-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
Электропорации черепно-лицевых Мезенхима
Электропорации черепно-лицевых Мезенхима
JoVE Journal
Biology
This content is Free Access.
JoVE Journal Biology
Electroporation of Craniofacial Mesenchyme

Электропорации черепно-лицевых Мезенхима

Full Text
12,511 Views
07:23 min
November 28, 2011

DOI: 10.3791/3381-v

Jacqueline M. Tabler1, Karen J. Liu1

1Department of Craniofacial Development,King's College London

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Черепно-лицевые хрящи развиваться в тесном контакте с другими тканями, и их трудно манипулировать живыми животными. Мы используем электропорации доставить молекулярных инструментов в процессе роста черепно-лицевой скелет в обход раннего эмбрионального эффектов. Такой подход позволит нам эффективно теста кандидат молекул

Общая цель этой процедуры заключается в электроуправлении заряженными макромолекулами в черепную лицевую мезенхиму. Это достигается путем предварительного помещения обезболенного эмбриона стадии 28 в камеру электропорации. Следующим шагом является микроинъекция раствора, содержащего заряженные макромолекулы, в черепно-лицевую мезенхиму C.

За этим быстро следует подача электрического тока, тем самым вводя заряд нуклеотидов в клетки других клеток. Заключительным этапом процедуры является визуализация электропорированной ткани с помощью флуоресцентной микроскопии. В конечном итоге можно получить результаты, показывающие изменения в черепных тканях лица.

Эти результаты могут быть проанализированы in vivo или в неподвижных тканях с помощью флуоресценции, микроскопии или иммуногистохимии. Основным преимуществом электропорации перед существующими методами, такими как микроинъекция и мутация, является тканевый и временной контроль над нашими молекулярными инструментами, и сегодня нашу процедуру продемонстрирует Джеки Таблер, постдок в моей лаборатории. Пара L-образных электродов, необходимых для этой процедуры, изготавливается из вольфрана высокой чистоты, 0,4 миллиметра вольфрана, для каждого электрода сначала срезается восемь сантиметров проволоки.

Затем с помощью замазки, такой как синяя замазка, воздействуют на одномиллилитровый шприц в средней точке вольфрамовой проволоки, оставляя четыре сантиметра проволоки обнаженными от кончика шприца. Согните кончик в форме буквы L в одном сантиметре от конца. Обрежьте кончик так, чтобы конец был 0,5 сантиметра в длину.

Этот наконечник является концом электрода, по которому проходит лишняя вольфрамовая проволока параллельно шприцу. Он будет использоваться для подключения электродного генератора импульсов после того, как будет изготовлен второй электрод. Крепим пару электродов друг к другу с помощью скотча так, чтобы электродную клемму я проводил параллельно, на расстоянии одного сантиметра друг от друга.

Наконец, подключите электроды к генератору прямоугольных импульсов с помощью кабелей постоянного тока. Чтобы подготовить изготовленную на заказ камеру для электропорации, выстелите дно 90-миллиметровой посуды примерно пятью миллиметрами нетоксичной гипсовой глины для лепки сцены. Наполните чашку электропорационным материалом, погружая гипсовую сцену.

Затем с помощью пинцеров часовщика номер пять вырезать Т-образный колодец в гипсовой сцене, чтобы сформировать электропорацию. Длинная сторона колодца должна иметь размеры примерно два миллиметра на два миллиметра на 10 миллиметров, а короткая сторона должна быть два миллиметра на два миллиметра на пять миллиметров. Микропипетки для этой процедуры изготавливаются из капилляров из силикатного стекла.

Используйте игольчатый съемник для подготовки микропипеток с конусом длиной от восьми до 12 миллиметров и тонким кончиком, сожмите кончик примерно в двух миллиметрах от кончика с помощью щипцов, создавая зубчатый разрыв для установки микропипетки. Во-первых, заполните его примерно одним микролитром раствора для инъекций, который в этой демонстрации содержит флуоресцентно меченные олигонуклеотиды. Далее закрепите микропипетку в микроманипуляторе под углом 50 градусов от столешницы.

Установите давление впрыска на уровне 20 фунтов на квадратный дюйм и откалибруйте микропипетку для подачи 30 литров на импульс. При подготовке к электропорации обезболите личинок ксеновируса 28 стадии, инкубировав их в течение пяти минут. В электропориционных средах, которые являются обычными средами амфибий, содержащими 0,1% бензокаина, обезболенные головастики переносят в камеру электропорации.

Он заполняется средой для электропорации. Самая сложная часть процедуры — это введение микропитомца в головастика. Таким образом, чтобы обеспечить успех, вы должны очень плотно закрепить эмбрион, а затем быстро подать ток после микроинъекции.

