-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Bioengineering
Инкапсуляция кардиомиоцитов в Фибрин Гидрогель для сердечной тканевой инженерии
Инкапсуляция кардиомиоцитов в Фибрин Гидрогель для сердечной тканевой инженерии
JoVE Journal
Bioengineering
This content is Free Access.
JoVE Journal Bioengineering
Encapsulation of Cardiomyocytes in a Fibrin Hydrogel for Cardiac Tissue Engineering

Инкапсуляция кардиомиоцитов в Фибрин Гидрогель для сердечной тканевой инженерии

Full Text
25,908 Views
10:18 min
September 19, 2011

DOI: 10.3791/3251-v

Kathy Yuan Ye1, Kelly Elizabeth Sullivan1, Lauren Deems Black1

1Department of Biomedical Engineering,Tufts University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Мы описываем изоляции новорожденных кардиомиоцитов и подготовки клеток для инкапсуляции в фибрин гидрогеля конструкции для тканевой инженерии. Мы опишем методы анализа тканей инженерии миокарда после периода культивирования, включая активные силы, возникающей при электрической стимуляции и жизнеспособность клеток и immunohistological окрашивания.

Общая цель этой процедуры заключается в инкапсуляции кардиомиоцитов новорожденных крыс в гидрогель FI для инженерии сердечной ткани. Это достигается путем выделения сердец двух-трехдневных новорожденных крыс в возрасте от двух до трех дней. Далее сердца перевариваются в коллагеназе.

Чтобы отделить сердечные клетки от внеклеточного матрикса, сердечные клетки затем инкапсулируются в фибриновый гидрогель. Наконец, конструкции культивируют в течение двух недель. В конечном счете, результаты показывают, что конструкции обладают способностью генерировать силу подергивания примерно в 1,3 миллиньютона в ответ на электрическую стимуляцию.

Кроме того, выровненную структуру конструкции можно наблюдать с помощью гистологического окрашивания из белков миоцитов. Инженерные конструкции миокарда могут служить потенциальной терапией при инфаркте миокарда, позволяя восстанавливать или заменять рубцовую ткань инженерной тканью, тем самым улучшая сердечную функцию после травмы или заболевания. Эти конструкции могут служить ценной моделью in vitro для изучения влияния различных стимулов на сократительные силы и нормальное и патофизиологическое развитие сердца.

После подготовки среды и стерилизации хирургических инструментов для каждого человека, поместите впитывающую подкладку для скамьи на капюшон, рабочую поверхность и накройте ее стерильной простыней. Поместите стерильные хирургические инструменты и марлевую салфетку четыре на четыре на стерильную простыню. Не прикасаясь к инструментам, откройте стерильное лезвие скальпеля No 20 и положите его на драпировку.

Обезглавив щенка, промокните грудь марлей, смоченной Бетадином. Закрепите щенка, сжав лопатки вместе. Выполните частичную торакотомию, чтобы обнажить сердце, увеличить давление, оказываемое на лопатки, что заставит сердце пройти мимо ребер.

Для рассечения лопатки проведите лезвием скальпеля за сердцем, чтобы перерезать магистральные сосуды и удалить орган. Поместите сердце на лед в чашку Петри, содержащую глюкозу PBS. После того, как сердца будут изолированы, удалите остатки крови и соединительной ткани, промыв их ледяной глюкозой PBS.

Удалите верхнюю треть каждого сердца, чтобы остались нижние две трети. Изолировать только большую часть ткани желудочка и поместить ткань в свежую чашку Петри с ледяной глюкозой PBS. Используя стерильные микроножницы и щипцы, осторожно измельчите сердечки примерно на один кубический миллиметр.

Перенесите ткань в коническую трубку объемом 50 миллилитров и удалите все буферы, кроме 10 миллилитров. Добавьте семь миллилитров раствора коллагеназы. Встряхните тканевую смесь коллагеназы при температуре 37 градусов Цельсия в течение семи минут.

Аккуратно пипеткой 10 раз, чтобы разбить кусочки ткани. Дайте кусочкам осесть, а затем втяните жидкость и выбросьте ее. Добавьте семь миллилитров коллагеназы к кусочкам ткани и снова переваривайте в течение семи минут.

Для каждого оставшегося шага аккуратно пипетируйте 10 раз, чтобы разбить кусочки ткани. После того, как они осядут, оттяните надосадочную жидкость и соберите ее в отдельную коническую пробирку объемом 50 миллилитров, добавьте к кусочкам ткани семь миллилитров коллагеназы и снова переварите в течение семи минут. В каждую надосадочную жидкость добавляйте по 10 миллилитров стоп-раствора с помощью разной серологической пипетки после каждого добавления надосадочной жидкости из процесса разложения.

