RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
ru_RU
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/2792-v
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
В этой статье описывается
В этом видео демонстрируется метод мониторинга инвазии монослоя эндотелиальных клеток раковыми клетками с использованием метода, основанного на электрическом импедансе в реальном времени. Во-первых, эндотелиальные клетки пупочной вены человека, называемые ЖЭ, располагаются в 16 луночных ЭПЛ, покрытых золотыми электродами на дне лунки. Для создания конфлюентного монослоя добавляются раковые клетки, которые прикрепляются к ЖЭ и проникают в монослой ОВКВ, нарушая соединения эндотелиальных клеток.
Степень инвазии может быть определена на основе изменений электрического сопротивления. Основное преимущество этой техники или существующих методов, таких как анализ пустой камеры и анализ METROGEL, заключается в том, что взаимодействия эндотелиальных клеток с опухолевыми клетками более точно имитируют метастатический процесс in vivo, а данные получают в режиме реального времени и легче поддаются количественной оценке в отличие от анализа конечных точек для других методов. Хотя этот метод может дать представление о вторжении раковых клеток.
Он также может быть применен к другим системам, таким как исследование клеточных взаимодействий в иммунной системе. Кроме того, начальная фаза эксперимента, на которой мы наблюдаем рост UX-клеток, может быть использована для оценки клеточной пролиферации любой клеточной линии без дальнейших этапов инвазии, демонстрируя процедуру, будет проведен аспирантом Рахима из моей лаборатории. Все этапы этого протокола должны выполняться в стерильных условиях в вытяжке для культуры тканей.
Система Xcel, используемая для этого эксперимента, постоянно хранится в инкубаторе с 5% углекислым газом при температуре 37 градусов Цельсия, предназначенном исключительно для этого прибора при его первом использовании. Инструмент следует оставить в инкубаторе не менее чем на 16 часов, чтобы он выровнялся в соответствии с новой температурой и влажностью окружающей среды. Затем приготовьте Thout EPL 16, покрыв его 0,1% желатином в течение часа при температуре 37 градусов Цельсия.
После того, как тарелка будет покрыта, промойте ее один раз PBS. Затем добавьте 100 микролитров восстановленной э г две среды, чтобы выполнить пустое считывание. Для измерения фонового импеданса при отсутствии ячеек.
Поместите EPL в систему агентов Excel на компьютере. Откройте программу агента Excel, щелкнув значок программы RTCA на рабочем столе в окне программы. Перейдите на вкладку «Макет» и выберите скважины, содержащие образцы.
Для программирования частоты сбора данных в режиме реального времени. Нажмите на вкладку расписания, затем нажмите на значок добавления шага с указанием количества показаний, а интервалы с указанием временного интервала между показаниями. Они автоматически устанавливаются на одну и 1.00 минуты соответственно.
Это программирует систему на выполнение фонового чтения. Нажмите на кнопку «Добавить шаг» и введите 300 в поле развертки и 10 минут в поле интервалов. Это запрограммирует прибор на выполнение измерений импеданса в течение 50 часов.
Чтобы начать эксперимент, нажмите на значок «Начать шаг». Фоновое сопротивление каждой скважины будет измеряться после проведения фонового измерения. В окне отобразится сообщение.
Готовы к следующему шагу, пожалуйста, нажмите. Следующий шаг для начала. В это время можно добавлять ячейки и контролировать образование монослоя, как описано.
В следующем разделе используемая здесь пупочная вена человека, эндотелиальные клетки или ЖЭ культивируются в двух средах EGM, восстановленных с помощью набора EGM из двух пуль, содержащих добавки факторов роста, и 5% FBS клеток следует поддерживать в инкубаторе при температуре 37 градусов Цельсия в присутствии 5% углекислого газа. В день эксперимента проверьте беглость HUB E Под микроскопом клетки должны иметь низкое число пассажей, желательно не более шести и менее 75% Con Fluent для генерации оттенка, монослойного сбора клеток с помощью трипсина. После того, как клетки отделились от колбы, все следы трипсина должны быть удалены центрифугированием при 200 G. После отжима промойте клетки одним раз PBS.
