Изучение сотовый Роллинг Траектории на ассиметричные паттерны рецепторов
13 февраля 2011 г.
Мы опишем протокол наблюдать и анализировать подвижного траекторий на асимметричные рецепторов узором субстратов. Полученные данные являются полезными для инженерно рецептора узором субстраты для этикетки без разделения клетки и анализа.
В данном протоколе рассматриваются и анализируются траектории перекатывания клеток на асимметричных паттернах рецепторов, что способствует разработке подложек с определенным распределением рецепторов для бесметочной сепарации и анализа клеток. Процедура начинается с микроконтактной печати молекул PEG на золотую подложку для создания чередующихся паттернов самоорганизующихся монослоев с последующим заполнением оставшихся участков подложки рецепторами P-селектина. Затем подложку помещают в проточную камеру. В камеру подают клетки HL 60.
Запишите последовательность изображений процесса роллинга клеток HL 60 на паттернах P-селектина и проанализируйте полученные из видео кадры. С помощью программы MATLAB можно определить траектории, длину отслеживания края роллирующих клеток, а также скорости роллинга на плоскости, в области и на краю. Данный метод позволяет изучить особенности перемещения клеток HL 60 по асимметричным паттернам рецепторов в условиях сдвигового потока.
Данный метод может быть применен для количественного анализа взаимодействий на поверхности других клеток, прямого анализа клеток путем наблюдения за их траекториями на паттернах рецепторов, а также для разработки микрофлюидных устройств для сепарации клеток. Метод микроконтактной печати используется для создания чередующихся паттернов самоорганизующихся монослоев молекул ПЭГ на золотой подложке.
Сначала нанесите на штамп из ПДМС раствор PEG в этаноле с концентрацией 5 мМ. Дайте поверхности высохнуть в течение 20 минут. Осторожно приложите штамп к золотой поверхности на 40 секунд, обеспечив плотный контакт между золотой поверхностью и штампом.
Избыточное давление не требуется. Промойте поверхность этанолом и высушите в потоке азота. Затем, используя перфузионную камеру, инкубируйте подложки с раствором P-селектина в концентрации 15 µg/mL в течение трех часов при комнатной температуре для создания паттерна из P-селектина на оставшихся участках; промойте камеру, после чего заполните свободные поверхности BSA в концентрации 1 mg/mL в течение одного часа для блокировки неспецифических взаимодействий.
Перед проведением эксперимента по роллингу клеток промойте поверхность буфером DPBS. Соберите проточную камеру, затем пропустите суспензию клеток HL 60 в концентрации 10⁵ клеток/мл через паттернированные поверхности в прямоугольной проточной камере с углом наклона рецепторного паттерна 10 градусов.
При комнатной температуре 24,5 °C. Настройте шприцевой насос для обеспечения скорости потока 75 µL/min, что соответствует ламинарному напряжению сдвига 0,5 дин/см². С помощью инвертированного микроскопа и установленной камеры запишите процесс роллинга клеток HL 60.
Взаимодействия с адгезивным P-селектином и субстратами. Съемка с использованием объектива 4x с частотой один кадр в секунду в течение 300 секунд. Проведите три независимых эксперимента.
Представьте данные в виде среднего значения и стандартного отклонения средних значений, полученных в каждом эксперименте. Микроскопические изображения, преобразованные из видеозаписи HL 60.Rolling. Взаимодействия с адгезивным P-селектином и субстратами демонстрируют светлые и темные области, соответствующие рецептору P-селектина и областям PEG соответственно.
В данном случае дорожки определяются с помощью специализированной программы MATLAB. Угол наклона края составлял 10 градусов, а напряжение сдвига — 0,5 дин на квадратный сантиметр. Далее проводится анализ распределения длины краевого трекинга, среднего значения длины краевого трекинга, а также VE и VP — скоростей вращения на краю и внутри полос.
После просмотра этого видео вы должны получить четкое представление о том, как анализировать траектории клеток при асимметричном распределении рецепторов.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
Обзор
В данном протоколе описываются наблюдение и анализ траекторий качения клеток на асимметричных паттернах рецепторов для облегчения разработки подложек с паттернами рецепторов, предназначенных для безмаркерного разделения и анализа клеток.
Основные компоненты исследования
Область науки
- Биология клетки
- Биоматериалы
- Микрофлюидика
Теоретические основы
- Перекатывание клеток является критически важным процессом в различных биологических взаимодействиях.
- Асимметричное распределение рецепторов может влиять на поведение клеток.
- Безметковые методы имеют важное значение для сепарации и анализа клеток.
- Микроконтактная печать представляет собой полезный метод создания структурированных подложек.
Цель исследования
- Разработать протокол наблюдения за перекатыванием клеток на подложках с паттернами рецепторов.
- Проанализировать траектории перекатывающихся клеток для оптимизации проектирования подложек.
- Изучить динамику движения клеток в условиях потока.
Используемые методы
- Микроконтактная печать молекул PEG на золотой подложке.