Для подготовки к литью фибриновых гелевых конструкций обратитесь к письменной части протокола. Поместите ранее изготовленные оправки в корпуса шприцев объемом шесть куб. см Используя шприц объемом три куб. см в качестве поршня, чтобы обеспечить плотное уплотнение между уплотнительными кольцами и тефлоновыми шайбами. Чтобы приготовить один миллилитр фибринового геля, создайте раствор F в конической пробирке, добавив 112 микролитров запаса фибриногена к 558 микролитрам 20 миллимолярных куч.

Буферизуйте в 0,9%-ном солевом растворе в отдельной конической пробирке. Создайте Т-раствор, добавив 17 микролитров тромбинового запаса и 1,3 микролитра двух обычных растворов кальция к 135 микролитрам DMEM. В третьей конической трубке сверните клетки вниз и ресуспендируйте их до концентрации 29,4 миллиона клеток на миллилитр, что в шесть раз превышает концентрацию желаемой конечной концентрации клеток в конструкции.

Как правило, люди, плохо знакомые с этим методом, будут испытывать трудности на этапе изготовления конструкта. После смешивания растворов фибриногена и тромбина полимеризация фибрина происходит быстро. Таким образом, люди должны работать быстро, чтобы обеспечить однородное решение, предотвращая при этом попадание пузырьков воздуха в гидрогель при впрыске в литье формы.

Когда все будет готово к отливке фибринового геля, подготовьте одномиллилитровый шприц с помощью полуторадюймовой иглы 18-го калибра. Также подготовьте иглу 21 калибра в один дюйм. Чтобы приготовить один миллилитр раствора фибринового геля, добавьте 667 микролитров раствора F в 50-миллилитровую центрифужную пробирку, а затем 167 микролитров клеточного раствора.

И, наконец, 167 микролитров раствора Т. Тщательно пипеткой переливайте смесь, чтобы не ввести пузырьки воздуха. На этом этапе реакция началась, и внедрение конструкции должно быть выполнено немедленно.

С помощью шприца и иглы 18 калибра наберите раствор фибрина. Следите за тем, чтобы шприц не переворачивался, чтобы предотвратить попадание пузырьков в иглу. Замените стрелку 18 калибра на стрелку 21 калибра.

Осторожно постучите по шприцу, чтобы вытеснить пузырьки воздуха. Затем вставьте шприц в форму между пробкой, оболочкой которой следует за пазом в тефлоновом уплотнительном кольце, и введите раствор в форму. Наклоните форму, чтобы обеспечить полное заполнение.

Затем заполните оставшиеся формочки. Заверните формочки в парапленку группами по три штуки и поместите их в инкубатор или духовку при температуре 37 градусов Цельсия. Инкубируйте гели в течение 20 минут, чтобы дать фибрину достаточно времени для полной полимеризации.

Наполните каждую баночку с культурой 21 миллилитром конструктивной среды миокарда на конструкт. Используйте стерильный трехкубовый корпус шприца в качестве поршня, чтобы втиснуть оправку с конструкцией в большую чашку Петри с DMEM. Затем поместите конструкцию в банку с образцом.

Инкубируйте банки при температуре 37 градусов Цельсия в течение двух недель. Чтобы начать разбор фибриновой конструкции зажима, аллигатор зажимает провод, идущий от стимулятора, к проводам на электродах в ванне. Включите плату сбора данных, генератор импульсов и преобразователь силы.

Установите преобразователь силы в положение 5G и обнулите его. Откройте пользовательскую программу лабораторного просмотра, которая отображает и сохраняет данные от преобразователя силы. Создайте новый пустой текстовый файл в папке данных для каждого образца с помощью пинцета, снимите конструкцию с опоры оправки, аккуратно сдвинув кольцо конструкции с тефлоновой опоры и поместив его на неподвижную металлическую стойку в системе измерения силы.

Средняя ванна. С помощью пинцета толкайте и поднимайте конструкцию вокруг стойки датчика силы. Поместите другой конец конструкции на кронштейн датчика и затягивайте до тех пор, пока датчик не начнет считывать показания.

Усилие 1,0 G на кардиостимулятор. Установите импульсное напряжение на 20 вольт, продолжительность на шесть миллисекунд и частоту на один герц. Запустите электрический темп, нажав кнопку выключения выхода.

