7 октября 2013 г.
В статье описывается методика производства бесклеточной матрицы от крыс кишечника. Вывод кишечных лесов имеет важное значение для будущих применений в тканевой инженерии, клеточной биологии и тестирования на наркотики стволовых.
Общей целью этой процедуры является создание естественного бесклеточного каркаса для инженерии кишечной ткани. Это достигается путем предварительного канюлирования верхней брыжеечной артерии крысы или СМА и забора тонкой кишки вместе с сосудистым доступом. На втором этапе внутрипросветный мусор вымывается, а внутрипросветные и сосудистые канюли подключаются к перистальтическому насосу.
Далее тонкая кишка перфузируется деионизированной водой в течение 24 часов при температуре четыре градуса Цельсия. На заключительном этапе тонкая кишка перфузируется дезоксивитамином натрия, оболочкой и ДНК при комнатной температуре. В конечном счете, полная децеллюляризация тонкой кишки, а также ее архитектуры и компонентов может быть визуализирована с помощью гистологии и электронной микроскопии соответственно.
В настоящее время мы столкнулись с клинической проблемой кишечной недостаточности, разрушительного состояния, которое поражает как детей, так и взрослых. Родительское питание и обычная трансплантация не обеспечивают полного излечения. Производство трехмерного васкуляризированного кишечного каркаса, как показано в следующем видео, распространяется и на терапию кишечной недостаточности.
Что примечательно в этом методе, так это то, что использование щадящих химикатов для цифровизации сохраняет микроархитектуру кишечника, о чем свидетельствуют результаты электронного микроскопа. Кроме того, поддержание иерархической сосудистой сети, следующей за цивилизацией, позволяет засеять структуру, которая может быть воссоединена с хозяином. Кровоснабжение Начните с установки перистальтического насоса с двумя трубками, затем пропустите 70% этанол через трубки перистальтического насоса в течение 15 минут с максимальной скоростью, а затем только что приготовленный PBS AA в течение еще 15 минут.
После промывки насос распылите и протрите брюшную полость усыпленной крысы весом от 250 до 350 грамм с 70% этанолом. Затем с помощью стерилизованных в автоклаве хирургических инструментов выполните лапаротомический разрез лобковой кости XO на брюшной полости, чтобы обеспечить чистое хирургическое поле, выпотрошите тонкую кишку справа от животного на бумажное полотенце, сбрызганное 70% этанолом. Следите за тем, чтобы постоянно смачивать кишечник P-B-S-A-A, чтобы избежать обезвоживания тканей и денатурации внеклеточного матрикса.
Затем найдите СМА, которая возникает под углом 90 градусов от аорты к кишечнику. Наложите шов вокруг СМА и подготовьте узел. С помощью канюли 27 калибра введите СМА из аорты, а затем быстро извлеките иглу, чтобы избежать разрыва стенки сосуда.
Теперь продвиньте пластиковую трубку канюли в SMA, закрепив трубку Викрилом пятью ох швами, а затем введите 10 миллилитров P-B-S-A-A для подтверждения канюляции. Затем с помощью ножниц надрежьте аорту проксимальнее и дистальнее СМА, чтобы освободить канюлю, чтобы избежать утечки кала при рассечении толстой кишки, наложите один шелковый узел на проксимальный конец илеоцекального перехода и один на дистальный конец сигмовидной кишки. Затем разрежьте терминальную подвздошную кишку и толстую кишку между двумя узлами и удалите толстую кишку.
Теперь разрежьте тонкую кишку в месте дуоденального соединения Юноны и освободите кишечник от любых соединительнотканных связей, которые он может иметь с брюшной полостью. Переложите тонкую кишку в чашку Петри, содержащую PBS aa. Затем с помощью пластиковой задней пипетки канюлировали проксимальный отдел кишечника, закрепив его на месте с помощью швов.
Наконец, разрежьте пипетку так, чтобы она подходила к замку приманки шприца объемом 60 миллилитров, а затем промойте просвет кишечника двумя полосками по 60 миллилитров P-B-S-A-A, чтобы удалить любые фекалии и мусор. Затем подсоедините трехсторонний стопорный кран к сосудистой канюле и поместите чашку Петри в контейнер для сбора любого переливающегося раствора. Затем начните подавать деионизированную воду через вальцовый насос с регулируемой скоростью master flex LS со скоростью 0,6 миллилитра в час.
