RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
ru_RU
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/4248-v
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Циркулирующих клеток опухоли, выделенных из крови больных раком, не причиняя повреждения клеток. Изоляция опухолевых клеток достигается с помощью бимолекулярной поверхности Е-селектина в дополнение к антителам против эпителиальных маркеров. Нанотрубок покрытие специально способствует адгезии раковых клеток приводит к высокой чистоты захвата.
Общая цель этой процедуры заключается в выделении жизнеспособных, циркулирующих опухолевых клеток из образцов крови. Начните с подготовки изолирующих микропробирок, затем выделите охристую шерсть из образцов крови. Затем обработайте Buffy coat с помощью функционализированного устройства микропробирки.
Соберите захваченные клетки из микропробирки и поддерживайте культуру с помощью устройства, которое физиологически имитирует место для биомиметического захвата протекающих ЦОК без повреждения клеток. Этот метод обеспечивает функциональность в клинических условиях для разработки персонализированных методов лечения рака. Основные преимущества заключаются в том, что это простая техника, в которой используются общедоступные материалы, и она воссоздает естественный процесс твердой ткани, который происходит в кровеносных сосудах.
Я Майк Кинг, доцент кафедры биомедицинской инженерии в Корнельском университете, а демонстрировать процедуру будет Джефф Мэдисон, старший техник из моей лаборатории. Следующий протокол предназначен для производства устройства с одной микротрубкой, содержащего 250 микролитров 6,6% раствора нанотрубки Halo site. В течение 30 секунд вызывайте раствор холодной водой.
После повторного ультразвукового облучения наберите раствор в шприц. Отфильтруйте раствор через шприцевой фильтр 0,45 микрона в чистый вихрь для микромусора. Периодически используется нанотрубка halo site.
Для поддержания однородности приобретите участок микротрубки длиной 50 сантиметров. Разрежьте входное отверстие микротрубки по диагонали и вставьте один конец микротрубки в небольшой переходник IDEXX, а в другой конец микропробирки вставьте иглу для шприца. Чтобы очистить микропробирку, поместите открытый конец микропробирки в 70% этанол и наберите около 50 микролитров этанола в шприц, чтобы заполнить микропробирку и смыть этанол из микропробирки.
Наберите в шприц обильный объем дистиллированной воды. Теперь отсоедините шприц от микропробирки, опорожните шприц, а затем снова присоедините его к микропробирке. Наберите 50 микролитров по 0,02 веса на объем.
Полиоллизин в микропробирку и выдерживать в течение пяти минут комнатной температуры. Затем наберите в микропробирку 100 микролитров отфильтрованного раствора нанотрубки и инкубируйте в течение трех минут при комнатной температуре. Чтобы промыть раствор нанопробирки, наберите 100 микролитров воды через микропробирку и инкубируйте в течение ночи при комнатной температуре, втяните 50 микролитров PBS через микропробирку, а затем 50 микролитров по 10 микрограмм на миллилитр.
Раствор белка G уравновесить в течение 90 минут при комнатной температуре. Затем наберите в микропробирку 50 микролитров по пять микрограммов на миллилитр, раствор антител E селектина IgG и 50 микрограммов на миллилитр. Инкубировать в течение двух часов при комнатной температуре, блокировать неспецифическую клеточную адгезию 5%-ным молочным белком.
Затем инкубируют PBS при комнатной температуре до тех пор, пока образцы крови или охристой шерсти не будут готовы к обработке за 10 минут до использования микропробирки для выделения клеток. Наберите 50 микролитров насыщенного кальцием PBS для активации молекул селектина в гепаринизированной пробирке. Соберите образец крови пациента объемом 10 миллилитров для выделения лимфоцитов.
Поместите 10 миллилитровый раствор fol pack в центрифужную пробирку объемом 50 миллилитров. Аккуратно наложите центрифугу для образцов цельной крови объемом 10 миллилитров при температуре 2000 умноженных на G на 15 минут, четыре градуса Цельсия с минимальным замедлением. Далее переложите слой баффового покрытия в новую трубку.
Вымойте охристую шерсть с помощью PBS и центрифугируйте для залегания эритроцитов. Аккуратно повторно суспендируйте клеточные гранулы в одном миллилитре лизиса эритроцитов, буферизируйте и инкубируйте в течение 10 минут при комнатной температуре. Затем добавьте 10 миллилитров.
PBS мягко перемешайте и прижмите клетки к нёбу путем центрирования. Аккуратно ресуспендируйте элементы в PBS plus с помощью адаптеров IDEXX. Прикрепите один конец функционализированной микротрубки к пятимиллилитровому шприцу.
Вставьте шприц в шприцевой насос и погрузите открытый конец функционализированной микротрубки в клетку для предотвращения выбросов. Проработайте клеточную суспензию через микротрубку, чтобы удалить несвязанные и слабо связанные клетки. Переложите открытый конец микропробирки в пробирку, содержащую PBS plus.
Наберите в шприц 300 микролитров PBS plus. Затем поместите открытый конец микропробирки в чистую пробирку. Отсоедините шприц от микропробирки и прикрепите шприц, содержащий острое перфузное перфузирование, чтобы заполнить микропробирку.
После 10-минутной инкубации при комнатной температуре прикрепите шприц, содержащий один миллилитр питательной среды, проведите микропробирку и соберите отработанные вещества в соответствующие ткани. Тарелки для культивирования приступают к культуре. Выделенные циркулирующие опухолевые клетки были выделены из образцов крови пациента с раком молочной железы и пациента с раком легких через пять дней.
В культуре. Эти препараты характеризовали для захвата ЦОК на основе окрашивания на эпителиальную клеточную молекулу эпикан, а также чистоту захвата ядра рассчитывали как процент клеток, которые были идентифицированы как КТ С, по сравнению с общим количеством захваченных клеток. На этом изображении представлены репрезентативные микрофотографии ЦОК, выделенных от доноров А и В. После пяти дней культивирования клетки были флуоресцентно окрашены на EPAM с помощью Alexa Fluor 4 88.
Ядра визуализировали с помощью окрашивания DPI. После этой процедуры жизнеспособные ЦОК и культура могут быть использованы для получения специфической для пациента информации, такой как чувствительность к препарату или экспрессия клеточных маркеров. Спасибо за просмотр и удачи.
Related Videos
03:50
Related Videos
1.7K Views
05:22
Related Videos
12.4K Views
08:10
Related Videos
8.8K Views
06:19
Related Videos
10.5K Views
10:12
Related Videos
9.3K Views
05:17
Related Videos
8.9K Views
10:29
Related Videos
10.9K Views
07:47
Related Videos
4.4K Views
08:49
Related Videos
2.2K Views
05:58
Related Videos
1.5K Views