-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Encyclopedia of Experiments
Neuroscience
Экспрессия генов с помощью электропорации одиночных клеток в культурах среза гиппокампа мышей
Экспрессия генов с помощью электропорации одиночных клеток в культурах среза гиппокампа мышей
Encyclopedia of Experiments
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
Encyclopedia of Experiments Neuroscience
Gene Expression via Single-Cell Electroporation in Mouse Hippocampal Slice Cultures

Экспрессия генов с помощью электропорации одиночных клеток в культурах среза гиппокампа мышей

Protocol
61 Views
05:33 min
August 19, 2025
AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Transcript

Начните со среза гиппокампа из мозга мыши, культивируемого на вставке культуры в чашке.

Разрежьте вкладыш, содержащий срез, и закрепите его в камере электропорации под микроскопом.

Перфузируйте камеру буфером, содержащим потенциал-зависимый блокатор натриевых каналов, чтобы подавить чрезмерное возбуждение и предотвратить клеточную токсичность.

Расположите пипетку, содержащую плазмиды с интересующим геном, рядом со срезом.

Поддерживайте положительное давление, чтобы предотвратить закупорку пипетки при приближении к целевому нейрону гиппокампа до тех пор, пока не образуется мембранная ямочка.

Переключитесь на отрицательное давление, чтобы создать уплотнение с мембраной.

Чередуйте положительное и отрицательное давление, чтобы свести к минимуму повреждение клеток.

Подайте импульс электропорации для временного проникновения в мембрану, облегчая проникновение плазмиды.

Извлеките пипетку, сохраняя положительное давление, и повторите электропорацию для соседних целевых нейронов.

Перенесите электропорированный срез в свежую вставку и инкубируйте его, чтобы обеспечить экспрессию интересующего гена.

Чтобы подготовить срезы культур для электропорации, перенесите интересующие вас вкладыши для культур в отдельные трехсантиметровые чашки Петри, загруженные 900 микролитрами питательной среды, и поместите культуры в настольный инкубатор с углекислым газом. Затем предварительно инкубируйте вкладыши свежих культур с одним миллилитром питательной среды для срезов на каждый вкладыш в чашке Петри диаметром 3,5 см в течение не менее 30 минут и стерилизуйте линии электропораторной установки 10% отбеливателем в течение пяти минут.

По окончании перфузии промойте линии ионизированной автоклавной водой в течение не менее 30 минут перед перфузией стерилизованным фильтром aCSF, содержащим 0,001 миллимолярного тетродотоксина. Установите импульс электропоратора на амплитуду минус пять вольт, квадратный импульс, последовательность 500 миллисекунд, частоту 50 герц и ширину импульса 500 микросекунд. Наполните стеклянную пипетку пятью микролитрами раствора, содержащего плазмиды, и осторожно похлопайте по наконечнику несколько раз, чтобы удалить все захваченные пузырьки.

С помощью диссекционного микроскопа убедитесь, что наконечник не поврежден, и надежно прикрепите наконечник пипетки к электроду. Когда наконечник соприкоснется с аCSF, запишите показания сопротивления пипетки электропоратора. Чтобы изолировать культуру среза, разрежьте мембрану вставки культуры острым лезвием и с помощью щипцов под острым углом осторожно перенесите культуру среза в камеру электропорации.

Затем зафиксируйте положение культуры с помощью якоря для срезов. Для электропорации интересующих клеток приложите положительное давление к пипетке ртом и с помощью трехмерных регуляторов переместите наконечник пипетки к поверхности культуры среза. Рассматривая культуру под микроскопом, приближайтесь к клетке-мишени с помощью наконечника, сохраняя приложенное положительное давление до тех пор, пока на поверхности клетки не образуется ямочка.

После визуализации ямочки быстро надавите ртом на умеренное отрицательное давление, чтобы между кончиком пипетки и плазматической мембраной образовалось рыхлое уплотнение. Мембрана будет немного входить в пипетку. Следует наблюдать примерно 2,5-кратное увеличение начального сопротивления пипетки, о чем свидетельствует увеличение тона из динамиков.

Быстро снова надавите на нее, чтобы ямочка восстановилась. Затем немедленно завершите еще как минимум два цикла давления, как только что было продемонстрировано, без паузы. После последнего импульса давления удерживайте отрицательное давление в течение одной секунды.

Когда тон динамиков достигнет стабильной вершины высоты, используйте ножную педаль для быстрого пульсации электропоратора. После электропорации осторожно втяните пипетку примерно на 100 микрон от ячейки, не прикладывая давления, и снова приложите положительное давление, убедившись, что сопротивление аналогично базовому показателю, прежде чем приближаться к следующей ячейке. Когда все интересующие клетки будут подвергнуты электропорации, перенесите культуру среза в одну из подготовленных вставок для свежих культур и поместите вкладыш при температуре 35 градусов Цельсия на срок до трех дней.

Related Videos

Экс Utero электропорации и Органотипической фрагмент Культура мыши ткани гиппокампа

09:17

Экс Utero электропорации и Органотипической фрагмент Культура мыши ткани гиппокампа

Related Videos

9.7K Views

Нейронной активности распространения в разложенном гиппокампа подготовки с проникающим Micro-электрода массив

09:48

Нейронной активности распространения в разложенном гиппокампа подготовки с проникающим Micro-электрода массив

Related Videos

8.6K Views

Подготовка острых человеческих гиппокампа для электрофизиологических записей

07:31

Подготовка острых человеческих гиппокампа для электрофизиологических записей

Related Videos

7.6K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code