-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
<<<<<<< HEAD
K12 Schools
Biopharma
=======
K12 Schools
>>>>>>> dee1fd4 (fixed header link)

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Science Education
Basic Biology
Генотипирование мышей
Генотипирование мышей
JoVE Science Education
Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Science Education Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick
Mouse Genotyping

4.10: Генотипирование мышей

91,036 Views
08:27 min
April 30, 2023
AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

Несмотря на то, что геном человека был картирован более 10 лет назад, ученые до сих пор далеки от понимания функции каждого человеческого гена! Один из способов оценить, как функционирует ген, состоит в том, чтобы нарушить кодирующую его последовательность, а затем оценить влияние этого изменения (фенотипа) на биологию животного. Этот подход обычно используется у мышей (Mus musculus), поскольку они имеют высокую степень генетического сходства с людьми. Чтобы отследить животных, несущих генетические изменения в течение нескольких поколений, необходимо провести скрининг ДНК каждой мыши в процессе, известном как генотипирование.

В этом видео представлен обзор теории и практики генотипирования мышей. Обсуждение начинается с основных принципов генетики мышей, включая обзор терминов гомозигота, гетерозигота, дикий тип, мутантный и трансгенный. Далее прилагаются пошаговые инструкции по извлечению и очистке геномной ДНК из тканей мыши. Приведены примеры, демонстрирующие, как интерпретировать результаты генотипирования, а также как вести учет мышей с нужным генотипом. Наконец, будут представлены некоторые репрезентативные приложения процедуры генотипирования, чтобы продемонстрировать, почему этот распространенный метод так важен для исследований на мышах.

Procedure

Генотипирование — это процесс обнаружения наличия или отсутствия определенных последовательностей ДНК в геноме конкретного организма.

Поскольку гены могут влиять на фенотип мыши, возможность исследовать генетический состав отдельной мыши, или «генотип», имеет решающее значение для приписывания фенотипа конкретному гену. В этом видео будет рассмотрена генетика мышей, продемонстрированы ключевые этапы процедуры генотипирования и объяснено, как интерпретировать результаты генотипирования на основе ПЦР.

Чтобы понять, на что обращают внимание исследователи при генотипировании мышей, давайте рассмотрим некоторые распространенные манипуляции с генетикой мышей.

Чтобы изучить ген, ученые часто нарушают его функцию, изменяя его генетическую последовательность. Однако, мыши диплоидны, поэтому у них есть две копии любого данного гена. Поскольку большинству генов для функционирования требуется только одна нормальная копия, мыши должны быть выведены для получения животного с разрушенными обоими генами до изучения фенотипа.

Этот генотип называется «гомозиготным нокаутом» или чаще просто «нокаутом». И наоборот, нормальная мышь с двумя функциональными копиями называется «гомозиготным диким типом» или просто «диким типом».

Вместо удаления генетического материала некоторые эксперименты требуют введения последовательностей ДНК в геном мыши. Эти вставленные фрагменты ДНК называются «трансгенами», а мыши, которые их носят, являются «трансгенными». Наиболее распространенным «трансгеном», вводимым мышам, является тот, который управляет экспрессией зеленого флуоресцентного белка, или GFP, у медуз. Используя тканеспецифический промотор (регуляторную последовательность, которая «стимулирует» активность гена) для управления производством GFP, клетки определенного типа тканей могут быть легко идентифицированы с помощью зеленой флуоресценции.

Поскольку многие генетические изменения не приводят к легко наблюдаемому фенотипу, такому как экспрессия GFP, мышей необходимо генотипировать, чтобы определить, какое конкретно животное следует использовать в экспериментах. Перед генотипированием мыши должны быть тщательно помечены, чтобы их можно было идентифицировать позже. Нет, вам понадобится что-то более постоянное. Одним из распространенных методов является создание насечек в ухе таким образом, чтобы положение и количество насечек соответствовали идентификационному номеру.

После того, как мышь помечена, соберите небольшой кусочек ткани (обычно 2-5 мм хвоста, с помощью лезвия бритвы или ножниц), из которого извлеките ДНК. Если вы собираете ткани у нескольких мышей, отметьте используемые сегменты лезвия, чтобы убедиться, что вы не будете использовать одну и ту же часть на следующем животном, что может привести к перекрестному загрязнению ваших образцов.

Чтобы начать процесс отделения генетического материала от других компонентов ткани, образец расщепляют в буфере для лизиса, содержащем фермент протеиназу К. После ночного разложения образец центрифугируется для гранулирования волос и любого другого непереваренного материала. Чтобы выделить ДНК из переваренного лизата, простым и эффективным методом является добавление алкоголя в осадок нуклеиновых кислот. После короткой инкубации образец снова центрифугируют для сбора ДНК в грануле.

После промывки 70% этанолом для удаления избытка солей, гранула ДНК ресуспендируется в воде или буфере и готова к генотипированию.

Существует множество стратегий для определения того, присутствует ли конкретная последовательность ДНК у ваших мышей. Большинство из них требуют сначала амплификации интересующей генетической области с помощью полимеразной цепной реакции, или ПЦР. Для получения дополнительной информации о том, как настроить ПЦР, ознакомьтесь с «Руководством по ПЦР» от JoVE Science Education.

