7 июля 2014 г.
Чтобы получить изображения флуоресцентно меченых клеток в больших тканях с высоким разрешением, в идеале биологические образцы должны быть визуализированы без разреза. 3DISCO - это простая процедура очистки тканей, основанная на последовательной инкубации с органическими растворителями. После очищения органы становятся прозрачными, что позволяет проводить лазерное сканирование образца от начала до конца.
Общая цель данного эксперимента состоит в том, чтобы получить изображение флуоресцентно меченных интактных биологических образцов без гистологического среза. Это достигается путем последовательной инкубации неподвижных тканей в органических растворителях до достижения полной прозрачности. В качестве второго шага.
Прозрачные ткани визуализируются в 3D с помощью лазерного сканирующего микроскопа. Затем анализируются результаты визуализации, и нейронные структуры в неразрезанных спинном и головном мозге могут быть реконструированы в 3D по собранным трем диско-изображениям. Этот метод может помочь ответить на ключевые вопросы в области нейробиологии о том, как картировать нейронные и GAL-связи во всем головном и спинном мозге.
Применение этой техники распространяется и на терапию нейродегенерации, поскольку теперь мы можем визуализировать нейронную целостность во всей нервной системе. Хотя этот метод может дать представление об организации нервной системы, он также может быть применен к другим органам, таким как легкие или опухолевая ткань. После освоения этой техники требуется всего несколько часов для небольших органов, таких как спинной мозг или легкое, и около одного или двух дней для мозга. Начните процедуру с добавления двух-трех миллилитров свежеприготовленного 50% THF в один стеклянный флакон на собранную ткань.
Затем переложите неподвижные органы в раствор для очистки и надежно закройте флаконы. Поместите флаконы на вращатель и накройте их алюминиевой фольгой, помешивая образцы в течение соответствующего времени с постоянной скоростью 30 об/мин. Затем удалите очищающий раствор и с помощью нового полиэтилена или пипетки суспензируйте ткань в следующем растворе.
Как указано в таблице на заключительном этапе очистки, держите образцы в растворе до тех пор, пока они не станут полностью прозрачными для многофотонной или конфокальной микроскопии. Как только будет достигнута полная расчистка, установите образец на предметное стекло с этой целью. С помощью стоматологического цемента сделайте границу вокруг ткани.
Заполните бассейн окончательным раствором для очистки непосредственно перед тем, как стоматологический цемент станет полностью твердым, а затем немедленно поместите очищенный образец в центр бассейна и накройте его покровным стеклом. Нажмите на покровное стекло до тех пор, пока оно полностью не будет запечатано стоматологическим цементом и не коснется поверхности очищенного органа для световой листовой микроскопии, как только будет достигнуто полное очищение монтировки, а затем вручную поверните винт держателя образца для фиксации образца. Затем опустите образец в камеру визуализации светового листового микроскопа, заполненную окончательным очищающим раствором, подходящим для визуализируемой ткани.
Затем соберите Z-сканы, охватывающие все очищенные ткани, с наилучшим разрешением, которое может обеспечить микроскоп, увеличивая интересующие области для получения изображений с более высоким разрешением. После сбора изображений загрузите серию изображений в программное обеспечение Amira с помощью модуля resolve RT. Когда серия будет загружена, введите правильные размеры вокселей в окне параметров чтения изображения и нажмите OK.
Затем выберите подприложение мультипланарного вида. Затем с помощью ползунков «Первичная проекция» и «Толщина» выберите оптимальную толщину проекции и порог для значений серого. Наконец, используйте модуль обрезки углов для просмотра срезов в различных 3D-ориентациях.
Для визуализации образцов картирование структурной организации нейронов чрезвычайно важно для понимания того, как они функционируют в норме и при болезни. В то время как три дискотеки можно использовать на различных органах, они особенно полезны для отслеживания длинных нейронных связей в спинном и головном мозге. Например, с помощью ультрамикроскопического сканирования больших очищенных сегментов спинного мозга можно проследить аксональные связи на протяжении нескольких сантиметров в спинном мозге грызунов, как показано на этих изображениях.
Аналогичным образом, весь очищенный мозг мыши и гиппокамп могут быть визуализированы для отслеживания нейронных связей в мозге. При использовании конфокальной или многофотонной микроскопии разрешение изображения может быть значительно увеличено, особенно в измерении Z. Например, многофотонная визуализация очищенного спинного мозга у мышей линии GFPM позволяет получить бесшовное изображение на всей глубине спинного мозга от 1,5 до 2 миллиметров.
Конфокальная микроскопия очищенного спинного мозга обеспечивает улучшенное разрешение аналогичным образом. Мультифотонная микроскопическая визуализация очищенного мозга позволяет получать изображения с очень высоким разрешением для визуализации мельчайших деталей нейронных структур, включая дендритные шипы. Образцы для трех дискотек могут быть помечены различными способами.
Например, можно пометить всю сосудистую сеть головного и спинного мозга с помощью лектин-конъюгированных флуоресцентных индикаторов, которые можно использовать для изучения гематоэнцефалического барьера в норме и при заболеваниях. С помощью трех дискотек также можно визуализировать более мелкие клетки в больших тканях. Например, как микроглия, так и астроциты активно участвуют в патологии нейродегенерации, включая болезнь Альцгеймера и травматические повреждения.
С помощью трех дискотек можно изучить их плотность и распределение в спинном мозге. Также можно визуализировать ненейрональные ткани. Например, клетки Clara во всех легких грызунов могут быть иммунопомечены антителами и визуализированы без разделения на уровне отдельных клеток.
Точно так же можно очистить и визуализировать клетки в несанкционированной ткани поджелудочной железы. Например, флуоресцентно меченые альфа-клетки визуализируются после очищения на этих изображениях поджелудочной железы. Визуальная демонстрация этого метода важна, потому что, хотя этапы очистки и визуализации просты, анализ данных может быть сложным.
При применении этой процедуры важно визуализировать прозрачные ткани, как только будет достигнута полная прозрачность, потому что флуоресцентный сигнал со временем будет ухудшаться в очищающем растворе. Разработка этой техники проложила путь исследователям к изучению деталей и неповрежденных органов, таких как картирование нейронных сетей в мозге. После просмотра этого видео у вас должно сложиться хорошее понимание того, как очищать и визуализировать клеточные и субклеточные структуры в целых органах, а впоследствии визуализировать и анализировать их.
В данном исследовании представлен метод визуализации флуоресцентно метченых неповрежденных биологических образцов без гистологического секционирования с использованием методики 3DISCO. Процесс включает последовательное инкубирование фиксированных тканей в органических растворителях для достижения прозрачности, за которым следует 3D-визуализация с помощью лазерного сканирующего микроскопа.
3DISCO enables high-resolution 3D imaging of intact biological systems without sectioning, supporting target validation and mechanistic de-risking in neuroscience and oncology R&D. By preserving tissue architecture and enabling whole-organ visualization, it enhances predictive confidence in preclinical models and reduces biological ambiguity in target engagement studies. This capability accelerates lead identification and translational biomarker discovery by providing quantitative, spatially resolved data across disease-relevant systems.
3DISCO fits within the discovery continuum from target validation through preclinical imaging, supporting hypothesis testing and mechanistic de-risking in neuroscience and immuno-oncology programs.