20 февраля 2014 г.
Здесь мы опишем экспериментальные процедуры, связанные с двухфотонного визуализации мыши коры во время поведения в виртуальной среде реальность.
Общая цель данного эксперимента состоит в том, чтобы выполнить ключевые аспекты хронической двухфотонной визуализации на мышах, исследуя среду виртуальной реальности. Это достигается за счет модификации двухфотонного микроскопа для быстрой и стабильной визуализации у мышей. Затем устанавливается беговая дорожка с воздушной опорой, способная отслеживать локомоции.
Затем подготавливается среда виртуальной реальности, в которой используется синхронизированный с микроскопом светодиодный проектор с целью минимизации утечки света. В результате получаются хорошие и стабильные записи изображений за счет уменьшения артефактов движения, уменьшения утечки света и минимизации края фотоповреждения. Хотя этот метод можно использовать для измерения нейроактивности во время навигации в среде виртуальной реальности, он также может быть легко адаптирован к широкому спектру различных поведенческих парадигм, требующих визуальной стимуляции.
Все процедуры для животных были одобрены и проведены в соответствии с рекомендациями ветеринарного департамента кантона Basil sta. Двухфотонный микроскоп, используемый в этих экспериментах, состоит из сканирующей головки, состоящей из резонансного сканера с частотой восемь или 12 килогерц и стандартного гальванометра. Это обеспечивает частоту кадров 40 или 60 Гц при 750 умножить на 400 пикселей и снижает искажение изображения, вызванное движением мозга, фотообесцвечивание и фототоксичность.
Пьезоэлектрический высокоскоростной Z-шаговый процессор используется для последовательного получения изображений с чередованием по времени на нескольких глубинах. Механический бланкер используется для уменьшения лазерного воздействия на ткани в точках поворота траектории сканирования, бланкер должен быть отрегулирован для установки его ширины. В зависимости от амплитуды резонансного сканера подсоедините трубку подачи воздуха с внутренним диаметром не менее 10 миллиметров к держателю мяча беговой дорожки и поместите трубку BLE между основным подачей воздуха и держателем мяча для снижения шума.
Поместите шарик из пенополистирола диаметром 20 сантиметров в специально разработанный и напечатанный на 3D-принтере держатель для шариков. Если поведенческая парадигма требует только передвижения вперед и назад, вставьте булавку, например, иглу для подкожных инъекций 19-го калибра, на боковую сторону шара. Чтобы ограничить движение мяча по горизонтальной оси, используйте одну или две оптические компьютерные мыши для отслеживания движения мяча вокруг двух или всех трех осей соответственно.
Чтобы подготовить среду виртуальной реальности, используйте для дисплея светодиодные проекторы или компьютерные экраны со светодиодной подсветкой. Встроенная стробовая цепь для быстрого мерцания светодиодов во время визуализации. Частота мерцания в 24 килогерца на порядки превышает порог слияния мерцания, выше которого мерцание уже не воспринимается животным.
Чтобы синхронизировать световой поток проектора с точками поворота резонансного сканера для отслеживания зрачков, отрегулируйте точную частоту мерцания и рабочий цикл, используйте видеокамеру на базе CMO. Убедитесь, что камера не содержит инфракрасного блокирующего фильтра. Примерно через две-три недели после инъекции генетического индикатора кальция и имплантации черепного окна используйте эпифлуоресцентное освещение для проверки четкости и экспрессии имплантата черепного окна.
Хорошо заметны и четко очерчены. Границы поверхностных кровеносных сосудов являются хорошим показателем того, что оконный имплантат подходит для визуализации через один-два дня. Чтобы провести двухфотонный эксперимент, измерьте и отрегулируйте мощность лазера до значения ниже 50 милливатт на образце.
Затем включите подачу воздуха на сферическую беговую дорожку. Далее головой зафиксируйте животное на шаровой беговой дорожке. Первые несколько раз мышь фиксируется головой.
Этот процесс можно облегчить, кратковременно успокоив животное изофтором. Как только животное привыкнет к процедуре, монтаж обычно может быть выполнен без седации. Обратите внимание, что очень важно свести к минимуму стресс для животного во время этой процедуры.
Затем расположите систему визуального отображения как можно ближе к животному, чтобы обеспечить доступ к животному. Убедитесь, что на имплантате краниального окна нет грязи, и при необходимости промойте его водой, нанесите прозрачный ультразвуковой гель в качестве среды для погружения между краниальным окном и объектом для погружения в воду для экранирования света. Оберните кусок черной ленты вокруг объектива и передней планки.
Переместите арену виртуальной среды в конечное положение и настройте видеокамеру для отслеживания зрачков. Наконец, настройте лазерный гаситель в соответствии с амплитудой сканирования, используемой во время эксперимента, и начните запись данных после завершения экспериментов. Усыпьте животное в соответствии с рекомендациями вашего учреждения.
Качество изображения при двухфотонной кальциевой визуализации клеточных популяций, меченных генетическим индикатором кальция, в значительной степени зависит от качества имплантата краниального окна, как показано здесь при проверке краниального окна на прозрачность после введения вируса, не должно быть видно грануляционной ткани или повторного роста кости. При этом рисунок поверхностных кровеносных сосудов должен оставаться неизменным, а границы сосудистой сети должны быть четко очерчены. В то же время BOI меченых клеток должен быть хорошо виден под эпифлуоресцентным микроскопом.
В идеале препарат должен быть достаточно стабильным, чтобы искажения двух фотонных изображений, вызванные локомоцией мыши, не были видны на изображении после регистрации кадра. Утечка света от системы визуальной стимуляции может быть полностью устранена путем правильного синхронизации светового потока проектора с точками оборота резонансного сканера. Если данные не получены, частота мерцания источника света должна быть в два раза больше частоты сканирования.
В этом примере бланкер был удален, чтобы проиллюстрировать эффект утечки света, показанный в оранжевых прямоугольниках во время визуальной стимуляции. После просмотра этого видео у вас должно сложиться хорошее понимание того, как выполнять двойные действия в визуализации, поведении мышей, навигации в среде виртуальной реальности. В дополнение к настройке систем визуализации и виртуальной реальности, как описано здесь, ключом к успеху в этих экспериментах является освоение техники имплантации черепных окон.
Чистый имплантат является необходимым условием для получения высококачественных изображений и стабильной записи.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
В данной статье описаны экспериментальные процедуры хронической двухфотонной визуализации коры головного мозга мыши во время перемещения субъектов в среде виртуальной реальности. Методология направлена на минимизацию артефактов и повышение качества изображений в ходе поведенческих исследований.
Данный метод позволяет осуществлять длительный высокоточный мониторинг нейронной активности у мышей в условиях свободного поведения, что способствует валидации мишеней и снижению механистических рисков при поиске нейропсихиатрических лекарственных средств. За счет стабилизации двухфотонной визуализации во время локомоции этот подход повышает достоверность прогнозов в исследованиях модуляции сигнальных путей. Данный метод связывает результаты, полученные in vitro, с функциональными показателями in vivo, обеспечивая трансляционную преемственность при разработке терапевтических средств, направленных на ЦНС.
Данный метод интегрируется в процесс поиска лекарственных средств — от проверки гипотез до оптимизации соединений-лидеров, обеспечивая получение механистических данных, которые позволяют обосновать выбор мишени и расставить приоритеты при отборе соединений.