Затем повторно суспендировали клетки и восстановили e GM в двух средах до концентрации 2,5 умх на 10 до пятой клетки на миллилитр. Как только элементы будут ресуспендированы, удалите фоновую калибровку EPL из системы EXOGEN и добавьте 100 микролитров суспензии HX к 100 микролитрам E GM двух уже имеющихся в пластине средах. Немедленно поместите ЭПЛ в анализатор клеток системы Excel.
Начните сбор данных об импедансе, нажав кнопку «Начать шаг» в окне программного обеспечения. Дайте эндотелиальным клеткам расти. Система будет продолжать снимать показания импеданса каждые 10 минут.
У них наблюдается характерное переходное уплощение клеточного индекса через четыре-шесть часов после посева, за которым следует еще одна стабилизация через 16-18 часов. Следовательно, важно дать клеткам образовать сливающийся монослой в течение как минимум 18 часов. После того, как монослой сформировался, пришло время добавить вторгшиеся клетки для подготовки к анализу на инвазию.
Подготовьте вторгшиеся опухолевые клетки. Здесь используются клетки остеосаркомы. Начните с забора клеток трипсином.
Удалите все следы трипсина, открутив клетки при 200 G и промыв один раз PPS. После промывки реуса суспензируйте клетки до тех пор, пока конечная плотность не составит от 10 до 10 до пятой части на миллилитр в среде, используемой для выращивания опухолевых клеток, такой как RPMI или среда DMEA, содержащая 10% FBS. Приостановите эксперимент, щелкнув значок шага паузы в окне программного обеспечения.
Снимите EPL и аспирируйте EGM в двух средах из вакуумного монослоя. Добавьте 100 микролитров суспензии опухолевых клеток, содержащей один умно-10 на четвертую клетку. Как правило, соотношение 1 к 2,5 опухолевым клеткам к эндотелиальным клеткам является наиболее подходящим для анализа.
Тем не менее, соотношение может быть оптимизировано для отдельных клеточных линий. Поместите ЭПЛ обратно в агентурную систему Excel в инкубаторе. Нажмите на шаг «Продолжить», чтобы продолжить снятие показаний импеданса с интервалом в 10 минут.
Отслеживайте вторжение в режиме реального времени в течение следующих 6–12 часов. Падение клеточного индекса происходит в результате ретракции эндотелиальных соединений и проникновения вторгшихся опухолевых клеток. Когда эксперимент будет завершен, используйте программное обеспечение для экзергена, чтобы нормализовать результаты до момента добавления вторгшихся опухолевых клеток.
Программное обеспечение для эксергена позволяет нормализовать с любой временной точки времени VEX культивировались в системе эксергена, как показано в этом видео, и после формирования монослоя добавлялись либо K 7 M two, либо K 12 клеток. Как показано на рисунке, резкое снижение клеточного индекса происходит в течение нескольких часов после введения К семь М двух клеток. K seven M two — это клеточная линия остеосаркомы с высоким уровнем метастатического развития.
Эти клетки экспрессируют высокий уровень белка цитоскелетного линкера ene, что объясняет инвазивные свойства клеточной линии. Клетки К-12, с другой стороны, менее метастатически и не способны проникать через эндотелиальный монослой так же эффективно, как клетки К-7-М-2. Это представлено менее глубоким снижением клеточного индекса, как показано здесь.
Показанный здесь элемент управления представляет собой импеданс монослоя uve. При отсутствии раковых клеток эксперименты проводились в трех экземплярах. После просмотра этого видео у вас должно быть хорошее понимание того, как измерить инвазию в режиме реального времени, создавая монослой эндотелиальных клеток и воздействуя на монослой раковыми клетками.
Начальные этапы эксперимента по формированию монослоя HU XL могут быть использованы для оценки пролиферации клеток по импедансу. Два.
Related Videos
05:04
Related Videos
460 Views
05:15
Related Videos
317 Views
12:30
Related Videos
60.2K Views
10:51
Related Videos
16.8K Views
07:43
Related Videos
23K Views
09:23
Related Videos
6.8K Views
08:00
Related Videos
2.7K Views
11:00
Related Videos
2K Views
09:38
Related Videos
869 Views
08:04
Related Videos
18.7K Views