- Создание чередующихся паттернов самоорганизующихся монослоев.
- Заполнение оставшихся участков подложки P-селектином и рецепторами.
- Размещение в проточной камере и визуализация роллинга клеток HL-60 на паттернах.
Основные результаты
- Были записаны последовательности изображений взаимодействий клеток HL-60.
- Траектории катящихся клеток были проанализированы с помощью MATLAB.
- Были получены данные о длине отслеживания краев и скоростях качения.
- Были представлены сведения о движении клеток по асимметричным паттернам рецепторов.
Выводы
- Данный протокол позволяет провести детальный анализ динамики роллинга клеток.
- Для эффективного разделения клеток могут быть созданы асимметричные паттерны рецепторов.
- Этот метод способствует пониманию поведения клеток в сдвиговом потоке.
Часто задаваемые вопросы
Практическая значимость для отрасли
Понимание траекторий перекатывания клеток по асимметричным паттернам рецепторов позволяет осуществлять рациональное проектирование безмаркерных микрофлюидных устройств для разделения. Данный протокол предоставляет количественные данные о длине отслеживания края и скорости перекатывания при определенном напряжении сдвига, что поддерживает прогностическое моделирование поведения клеток в потоке. Такие данные позволяют сократить количество эмпирических итераций при разработке устройств для очистки клеток и рабочих процессов фенотипического анализа.
Стратегическое применение в биофармацевтических исследованиях и разработках
Первичный поиск и валидация мишени
- Научная ценность: позволяет исследовать кинетику связывания лиганда с рецептором в условиях физиологического сдвига, что дает данные для валидации мишеней в путях, опосредованных адгезией.
- Практическая ценность: предоставляет безметочный метод оценки функциональной активности рецептора без использования флуоресцентных меток или генетических репортеров.
Скрининг и разработка анализа
- Научная ценность: позволяет получать количественные показатели скорости перекатывания клеток и длины траектории движения вдоль края для сравнительного анализа при различных плотностях рецепторов или геометриях паттерна.
- Практическая ценность: стандартизирует подготовку подложки с помощью микроконтактной печати и интеграцию с потоковой камерой для обеспечения воспроизводимости анализов адгезии.
Трансляционные и доклинические исследования
- Научная ценность: способствует снижению технических рисков при разработке стратегий разделения на основе адгезии путем установления связи между дизайном паттерна рецепторов и наблюдаемыми траекториями движения клеток.
- Практическая ценность: позволяет проводить скрининг фенотипов клеток на основе их поведения при перекатывании, что полезно для обогащения субпопуляций в доклинических моделях.
Интеграция конвейеров и рабочих процессов
Данный метод применяется на ранних этапах поиска для оптимизации разработки анализа и создания доклинических инструментов, особенно для тех мишеней, где адгезия в условиях потока служит функциональным показателем.
- Фундаментальная биология: облегчает проверку гипотез о взаимодействиях рецептора и лиганда в условиях сдвигового потока, проясняя механизмы, способствующие качению клеток.
- Скрининг: обеспечивает стандартизированные количественные показатели адгезии, позволяющие сравнивать клеточные линии или модуляторы рецепторов.
- Аналитика: предоставляет данные о распределении длины трекинга края и скорости качения, создавая статистическую базу для сравнения условий.
- Трансляционные исследования: связывает динамику качения in vitro с потенциальным применением в устройствах для безмаркерного разделения клеток при доклинической обработке образцов.
- Корпоративное повторное использование: создает многократно используемую платформу для оценки поведения клеток, опосредованного адгезией, для различных мишеней и типов клеток.
Операционное и корпоративное воздействие
- Научная ценность: повышает точность прогнозирования механизмов разделения на основе адгезии путем количественного определения параметров траектории в условиях контролируемого сдвига.
- Практическая ценность: обеспечивает воспроизводимость за счет стандартизации микроконтактной печати, заполнения рецепторов и настройки проточной камеры.
- Стратегическая ценность: снижает биологические риски на поздних этапах разработки устройств, обеспечивая функциональную валидацию паттернов рецепторов на ранней стадии.
- Влияние на портфель разработок: способствует принятию решений о целесообразности дальнейшей разработки технологий микрофлюидного разделения, предоставляя эмпирические данные об эффективности паттернов.
Особенности реализации
- Требуется опыт работы в области микроконтактной печати, химии поверхности и контроля микрофлюидного потока.
- Необходим доступ к инвертированному микроскопу с проходящим светом, высокоскоростной камере и инструментам отслеживания частиц на базе MATLAB.
- Требуется межкомандная стандартизация изготовления подложек и отчетности об условиях потока для обеспечения воспроизводимости результатов в разных центрах.
- Адаптация для альтернативных типов клеток требует валидации пар лиганд-рецептор и оптимизации параметров напряжения сдвига.
- Метод ограничен транзиторным характером взаимодействий клеток с краем, что затрудняет полную реконструкцию траектории и требует сегментированного анализа.
