RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
ru_RU
Menu
Menu
Menu
Menu
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Несмотря на то, что геном человека был картирован более 10 лет назад, ученые до сих пор далеки от понимания функции каждого человеческого гена! Один из способов оценить, как функционирует ген, состоит в том, чтобы нарушить кодирующую его последовательность, а затем оценить влияние этого изменения (фенотипа) на биологию животного. Этот подход обычно используется у мышей (Mus musculus), поскольку они имеют высокую степень генетического сходства с людьми. Чтобы отследить животных, несущих генетические изменения в течение нескольких поколений, необходимо провести скрининг ДНК каждой мыши в процессе, известном как генотипирование.
В этом видео представлен обзор теории и практики генотипирования мышей. Обсуждение начинается с основных принципов генетики мышей, включая обзор терминов гомозигота, гетерозигота, дикий тип, мутантный и трансгенный. Далее прилагаются пошаговые инструкции по извлечению и очистке геномной ДНК из тканей мыши. Приведены примеры, демонстрирующие, как интерпретировать результаты генотипирования, а также как вести учет мышей с нужным генотипом. Наконец, будут представлены некоторые репрезентативные приложения процедуры генотипирования, чтобы продемонстрировать, почему этот распространенный метод так важен для исследований на мышах.
Генотипирование — это процесс обнаружения наличия или отсутствия определенных последовательностей ДНК в геноме конкретного организма.
Поскольку гены могут влиять на фенотип мыши, возможность исследовать генетический состав отдельной мыши, или «генотип», имеет решающее значение для приписывания фенотипа конкретному гену. В этом видео будет рассмотрена генетика мышей, продемонстрированы ключевые этапы процедуры генотипирования и объяснено, как интерпретировать результаты генотипирования на основе ПЦР.
Чтобы понять, на что обращают внимание исследователи при генотипировании мышей, давайте рассмотрим некоторые распространенные манипуляции с генетикой мышей.
Чтобы изучить ген, ученые часто нарушают его функцию, изменяя его генетическую последовательность. Однако, мыши диплоидны, поэтому у них есть две копии любого данного гена. Поскольку большинству генов для функционирования требуется только одна нормальная копия, мыши должны быть выведены для получения животного с разрушенными обоими генами до изучения фенотипа.
Этот генотип называется «гомозиготным нокаутом» или чаще просто «нокаутом». И наоборот, нормальная мышь с двумя функциональными копиями называется «гомозиготным диким типом» или просто «диким типом».
Вместо удаления генетического материала некоторые эксперименты требуют введения последовательностей ДНК в геном мыши. Эти вставленные фрагменты ДНК называются «трансгенами», а мыши, которые их носят, являются «трансгенными». Наиболее распространенным «трансгеном», вводимым мышам, является тот, который управляет экспрессией зеленого флуоресцентного белка, или GFP, у медуз. Используя тканеспецифический промотор (регуляторную последовательность, которая «стимулирует» активность гена) для управления производством GFP, клетки определенного типа тканей могут быть легко идентифицированы с помощью зеленой флуоресценции.
Поскольку многие генетические изменения не приводят к легко наблюдаемому фенотипу, такому как экспрессия GFP, мышей необходимо генотипировать, чтобы определить, какое конкретно животное следует использовать в экспериментах. Перед генотипированием мыши должны быть тщательно помечены, чтобы их можно было идентифицировать позже. Нет, вам понадобится что-то более постоянное. Одним из распространенных методов является создание насечек в ухе таким образом, чтобы положение и количество насечек соответствовали идентификационному номеру.
После того, как мышь помечена, соберите небольшой кусочек ткани (обычно 2-5 мм хвоста, с помощью лезвия бритвы или ножниц), из которого извлеките ДНК. Если вы собираете ткани у нескольких мышей, отметьте используемые сегменты лезвия, чтобы убедиться, что вы не будете использовать одну и ту же часть на следующем животном, что может привести к перекрестному загрязнению ваших образцов.