Поместите эмбрион в длинную лунку так, чтобы голова покоилась в Т-образном соединении. С опущенной спинной стороной вниз и обнаженной брюшной стороной, голову следует немного приподнять по сравнению с хвостом с помощью щипцов, аккуратно закрепить головастика в колодце с окружающей гипсовой сценой. Важно закрепить головастика, чтобы предотвратить его подергивание во время электропорации, что может привести к серьезному повреждению тканей лица.

Чтобы начать эту процедуру, вставьте наконечник микропипетки непосредственно позади цементной железы и в лицевую механику. Введите 30 нанолитров раствора в мезенхиму, втяните микропипетку. Быстро выровняйте кончики электродов параллельно головке эмбриона и подайте восемь импульсов по 50 миллисекунд 20 милливольт квадратного напряжения.

Затем втяните электроды с помощью щипцов. Осторожно выпустите головастика из колодца. Затем с помощью пипетки перевести головастика на три четверти нома с 0,025 миллиграмма на миллилитр.

Головастиков гентамицина можно инкубировать в этой среде в течение ночи или дольше через 24 часа. Экранируйте головастиков с помощью флуоресцентной микроскопии для эффективной электропорации. Использование флуоресцентных молекул позволяет легко проводить скрининг эмбрионов, подвергнутых электропоре

.

На этом рисунке показана типичная партия головастиков с электропорацией морф-олигонуклеотидов примерно через 1248 и 96 часов после электропорации. На этапах 30, 34 и 44 соответственно. Флуоресцентные морфо-олигонуклеотиды могут быть визуализированы в черепно-лицевой области на стадиях 30 и 34.

На 44 стадии флуоресцентный свет может быть обнаружен в хрящах, обозначенных белыми стрелками. Высокоаутофлуоресцентной областью является кишечник. Следуя этой процедуре, мы можем отслеживать происхождение электроэлементов, а также молекулярные потребности в белках, представляющих интерес.

Этот подход может быть объединен с методами визуализации в реальном времени для изучения функции генов с течением времени во время черепно-лицевого развития.

Explore More Videos

Биология развития выпуск 57 черепно-лицевых электропорация Xenopus laevis Лягушки хрящей мезенхимы

Related Videos

Одноместный Электропорация сотовых в естественных условиях в течение Неповрежденный развивающийся мозг

13:31

Одноместный Электропорация сотовых в естественных условиях в течение Неповрежденный развивающийся мозг

Related Videos

13.8K Views

Первичные культуры и плазмиды электропорации мышей органа Корти.

12:29

Первичные культуры и плазмиды электропорации мышей органа Корти.

Related Videos

26.7K Views

Эффективное доставки генов в нескольких территориях ЦНС Использование In Utero Электропорация

13:12

Эффективное доставки генов в нескольких территориях ЦНС Использование In Utero Электропорация

Related Videos

20.6K Views

Мышь В утробе матери Электропорация: Пространственно-временные Контролируемые трансфекции генов

09:30

Мышь В утробе матери Электропорация: Пространственно-временные Контролируемые трансфекции генов

Related Videos

44K Views

Методы изучения морфогенеза нейронов: Ex естественных условиях RNAi Электропорация в эмбриональной коры головного мозга мышей

10:12

Методы изучения морфогенеза нейронов: Ex естественных условиях RNAi Электропорация в эмбриональной коры головного мозга мышей

Related Videos

12.3K Views

Электропорации Hindbrain Трейс аксонов траектории и Synaptic Цели у эмбрионов кур

10:04

Электропорации Hindbrain Трейс аксонов траектории и Synaptic Цели у эмбрионов кур

Related Videos

11.4K Views

Неонатальный пиальных поверхности Электропорацию

06:22

Неонатальный пиальных поверхности Электропорацию

Related Videos

14.3K Views

Культура эмбриональных мыши Cochlear эксплантов и Перенос генов путем электропорации

09:03

Культура эмбриональных мыши Cochlear эксплантов и Перенос генов путем электропорации

Related Videos

13.5K Views

Двойной в утробе электропорации для целевой временно и пространственно отделенных популяций клеток

10:45

Двойной в утробе электропорации для целевой временно и пространственно отделенных популяций клеток

Related Videos

8K Views

Комбинированная электропорация in vivo и кратковременная реиннервация скелетной мышцы Cranial levator auris longus

04:44

Комбинированная электропорация in vivo и кратковременная реиннервация скелетной мышцы Cranial levator auris longus

Related Videos

931 Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code