1 марта 2011 г.
Мы опишем простой иммуноанализа для измерения производство провоспалительных цитокинов, таких как IL-1 бета производства, у пациентов с autoinflammatory фенотипы. При активации клеток в целом посевы крови с возбудителем связанные молекулярные модели, в частности, с липополисахарид, секрецию цитокинов может быть удобно оценивать в целом супернатанты крови.
Общая цель данной процедуры заключается в измерении уровня провоспалительных цитокинов, вырабатываемых в ходе анализа стимуляции цельной крови. Сначала клеточные компоненты цельной крови отделяют от плазмы путем центрифугирования, после чего проводят подсчет лейкоцитов с использованием окрашивания аниловым оранжевым. Затем клетки высевают и стимулируют LPS с последующим добавлением TP для индукции продукции цитокинов клетками, имеющими рецепторы распознавания патогенов; после начала стимуляции супернатанты культур собирают в определенные временные точки.
Наконец, концентрации цитокинов в супернатантах измеряют с помощью мультиплексного анализа в 96-луночном планшете. Используя этот простой метод, можно быстро оценить различия в концентрациях провоспалительных цитокинов, вырабатываемых стимулированными клетками от разных доноров. Данный метод особенно полезен для выявления воспалительных заболеваний, опосредованных IL-1, у пациентов с патологическими проявлениями воспаления, особенно в условиях ограниченного объема доступной крови.
Основным преимуществом данного метода по сравнению с существующими способами измерения концентрации цитокинов является то, что технология на базе Luminex позволяет одновременно измерять уровни нескольких цитокинов, используя при этом небольшой объем образца. Получите образцы венозной крови объемом 10 миллилитров или более от обследуемых лиц, а также от здоровых лиц контрольной группы, подходящих по возрасту и полу; убедитесь, что образцы собраны в вакутайнеры с натрий-гепарином, и что ЭДТА или другие антикоагулянты не добавлялись, так как они будут мешать проведению анализа; обработайте образцы как можно скорее после сбора. При необходимости образцы можно хранить до 24 часов при комнатной температуре в условиях приглушенного освещения.
Центрифугируйте образцы крови при 3000 RPM в течение 10 минут при комнатной температуре с отключенным торможением. После центрифугирования аккуратно снимите плазму с поверхности пробирок, стараясь не задеть слой лейкоцитов (buffy coat), содержащий мононуклеарные клетки. Ресуспендируйте слой лейкоцитов и лежащий под ним осадок эритроцитов в безсывороточной среде RPMI при комнатной температуре, осторожно перемешивая смесь пипетированием для промывки клеток.
Затем перенесите клетки из пробирки для сбора в коническую пробирку объемом 50 мл. Доведите объем до 50 мл с помощью среды RPMI и осторожно переверните каждую пробирку для перемешивания. Центрифугируйте клетки еще раз при 3000 RPM в течение 10 минут.
Затем аспирируйте супернатант, стараясь не задеть осадок клеток. Повторите этот этап промывки от двух до четырех раз, чтобы удалить загрязнения и связанные с клетками цитокины. После промывки клеток ресуспендируйте их в безсывороточной среде RPMI до общего объема 20 мл. Для подсчета клеток нанесите 20 мкл смеси образца и акридина оранжевого в соотношении 1:1 в одноразовую камеру Собера. Акридин оранжевый при конечной концентрации 1 мкг/мл окрашивает только имеющие ядро лейкоциты, что позволяет дифференцировать их от эритроцитов.
После получения общего количества клеток подсчитайте только D-положительные клетки. Ресуспендируйте образцы в среде RPMI без сыворотки, чтобы достичь конечной концентрации 2 миллионов клеток на мл. Для каждого образца маркируйте дублирующие лунки 24-луночного планшета в соответствии с тестируемыми экспериментальными условиями.
В данном случае предусмотрены следующие условия: без стимуляции, только LPS, только a TP и LPS совместно с a TP. Добавьте по одному миллилитру разведенных клеток в каждую лунку и добавьте LPS в соответствующие лунки до конечной концентрации 1 µg/mL. Инкубируйте образцы при 37 °C в инкубаторе с 5% CO2 в течение двух часов 40 минут. После этого начального периода инкубации добавьте a TP до конечной концентрации 2 mM в лунки с только a TP и LPS совместно с a TP. Затем инкубируйте планшеты еще в течение 20 минут при 37 °C.
По завершении второй инкубации перенесите клетки из каждой лунки в отдельные предварительно промаркированные микроцентрифужные пробирки объемом 1,5 миллилитра, центрифугируйте образцы при 10,000 RRP M в течение двух минут при комнатной температуре, затем перенесите супернатант из каждой пробирки в новую предварительно промаркированную пробирку для EOR. Супернатант можно подвергнуть анализу на содержание цитокинов сразу или хранить в замороженном виде для последующего определения концентраций IL one beta или других цитокинов. Для анализа образцов мы используем набор Bio Plex Pro, Human Cytokine X Plex с системой Bio Plex 200.
Согласно инструкциям производителя. На данном рисунке анализ продукции IL-1β при стимуляции нормальных клеток цельной крови LPS, ATP или обоими стимулами вместе демонстрирует ответ на LPS плюс ATP, величина которого зависит от количества стимулируемых клеток. В отличие от здорового контроля, анализы цельной крови пациентов с аутовоспалительными патологиями выявляют повышенную продукцию IL-1β после стимуляции LPS в отсутствие экзогенно добавленного ATP. Не забывайте, что работа с биологическими жидкостями человека, такими как кровь, может быть чрезвычайно опасной, поэтому при выполнении данной процедуры следует всегда соблюдать универсальные меры предосторожности.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
В данной статье описывается простой метод иммуноанализа для измерения уровней провоспалительных цитокинов, в частности IL-1 бета, у пациентов с аутовоспалительными фенотипами. Метод заключается в стимуляции культур цельной крови липополисахаридом для оценки секреции цитокинов в супернатантах.
Данный анализ стимуляции цельной крови позволяет быстро измерять низкие объемы провоспалительных цитокинов, таких как IL-1β, что способствует ранней валидации мишеней при исследовании аутовоспалительных заболеваний. Путем количественного определения секреции цитокинов стимулированными клетками врожденного иммунитета данный метод дает понимание механизмов, которое помогает снизить риски терапевтических гипотез и приоритизировать доклинических кандидатов. Совместимость с мультиплексным детектированием и минимальные требования к объему образцов повышают доступность скрининга биомаркеров и стратификации пациентов в программах поиска новых лекарств в области иммунологии.
Данный анализ вписывается в процесс разработки препаратов, обеспечивая функциональные иммунологические показатели после взаимодействия с мишенью, но до этапа оптимизации ведущих соединений, что помогает связать фенотипический скрининг с механистическим снижением рисков.