Чтобы начать процесс отделения генетического материала от других компонентов ткани, образец расщепляют в буфере для лизиса, содержащем фермент протеиназу К. После ночного разложения образец центрифугируется для гранулирования волос и любого другого непереваренного материала. Чтобы выделить ДНК из переваренного лизата, простым и эффективным методом является добавление алкоголя в осадок нуклеиновых кислот. После короткой инкубации образец снова центрифугируют для сбора ДНК в грануле.
После промывки 70% этанолом для удаления избытка солей, гранула ДНК ресуспендируется в воде или буфере и готова к генотипированию.
Существует множество стратегий для определения того, присутствует ли конкретная последовательность ДНК у ваших мышей. Большинство из них требуют сначала амплификации интересующей генетической области с помощью полимеразной цепной реакции, или ПЦР. Для получения дополнительной информации о том, как настроить ПЦР, ознакомьтесь с «Руководством по ПЦР» от JoVE Science Education.
Одним из методов различения генотипов является обнаружение изменений в размере фрагмента, амплифицированного с помощью ПЦР. Допустим, вы проводите скрининг мышей с генетической вставкой 700 пар оснований. После ПЦР полосы дикого типа составляют 200 пар оснований, а трансгенные полосы должны состоять из 900 пар оснований.
После проведения ПЦР разделите продукты реакции на соответствующем процентном содержании агарозного геля, чтобы вы могли различить размеры ваших фрагментов. Элемент управления wildtype должен иметь только полосу wildtype из 200 пар оснований; трансгенный контроль должен иметь только одну пару оснований 900, трансгенную полосу; И блок управления HET должен иметь обе полосы. Наконец, включен контроль «без шаблона», чтобы убедиться, что реагенты не содержат загрязняющей ДНК и, следовательно, не должны образовывать полосы.
Теперь, когда мы уверены, что управление сработало как ожидалось, давайте посмотрим на неизвестных мышей. Поскольку мыши 1 и 2 имеют только одну полосу дикого типа, они являются гомозиготными дикими типами. Мыши 4 и 6 имеют только одну трансгенную полосу и поэтому являются гомозиготными трансгенами.
А мыши 3 и 5 имеют по две полосы, и поэтому являются гетами.
Наконец, когда вы вернетесь, чтобы найти мышей с нужным вам генотипом, вам просто нужно сопоставить узор ушных выемок с идентификационным номером мыши.
Получив представление о том, что такое генотипирование и как оно проводится, давайте рассмотрим несколько примеров того, почему это полезно.
В некоторых случаях для получения желаемого фенотипа требуются более сложные генетические модификации. Например, чтобы установить эту модель рака кожи у мышей, требуется два трансгена. Один несет индуцируемый «онкоген», или ген, который может вызвать рак, а второй несет фермент Cre рекомбиназу, который экспрессируется только в клетках кожи и вырезает последовательность, предотвращающую транскрипцию онкогенов, тем самым обеспечивая экспрессию онкогенов. Чтобы получить потомство с обоими трансгенами, гетерозиготных по каждому из них мышей скрещивают. Затем генотипирование используется для идентификации желаемого потомства.
Иногда бывает невозможно генотипировать мышей до проведения эксперимента. Например, в этом исследовании частоты сердечных сокращений у эмбрионов невозможно собрать ткань для генотипирования эмбрионов без нарушения их поведения. Поэтому сначала тщательно маркируются положения эмбрионов в организме матери, а затем регистрируются ультразвуковые измерения. Наконец, берется биопсия хвоста для определения влияния генотипа на частоту сердечных сокращений.
В этом видео был продемонстрирован один из методов экстракции ДНК, но существует множество вариаций. Например, система Direct PCR требует менее пяти минут для переваривания тканей. Кроме того, после вращения непереваренного материала надосадочная жидкость готова к ПЦР, что устраняет необходимость в очистке ДНК.