Обращайтесь с тканью осторожно, чтобы убедиться, что пузырьки выходят из дистального конца. Как только все пузырьки будут удалены из канюль, перенесите аппарат в холодильную камеру. Затем начните процесс децеллюляризации, перфузируя просвет кишечника и сосудистое дерево проточной деионизированной водой в течение 24 часов со скоростью 0,6 миллилитра в час в течение первого часа.
Регулярно проверяйте устройство, чтобы убедиться в надежности всех соединений. Утечка минимальна, и в кишечнике нет пузырьков. Через 24 часа переместите аппарат децеллюляризации обратно к комнатной температуре.
Цвет кишечника должен был измениться на светло-розовый под вытяжкой. Взвесьте достаточное количество натриевого дезоксидного покрытия, чтобы сделать 4%-ный раствор в 300 миллилитрах деионизированной воды. С помощью вихря перемешайте раствор до прозрачного состояния.
Теперь замените деионизированный раствор дезоксиколлатом натрия. Проверьте подключения. Удалите любые пузырьки и перфузируйте тонкую кишку в дозе 0,6 миллилитра в час в течение четырех часов.
После этапа обработки дезоксисоли натрия ткань становится прозрачной. Поддержание сосудистой сетки также становится очевидным после добавления PBS AA в насос. Промойте кишечник PBS AA в течение 30 градусов, чтобы избежать любых взаимодействий между дезокси натрия, оболочкой и ДНК.
Затем перфузируйте ткань свежеприготовленными ДНК, одной при комнатной температуре со скоростью 0,6 миллилитра в час. Через три часа перенесите каркас в капюшон для культуры тканей и с помощью септической техники поменяйте пластину. Повторно простерилизуйте трубки перистальтического насоса, пропустив через нее этанол.
Промойте кишечник в последний раз с помощью P-B-S-A-A в течение 30 минут, чтобы убедиться, что все остатки растворов децеллюляризации удалены. Наконец, перенесите каркас в УФ-сшиватель и выполните два цикла стерилизации. Затем храните каркас в P-B-S-A-A.
Меняем раствор каждые три дня. При успешной децеллюляризации каркас должен иметь макроскопический вид, схожий с таковым у родного кишечника, но со светопрозрачными стенками. Сохранность макроархитектуры также должна быть очевидна по проходимости сосудистого дерева.
Когда краситель вводится через канюлю SMA, он должен равномерно распределиться по всему каркасу и достичь капиллярного дерева. Каркас должен быть свободен от ядерного и цитоплазматического материала, который можно было бы оценить. С помощью набора для количественного определения ДНК и простого гистологического анализа, окрашивание гематином и эоином должно продемонстрировать отсутствие ядерного и цитоплазматического материала при сохранении тонких слоев кишечника, как показано на этом изображении.
В частности, сохранение ворсинок и трещин на просветной стороне должно быть очевидным после сканирующей электронной микроскопии. Также следует ожидать дальнейшего сохранения компонентов внеклеточного матрикса, таких как коллаген, эластин и гликоамины-гликаны, как показано здесь. Например, окрашивание Massen Tri CHRO позволяет продемонстрировать неповрежденную соединительную ткань в каркасе.
После просмотра этого видео у вас должно сложиться хорошее понимание того, как создать естественный клеточный кишечный каркас.
В данной статье представлена методика создания ацеллюлярного матрикса из кишечника крысы, что имеет решающее значение для применения в тканевой инженерии и тестировании лекарственных препаратов.
Создание васкуляризированного ацеллюлярного кишечного скаффолда позволяет восполнить критический пробел в моделировании кишечной недостаточности и оценке методов регенеративной терапии. Данный метод децеллюляризации сохраняет ось ворсинка-крипта и архитектуру внеклеточного матрикса, что обеспечивает более точную преклиническую оценку интеграции и функционирования скаффолда. Благодаря сохранению проходимой сосудистой сети данный подход поддерживает потенциальные стратегии реваскуляризации, снижая механистическую неопределенность в программах тканевой инженерии кишечника на ранних стадиях.
Данный метод встраивается в континуум от фундаментальных открытий до доклинических исследований, обеспечивая создание охарактеризованного ацеллюлярного скаффолда, который позволяет проверять гипотезы в области инженерии кишечной ткани, обеспечивает готовность анализа для исследований поведения клеток и гарантирует трансляционную преемственность благодаря сохранению архитектуры и сосудистой сети.