этапов дифференцировки. В следующем видео вы покажете, как вы размораживаете и замораживаете себя с помощью KSR в автомате Peter free.
Для начала этой процедуры. Сначала прогрейте в соответствующем количестве полную кормушку свободной средой до 37 градусов Цельсия на водяной бане отсадите отработанную среду из питательного сосуда, который представляет собой 60-миллиметровую посуду. В этом случае индуцированные плюрипотентные стволовые клетки человека дважды промывают DPBS.
Затем добавьте в блюдо один миллилитр диспа. Выдерживайте блюдо при температуре 37 градусов Цельсия в течение трех минут. После этого аспирируйте раствор диспа и аккуратно промойте клетки с помощью DPBS.
Затем добавьте полную среду без кормушки, чтобы накрыть миску, и с помощью скребка для клеток аккуратно соскребите клетки, перенесите клетки в стерильную 15-миллилитровую центрифужную пробирку. Ополосните посуду с полноценным кормом свободной среды, аккуратно распыляя все ячейки, которые не отделились. Перелейте раствор для полоскания в ту же 15-миллилитровую пробирку, в которой находятся клетки.
Ополосните чашку второй раз средой и вытяните раствор для полоскания с ячейками гранул путем центрифугирования при 1000 об/мин в течение трех минут при комнатной температуре. После центрифугирования осторожно отсадите и выбросьте надосадочную жидкость, не нарушая клеточную гранулу. Осторожно переверните трубку, чтобы полностью выбить клеточную гранулу со дна пробирки.
Затем добавьте один миллилитр замораживающей среды А с помощью пятимиллилитровой серологической пипетки и ресуспендируйте клетки путем осторожного пипетирования вверх и вниз. После равномерной суспензии комков добавьте один миллилитр замораживающей среды B в пробирку по каплям, осторожно взбалтывая клеточную суспензию для перемешивания. Выделите по одному миллилитру клеточной суспензии в каждую криомерную морозильную камеру при температуре минус 80 градусов Цельсия на ночь в камере изопропанола.
На следующий день переложите флаконы с ячейками в емкость с жидким азотом для длительного хранения. Быстро разморозьте замороженный флакон клеток, поместив его на водяную баню при температуре 37 градусов Цельсия примерно на три-четыре минуты, пока во флаконе не не останется лишь небольшой замороженный кусочек. После извлечения флакона из водяной бани распылите пульверизатор с 70% изопропанолом для его обеззараживания, затем с помощью пятимиллилитровой пипетки асептически переложите все содержимое флакона в коническую пробирку объемом 15 миллилитров.
Следующий шаг может быть самым сложным аспектом процедуры. Питательную среду нужно медленно и осторожно добавлять в клетки. Для уменьшения осмотического шока Медленно добавьте четыре миллилитра полной свободной питательной среды по каплям в клетки в конической трубке объемом 15 миллилитров.
Во время добавления среды осторожно двигайте трубку вперед и назад, чтобы перемешать клетки. Это уменьшит осмотический шок для клеток. Полная среда без питательного устройства может быть заменена нокаутной заменой сыворотки, содержащей кондиционированную среду с метамфетамином, или нокаутной заменительной средой для использования с кормушками, инструкции по приготовлению среды см. в тексте протокола.
После того, как все четыре миллилитра среды были добавлены, центрифугируйте ячейки при 1000 об/мин в течение пяти минут при комнатной температуре. После центрифугирования тщательно аспирируйте и выбросьте вменяемое, не потревожив клеточную гранулу. Аккуратно суспендируйте клеточную гранулу в четырех миллилитрах полной питательной среды, не содержащей питательных веществ.
С помощью пятимиллилитровой пипетки аккуратно добавьте клеточную суспензию по каплям в покрытую гелем 60-миллиметровую чашку для культур. Поместите чашку для культивирования в инкубатор с температурой от 36 до 38 градусов Цельсия с увлажненной атмосферой от четырех до 6% углекислого газа в воздухе. Осторожно поворачивайте чашку с севера на юг, с востока на запад, чтобы равномерно распределить ячейки.
Через 24 часа после оттаивания. Замените среду в блюде на свежую среднюю. После этого ежедневно восполняйте отработанную среду до тех пор, пока клетки не станут примерно на 70-80% сливающимися.
На этом контрастном изображении показаны индуцированные плюрипотентные стволовые клетки человека, выращенные на чашках для культур, покрытых гелевым покрытием TRX, с использованием полной замены сыворотки, не содержащей питательной среды. МПК имеют морфологию, аналогичную человеческим эмбриональным стволовым клеткам, характеризующимся большими ядрами и скудной цитоплазмой. Пример замены сыворотки после размораживания и нокаута.
Здесь показана безпитательная среда на гелте TrackX. Следуя этой процедуре, важно помнить, что все клеточные колонии должны иметь одинаковый размер. При криоконсервации это улучшает восстановление клеток.
Вот и все. Спасибо за просмотр и удачи в ваших экспериментах.
Этот протокол описывает процедуру криоконсервирования человеческих индуктированных плюрипотентных стволовых (iPS) клеток с использованием среды для криоконсервирования KnockOut SR и их восстановления либо в полном среде KnockOut SR Feeder Free (KSR-FF), либо в среде KnockOut SR с питательным слоем. Метод подчеркивает важность визуальной демонстрации из-за чувствительности клеток iPS при замораживании и размораживании.
Reliable cryopreservation and recovery of human iPS cells using feeder-free, defined media directly addresses scalability and standardization challenges in early discovery and translational research. This protocol enables consistent pluripotent cell banking, supporting robust assay development and downstream applications in drug discovery portfolios. Feeder-free workflows reduce biological variability, enhancing predictive confidence and portfolio triage at key inflection points.
This cryopreservation and recovery protocol fits from early discovery through preclinical research, enabling seamless transitions between banking, expansion, and assay deployment stages.