June 4th, 2012
Экспериментальная модель эндокардит крысы из-за метициллин-резистентные С. золотистый.
Общая цель этой процедуры заключается в создании экспериментальной модели инфекционного эндокардита у крыс. Это достигается путем предварительного культивирования золотистого катеруса и подготовки хирургических катетеров к инфекции. Далее подготавливается операционная зона и животное обезболивается.
После того, как животное обезболивается, катетер вводится через правую сонную артерию к сердцу. Заключительным этапом является заражение животных золотистым путем введения в хвостовую вену. В конечном итоге, ткани-мишени препарируются и подготавливаются к количественному посеву.
Основное преимущество этой методики перед существующими методами, такими как модель экспресс-эндокардита, заключается в том, что модель красного эндокардита может быть использована с системой визуализации in vivo. Ivus. Этот метод может помочь ответить на ключевые вопросы в области патогенеза полости рта, такие как вирулентность и эффективность антимикробного средства. Как правило, люди, плохо знакомые с этой техникой, будут испытывать трудности, потому что хирургическая процедура сложна.
Сначала привите петлю, полную культуры M SSA, от замороженного поголовья до случая с кровью овцы. Соевая шнековая пластина инкубирует культуру в течение ночи при температуре 37 градусов Цельсия, убедившись в отсутствии загрязнения. Выберите одну колонию с тарелки и используйте ее для инокуляции пяти миллилитров соевого бульона в 15-миллилитровую тюбику с защелкивающейся крышкой.
Инкубируйте инокулят при температуре 37 градусов Цельсия в течение ночи в встряхивающем инкубаторе. Установите значение 200 об/мин, чтобы сначала подготовить катетеры. Разрежьте полиэтиленовую трубку на длину 10 сантиметров и простерилизуйте катетеры в дезинфицирующем растворе cex в течение 30 минут.
Затем расплавите один конец стерилизованной трубки, надавливая на кончик нагретыми стерильными щипцами, чтобы создать катетер, который будет проходить от правой сонной артерии в левый желудочек и вызывать повреждение эндокарда при сердцебиении. Затем обезболите крысу, поместив ее в камеру, содержащую смесь фтора и кислорода один к одному, пока анестетик не начнет действовать. Подтвердите анестезию, проверив, расслаблены ли мышцы и отсутствуют ли педальные рефлексы.
И поддерживать обезболивающее состояние во время операции с помощью носового конуса, который соединен с газовой смесью. Очищайте операционную область бетадином и 70% этанолом с использованием стерильной техники на протяжении всей операции. Поместите крысу в спинное положение и сделайте разрез вертикально через слой кожи шеи выше грудины с помощью тупого рассечения.
Отделите фасцию, чтобы обнажить правую сонную артерию. Правая сонная артерия расположена чуть правее средней линии над ключицами. Осторожно вытяните артерию вверх из полости шеи и поместите два шелковых швов длиной 10 сантиметров под артерию, чтобы перевязать ее на обнаженном головном конце.
Затем поместите зажим на артерию, чтобы предотвратить кровотечение. Сделайте небольшое отверстие в верхней части артерии с помощью введения катетера с помощью щипцов. Введите незапечатанный конец катетера через отверстие в артерии.
Снимите зажим и надавите на катетер вниз по направлению к сердцу. До тех пор, пока сопротивление не будет вставлено должным образом, катетер должен простираться на четыре-пять сантиметров вглубь артерии и пульсировать в такт сердцебиению крысы. Как только катетер будет установлен, завяжите ослабленный шов вокруг зубчатого конца артерии и закрепите катетер на месте.
Шелковым швом срежьте лишний шов и концы катетера, а затем подверните концы под кожу шеи. Закройте кожу зажимами. Поместите крысу в чистую клетку и держите ее в теплом месте до тех пор, пока она не оправится от анестезии.
Обеспечьте крысу едой и водой и часто проверяйте ее, как во время, так и после выздоровления. Инфекция может быть проведена в период от одного до семи дней после операции, но время должно оставаться неизменным в пределах экспериментов. Очистите хвост крысы с помощью 70% этанола и введите 0,5 миллилитра культуры MRSA в нужную клетку.
Считайте в хвостовую вену. С помощью полудюймовой иглы 27 калибра надавите на место инъекции до тех пор, пока кровотечение не остановится, прежде чем вернуть крысу в клетку. Принеся крысу в жертву, протрите грудную клетку 70%-ным этанолом, а затем сделайте V-образный разрез в груди ниже грудины.
Разрежьте хрящи ребер с каждой стороны грудины. Чтобы обнажить сердце, осторожно потяните его вверх и прорежьте ткань рядом с аортой и рассеките вверх, чтобы освободить сердце. Поместите сердце на стерильную чашку Петри, выстланную марлей размером четыре на четыре дюйма, а затем сделайте надрез через внутреннюю стенку левого желудочка и откройте левую камеру.
Проверьте правильность установки катетера, а затем извлеките его. Осмотрите и удалите растительность из клапана ножницами и щипцами. Также удаляют почки и селезенку, а после взвешивания и гомогенизации тканей и вегетации делают серийные разведения в PBS для количественной культуры.
Здесь показан правильно расположенный катетер, как указано крайней левой стрелкой. Он проходит через аортальный клапан и в левую сторону камеры сердца, а вокруг аортальных клапанов видны многочисленные вегетации, как показано средней и правой стрелками. В этой таблице приведен пример вирулентности штамма ssus в модели эндокардита крыс.
Все животные испытывали с помощью инокля от 10 до пятого и 10 до шестого. После освоения КОЕ развился эндокардит с высокой плотностью ssus в сердечных вегетациях, а также в почках и селезенке. Эта хирургическая процедура может быть выполнена в течение 10 минут, если она выполнена правильно.
Пытаясь выполнить эту процедуру, важно помнить о поддержании животного в оцененном состоянии во время операции после этой процедуры. Не такие методы, как ВСУС, могут быть выполнены для ответа на дополнительные вопросы, такие как мониторинг эффективности антимикробных агентов в режиме реального времени и экспрессия гена in vivo после его развития. Эта методика является способом для исследователей в области степа оруса и художественной литературы изучить его патогенный фактор вирулентности в эндоваскулярной инфекции.
После просмотра этого видео у вас должно сложиться хорошее представление о том, как установить экспериментальную модель эндокардита у крыс. Не забывайте, что работа с МРА может быть чрезвычайно опасной, и при выполнении этой процедуры следует соблюдать такие меры предосторожности, как ношение лабораторного костюма, халата и перчатки.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
В этой статье описывается создание экспериментальной модели инфекционного эндокардита у крыс с использованием метициллин-резистентного S. aureus. Процедура включает культивирование бактерий, подготовку хирургических катетеров и инфицирование животных через инъекцию в вену хвоста.
Establishing a controlled rat model of MRSA endocarditis enables reproducible evaluation of antimicrobial efficacy and virulence mechanisms, addressing a critical need in anti-infective drug development. This model supports mechanistic de-risking by providing quantitative tissue burden data and consistent host-pathogen interactions, which are essential for lead optimization and go/no-go decisions in preclinical pipelines. By minimizing inter-animal variability, it enhances predictive confidence in translating candidate therapies to clinical settings.
This model fits within the preclinical infectious disease workflow, bridging early target validation with lead optimization through quantifiable infection burden and therapeutic response metrics.