Начинайте запись до тех пор, пока форма волны не станет обычной. Проанализируйте форму волны в MATLAB, чтобы определить силу скорости сокращения и скорость расслабления. Фибриновая конструкция кардиомиоцитов изначально покрывает всю ширину формы.

После двух недель культивирования он сжимается примерно до одной пятой от первоначальной ширины. Электрический темп конструкции генерирует данные о силе дергания, как показано здесь. Ожидается сила подергивания примерно в 1,3 миллиньютона.

Жизнеспособность клетки конструкта зависит от того, насколько далеко клетки находятся от поверхности конструкции, которая находится в контакте с питательной средой из-за ограничений диффузии кислорода в конструкцию. На поверхности конструкта с помощью конфокальной микроскопии наблюдается высокая жизнеспособность клеток. Выровненная структура конструкции наблюдается путем окрашивания на миозиновую тяжелую цепь в красный цвет Connexion 43, которая необходима для клеточного соединения между миоцитами, в зеленый цвет.

После освоения весь протокол должен занять около пяти часов. Часть изоляции I займет около трех часов. В то время как изготовление конструкта займет около двух часов, при попытке выполнить эту процедуру важно всегда держать иглу направленной вниз, чтобы предотвратить попадание пузырьков воздуха в фибриновую сеть.

Кроме того, наклон формы всегда будет удерживать отверстие иглы в самой высокой точке во время впрыска, что гарантирует, что отливка формы будет полностью заполнена раствором фибрина. После просмотра этого видео у вас должно сложиться хорошее представление о том, как инкапсулировать кардиомиоциты в фибриновые гидрогели в форме кольца, сначала изолировав кардиомиоциты от новорожденных крыс, а затем методом литья раствора фибрина под давлением в легко собираемые цилиндрические формы.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Биоинженерия выпуск 55 фибрин строительные леса гидрогель сердечных тканевой инженерии сокращение силы неонатальные кардиомиоциты

Related Videos

Производство биологически Производные инъекций Материалы для тканевой инженерии миокарда

11:32

Производство биологически Производные инъекций Материалы для тканевой инженерии миокарда

Related Videos

15.5K Views

Инжиниринг двухслойных гидрогель для управления ASC дифференциации

07:48

Инжиниринг двухслойных гидрогель для управления ASC дифференциации

Related Videos

14.4K Views

Капиллярная сила Литография для сердечной тканевой инженерии

10:09

Капиллярная сила Литография для сердечной тканевой инженерии

Related Videos

12.8K Views

Инженерные основе фибрина тканей Конструкции из Миофибробласты и применение ограничений и напрягаться, чтобы индуцировать клеточную и коллагена (Re) организации

12:13

Инженерные основе фибрина тканей Конструкции из Миофибробласты и применение ограничений и напрягаться, чтобы индуцировать клеточную и коллагена (Re) организации

Related Videos

11.3K Views

Клеточная терапия для сердечной недостаточности у крыс: Двухместный Торакотомия для инфаркта миокарда и эпикарда Имплантация клеток и Biomatrix

09:11

Клеточная терапия для сердечной недостаточности у крыс: Двухместный Торакотомия для инфаркта миокарда и эпикарда Имплантация клеток и Biomatrix

Related Videos

12.4K Views

Гидрогель Построить и фибрина-клей на основе подхода, чтобы доставить Therapeutics в мышиной модели инфаркта миокарда.

06:15

Гидрогель Построить и фибрина-клей на основе подхода, чтобы доставить Therapeutics в мышиной модели инфаркта миокарда.

Related Videos

9.2K Views

Обработка тканей человека сердца к внеклеточного матрикса самостоятельной сборки Гидрогель для In Vitro и In Vivo приложений

08:41

Обработка тканей человека сердца к внеклеточного матрикса самостоятельной сборки Гидрогель для In Vitro и In Vivo приложений

Related Videos

9.5K Views

Пользовательские инженерных форм культуры ткани от мастеров лазером

08:56

Пользовательские инженерных форм культуры ткани от мастеров лазером

Related Videos

6.8K Views

Трансплантация внутримякардных инъекций MSC-Loading инъекционных гидрогелей после инфаркта миокарда в модели Murine

09:19

Трансплантация внутримякардных инъекций MSC-Loading инъекционных гидрогелей после инфаркта миокарда в модели Murine

Related Videos

4.8K Views

Разработка 3D-организованной сердечной ткани человека в рамках микрофлюидной платформы

10:42

Разработка 3D-организованной сердечной ткани человека в рамках микрофлюидной платформы

Related Videos

5.5K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code