Гельминтами Сбор и определение от дикой природы

Общая цель этой процедуры заключается в сборе, сохранении и идентификации шлемов диких животных. Это достигается путем первого вскрытия, дикого животного. Далее шлемы собираются из разных органов, затем шлемы консервируются с помощью различных методик для последующей идентификации.

Наконец, шлемы очищаются, окрашиваются и устанавливаются, а также идентифицируются виды. В конечном счете, могут быть получены результаты, показывающие конкретные структуры шлема с помощью методов очистки и/или окрашивания, которые могут значительно помочь в идентификации видов. Хотя этот метод может быть применен для идентификации шлемов млекопитающих, птиц, рептилий и земноводных.

Его также можно применять для других организмов, таких как рыбы. Для начала расположите животное на ровной поверхности и с помощью увеличительного стекла осмотрите все внешние отверстия, включая уши, ротовую полость и глаза, на наличие нематод, КЗЭ, пальцев ног и трематод. С помощью острого лезвия или ножа и пары щипцов для препарирования.

Сделайте разрез над брюшной полостью, стараясь не разорвать ни одного органа. Затем косторезами или небольшой ручной пилой при необходимости вскройте грудную полость. Осмотрите обе полости на наличие fal, roundworm и крупных трематод.

Затем завяжите одну нить близко к началу пищевода и еще одну в конце толстой кишки для осмотра. Под стереомикроскопом разделите сердце и основные кровеносные сосуды, трахею и легкие в отдельные чашки Петри. Удалите печень, желчный пузырь и протоки поджелудочной железы, селезенки, почек и мочевого пузыря и исследуйте их под стереомикроскопом.

Затем удалите всю пищеварительную систему и поместите каждую секцию в стеклянную посуду. После того, как органы будут удалены, используйте шланг или бутылку с распылением, наполненную 0,9% физиологическим раствором, чтобы промыть полость тела, позволяя фильтровать его через сито с ячейкой 106 микрометров. Промойте содержимое сита обратно в чашку Петри и рассмотрите содержимое под стереомикроскопом Для червей Fal или кровяных трематод с помощью ножниц откройте каждый участок пищеварительного тракта.

Соскребите слизистую и внимательно осмотрите ее на наличие крупных паразитов. Пски энканто цефы часто глубоко внедряются в стенку кишечника. Поэтому при необходимости используйте щипцы и/или маленькие ножницы, чтобы аккуратно вытащить их из ткани.

Поместите каждую открытую секцию под проточную воду и промойте содержимое в сито 106 микрометров. Затем откройте сердце и крупные кровеносные сосуды, трахею, мочевой и желчный пузыри и осмотрите содержимое Таким же образом с помощью острого лезвия и щипцов разрежьте и раздразните твердые органы, такие как печень, легкие, почки, селезенку и поджелудочную железу, а также промойте и исследуйте содержимое. Запишите виды паразитов.

Найдено количество каждого вида и органы, в которых они обнаружены. Наклейте этикетки на флаконы или банки, поместив внутрь небольшой кусочек простой индексной карточки, помеченной карандашом, чтобы сохранить шлемы для последующих генетических исследований. Сначала поместите их непосредственно в этанол.

После фиксации образца в течение одного-нескольких дней переложите его в стеклянный флакон объемом пять миллилитров, наполненный 70% этанолом для длительного хранения. Чтобы сохранить трематоды, поместите живые образцы на стеклянный микроскоп, вставьте каплю физиологического раствора, приложите стеклянную защитную пленку и пропустите предметное стекло над пламенем, не кипятя физиологический раствор. Затем опустите предметное стекло в чашку Петри, содержащую спирт, формин уксусную кислоту или FA, и дайте крышке отойти.

Зафиксируйте мертвых трематод в FA или 10% буферизованном формине в течение 48 часов, прежде чем переложить их в банку, наполненную 70% этанолом, для длительного хранения. Чтобы закрепить эстос, отдохните живых животных в чашке Петри, облив их почти кипятком, а затем переложите в банку, наполненную 70% этанолом, для длительного хранения. Расслабьте живые энканто цефы, поместив их в чашку Петри с водой из-под крана в холодильнике на один-несколько часов, пока хоботок не будет полностью предотвращен.

Переложите их в банку, наполненную 70% этанолом или FA для длительного хранения. Убейте мелких или хрупких нематод и горячий 70% этанол и храните в банке, наполненной 70% этанолом и 5% глицерином для уничтожения. Средние и крупные нематоды.

Поместите их в холодную ледяную уксусную кислоту, а через 15 минут переложите в банку, наполненную 70% этанолом и 5% глицерином. Приготовьте гематин Харриса, растворив гематин и спирт и растворив сульфат алюминия аммония в воде, перегретой водой. Смешайте оба раствора и доведите до кипения.

Затем добавьте йодат натрия и прокипятите две-три минуты. Когда раствор остынет, используйте фильтровальную бумагу 5 41 для фильтрации раствора, чтобы скрыть явное окрашивание Trematodes estos и сцедить Cephas Поместите в гематин Харриса или полуконный кармин на ночь, чтобы задержать образцы. Поместите в 70% кислотный этанол до тех пор, пока органы не станут видимыми.

Чтобы остановить окрашивание, переведите образцы на 70% основной этанол не менее чем на 30 минут. Обезвожьте образцы из серии этанола и используйте ксилол или метилсалицилат, чтобы очистить их, чтобы закрепить образцы на предметном стекле микроскопа, добавьте каплю Canada Bossum и покровную резинку. Дайте высохнуть в течение ночи от мелких и средних нематод и энканто цеф, поместив их в крепления с лактфенолом на предметное стекло микроскопа и накрыв покровным листом на 15-30 минут Для крупных нематод и энканто Цеф

Поместите в 80% фенол на срок до 60 минут. Исследуйте под световым микроскопом, чтобы убедиться в расчистке более мелких структур для исследования culex atos. Отрежьте его и положите на него некоторое количество лактофенола.

На предметном стекле микроскопа. Используйте защитный листок, чтобы раздавить кулекс, чтобы можно было измерить и подсчитать звездные крючки розы. Отрежьте передний конец и установите на Фосс на микроскоп.

Нанесите под несколько капель лакцеринового фенола или в глицериновый желе для постоянного крепления. Понаблюдайте за ротовыми частями под световым микроскопом. После срезания хвостов крупных нематод и посадки в лактофенол наблюдайте за вентральной морфологией паоли и списа самцов под световым микроскопом с помощью методов, описанных в этом видео.

Исследование шлемов строптивой сороковой команды было проведено в округе Миссула, штат Монтана. В период с 2007 по 2011 год. В общей сложности 56 землероек были собраны из ловушек-ловушек и обследованы в течение двух часов после смерти.

Общая распространенность инфекции составила 96%Только две землеройки были свободны от паразитов. Было выявлено 15 видов шлемов, в том числе девять видов эстос и шесть видов нематод. Один из видов рода Esto staphylo authority ранее не был описан.

Инфицированные органы включали тонкую кишку, желудок, легкие и мочевой пузырь. Общая интенсивность заражения варьировала от семи до 234 червей на одного инфицированного хозяина, богатство или количество видов шлемов на инфицированного хозяина варьировалось от одного до восьми, в среднем 4,1 после освоения. Эта техника может быть выполнена за один-два Р на маленьком млекопитающем, таком как белка, и четыре-пять R на более крупном млекопитающем, таком как енот.

После просмотра этого видео у вас должно сложиться очень хорошее представление о том, как собирать, сохранять и идентифицировать шлемы диких животных.