Вы только что посмотрели руководство JoVE по генотипированию мышей. В этом видео мы рассмотрели основы генетики мышей, способы подготовки и анализа образцов ДНК мышей, а также некоторые практические применения этой методики. Спасибо за просмотр!
Генотипирование — это процесс обнаружения наличия или отсутствия определенных последовательностей ДНК в геноме конкретного организма.
Поскольку гены могут влиять на фенотип мыши, возможность исследовать генетический состав отдельной мыши, или «генотип», имеет решающее значение для отнесения фенотипа к конкретному гену. В этом видео будет рассмотрена генетика мышей, продемонстрированы ключевые этапы процедуры генотипирования и объяснено, как интерпретировать результаты генотипирования на основе ПЦР.
Чтобы понять, на что обращают внимание исследователи при генотипировании мышей, давайте рассмотрим некоторые распространенные манипуляции с генетикой мышей.
Чтобы изучить ген, ученые часто нарушают его функцию, изменяя его генетическую последовательность. Однако мыши являются диплоидными, поэтому у них есть две копии любого данного гена. Поскольку большинству генов для функционирования требуется только одна нормальная копия, мыши должны быть выведены для получения животного с разрушенными обоими генами до изучения фенотипа.
Этот генотип называется «гомозиготным нокаутом». Или, чаще всего, просто «нокаут»? Для краткости. И наоборот, нормальная мышь с двумя функциональными копиями называется «гомозиготным диким типом». или просто «дикий тип.? Наконец, мыши, имеющие только одну функциональную копию, называются «гетерозиготными». или «hets.»?
Вместо удаления генетического материала некоторые эксперименты требуют введения последовательностей ДНК в геном мыши. Эти вставленные фрагменты ДНК называются «трансгенами». А мыши, которые их переносят, являются «трансгенными». Самый распространенный «трансген? введен мышам тот, который стимулирует экспрессию зеленого флуоресцентного белка, или GFP, из медуз. Используя тканеспецифический промотор (регуляторную последовательность, которая «стимулирует» активность гена) для управления производством GFP, клетки определенного типа тканей могут быть легко идентифицированы с помощью зеленой флуоресценции.
Поскольку многие генетические изменения не приводят к легко наблюдаемому фенотипу, такому как экспрессия GFP, мышей необходимо генотипировать, чтобы определить, какое конкретно животное следует использовать в экспериментах. Перед генотипированием мыши должны быть тщательно помечены, чтобы их можно было идентифицировать позже. Нет, вам понадобится что-то более постоянное. Одним из распространенных методов является создание насечек в ухе таким образом, чтобы положение и количество насечек соответствовали идентификационному номеру.
После того, как мышь помечена, соберите небольшой кусочек ткани (обычно 2-5 мм хвоста, с помощью бритвенного лезвия или ножниц), из которого извлеките ДНК. Если вы собираете ткань у нескольких мышей, отметьте используемые сегменты лезвия, чтобы убедиться, что вы не будете использовать одну и ту же часть на следующем животном, что может привести к перекрестному загрязнению ваших образцов.
Чтобы начать процесс отделения генетического материала от других компонентов ткани, образец расщепляют в буфере для лизиса, содержащем фермент протеиназу К. После ночного разложения образец центрифугируется для гранулирования волос и любого другого непереваренного материала. Чтобы выделить ДНК из переваренного лизата, простым и эффективным методом является добавление алкоголя в осадок нуклеиновых кислот. После короткой инкубации образец снова центрифугируют для сбора ДНК в грануле.
После промывки 70% этанолом для удаления избытка солей, гранула ДНК ресуспендируется в воде или буфере и готова к генотипированию.
Существует множество стратегий для определения того, присутствует ли конкретная последовательность ДНК у ваших мышей. Большинство из них требуют сначала амплификации интересующей генетической области с помощью полимеразной цепной реакции, или ПЦР. Для получения дополнительной информации о том, как настроить ПЦР, ознакомьтесь с JoVE Science Education ? Руководство по ПЦР.
Одним из методов различения генотипов является обнаружение изменений в размере фрагмента, амплифицированного с помощью ПЦР. Допустим, вы проводите скрининг мышей с генетической вставкой 700 пар оснований. После ПЦР полосы дикого типа составляют 200 пар оснований, а трансгенные полосы должны состоять из 900 пар оснований.
После проведения ПЦР разделите продукты реакции на соответствующем процентном содержании агарозного геля, чтобы вы могли различить размеры ваших фрагментов. Элемент управления wildtype должен иметь только полосу wildtype из 200 пар оснований; трансгенный контроль должен иметь только одну пару оснований 900, трансгенную полосу; И блок управления HET должен иметь обе полосы. Наконец, "нет шаблона? Контроль включен для того, чтобы убедиться, что реагенты не содержат загрязняющей ДНК и, следовательно, не должны образовывать полосы.
Теперь, когда мы уверены, что управление сработало как ожидалось, давайте посмотрим на неизвестных мышей. Поскольку мыши 1 и 2 имеют только одну полосу дикого типа, они являются гомозиготными дикими типами. Мыши 4 и 6 имеют только одну трансгенную полосу и поэтому являются гомозиготными трансгенами.
А мыши 3 и 5 имеют по две полосы, и поэтому являются гетами.
Наконец, когда вы вернетесь, чтобы найти мышей с нужным вам генотипом, вам просто нужно сопоставить узор ушных выемок с идентификационным номером мыши.
После того, как вы разберетесь в том, что такое генотипирование и как оно проводится, давайте рассмотрим несколько примеров того, почему это полезно.
В некоторых случаях для получения желаемого фенотипа требуются более сложные генетические модификации. Например, чтобы установить эту модель рака кожи у мышей, требуется два трансгена. Один из них несет индуцируемый «онкоген», или ген, который может вызвать рак, а второй несет фермент Cre рекомбиназу, который экспрессируется только в клетках кожи и удаляет последовательность, предотвращающую транскрипцию онкогенов, тем самым обеспечивая экспрессию онкогенов. Чтобы получить потомство с обоими трансгенами, гетерозиготных по каждому из них мышей скрещивают. Затем генотипирование используется для идентификации желаемого потомства.
Иногда бывает невозможно генотипировать мышей до проведения эксперимента. Например, в этом исследовании частоты сердечных сокращений у эмбрионов невозможно собрать ткань для генотипирования эмбрионов без нарушения их поведения. Поэтому сначала тщательно маркируются положения эмбрионов в организме матери, а затем регистрируются ультразвуковые измерения. Наконец, берется биопсия хвоста для определения влияния генотипа на частоту сердечных сокращений.
В этом видео был продемонстрирован один из методов экстракции ДНК, но существует множество вариаций. Например, система Direct PCR требует менее пяти минут для переваривания тканей. Кроме того, после вращения непереваренного материала надосадочная жидкость готова к ПЦР, что устраняет необходимость в очистке ДНК.
Вы только что посмотрели руководство JoVE по генотипированию мышей. В этом видео мы рассмотрели основы генетики мышей, способы подготовки и анализа образцов ДНК мышей, а также некоторые практические применения этой методики. Спасибо за просмотр!
Related Videos
09:12
Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick
100.3K Просмотры
07:26
Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick
69.0K Просмотры
08:31
Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick
82.7K Просмотры
08:29
Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick
47.5K Просмотры
06:42
Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick
14.7K Просмотры
07:58
Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick
25.7K Просмотры
09:04
Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick
61.6K Просмотры
07:24
Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick
93.0K Просмотры
08:07
Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick
104.4K Просмотры
06:57
Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick
25.8K Просмотры
07:48
Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick
59.4K Просмотры
07:40
Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick
42.9K Просмотры
06:48
Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick
19.3K Просмотры
08:12
Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick
56.0K Просмотры