Одним из методов различения генотипов является обнаружение изменений в размере фрагмента, амплифицированного с помощью ПЦР. Допустим, вы проводите скрининг мышей с генетической вставкой 700 пар оснований. После ПЦР полосы дикого типа составляют 200 пар оснований, а трансгенные полосы должны состоять из 900 пар оснований.

После проведения ПЦР разделите продукты реакции на соответствующем процентном содержании агарозного геля, чтобы вы могли различить размеры ваших фрагментов. Элемент управления wildtype должен иметь только полосу wildtype из 200 пар оснований; трансгенный контроль должен иметь только одну пару оснований 900, трансгенную полосу; И блок управления HET должен иметь обе полосы. Наконец, включен контроль «без шаблона», чтобы убедиться, что реагенты не содержат загрязняющей ДНК и, следовательно, не должны образовывать полосы.

Теперь, когда мы уверены, что управление сработало как ожидалось, давайте посмотрим на неизвестных мышей. Поскольку мыши 1 и 2 имеют только одну полосу дикого типа, они являются гомозиготными дикими типами. Мыши 4 и 6 имеют только одну трансгенную полосу и поэтому являются гомозиготными трансгенами.

А мыши 3 и 5 имеют по две полосы, и поэтому являются гетами.

Наконец, когда вы вернетесь, чтобы найти мышей с нужным вам генотипом, вам просто нужно сопоставить узор ушных выемок с идентификационным номером мыши.

Получив представление о том, что такое генотипирование и как оно проводится, давайте рассмотрим несколько примеров того, почему это полезно.

В некоторых случаях для получения желаемого фенотипа требуются более сложные генетические модификации. Например, чтобы установить эту модель рака кожи у мышей, требуется два трансгена. Один несет индуцируемый «онкоген», или ген, который может вызвать рак, а второй несет фермент Cre рекомбиназу, который экспрессируется только в клетках кожи и вырезает последовательность, предотвращающую транскрипцию онкогенов, тем самым обеспечивая экспрессию онкогенов. Чтобы получить потомство с обоими трансгенами, гетерозиготных по каждому из них мышей скрещивают. Затем генотипирование используется для идентификации желаемого потомства.

Иногда бывает невозможно генотипировать мышей до проведения эксперимента. Например, в этом исследовании частоты сердечных сокращений у эмбрионов невозможно собрать ткань для генотипирования эмбрионов без нарушения их поведения. Поэтому сначала тщательно маркируются положения эмбрионов в организме матери, а затем регистрируются ультразвуковые измерения. Наконец, берется биопсия хвоста для определения влияния генотипа на частоту сердечных сокращений.

В этом видео был продемонстрирован один из методов экстракции ДНК, но существует множество вариаций. Например, система Direct PCR требует менее пяти минут для переваривания тканей. Кроме того, после вращения непереваренного материала надосадочная жидкость готова к ПЦР, что устраняет необходимость в очистке ДНК.

Вы только что посмотрели руководство JoVE по генотипированию мышей. В этом видео мы рассмотрели основы генетики мышей, способы подготовки и анализа образцов ДНК мышей, а также некоторые практические применения этой методики. Спасибо за просмотр!

Transcript

Генотипирование — это процесс обнаружения наличия или отсутствия определенных последовательностей ДНК в геноме конкретного организма.

Поскольку гены могут влиять на фенотип мыши, возможность исследовать генетический состав отдельной мыши, или «генотип», имеет решающее значение для отнесения фенотипа к конкретному гену. В этом видео будет рассмотрена генетика мышей, продемонстрированы ключевые этапы процедуры генотипирования и объяснено, как интерпретировать результаты генотипирования на основе ПЦР.

Чтобы понять, на что обращают внимание исследователи при генотипировании мышей, давайте рассмотрим некоторые распространенные манипуляции с генетикой мышей.

Чтобы изучить ген, ученые часто нарушают его функцию, изменяя его генетическую последовательность. Однако мыши являются диплоидными, поэтому у них есть две копии любого данного гена. Поскольку большинству генов для функционирования требуется только одна нормальная копия, мыши должны быть выведены для получения животного с разрушенными обоими генами до изучения фенотипа.

Этот генотип называется «гомозиготным нокаутом». Или, чаще всего, просто «нокаут»? Для краткости. И наоборот, нормальная мышь с двумя функциональными копиями называется «гомозиготным диким типом». или просто «дикий тип.? Наконец, мыши, имеющие только одну функциональную копию, называются «гетерозиготными». или «hets.»?

Вместо удаления генетического материала некоторые эксперименты требуют введения последовательностей ДНК в геном мыши. Эти вставленные фрагменты ДНК называются «трансгенами». А мыши, которые их переносят, являются «трансгенными». Самый распространенный «трансген? введен мышам тот, который стимулирует экспрессию зеленого флуоресцентного белка, или GFP, из медуз. Используя тканеспецифический промотор (регуляторную последовательность, которая «стимулирует» активность гена) для управления производством GFP, клетки определенного типа тканей могут быть легко идентифицированы с помощью зеленой флуоресценции.

Поскольку многие генетические изменения не приводят к легко наблюдаемому фенотипу, такому как экспрессия GFP, мышей необходимо генотипировать, чтобы определить, какое конкретно животное следует использовать в экспериментах. Перед генотипированием мыши должны быть тщательно помечены, чтобы их можно было идентифицировать позже. Нет, вам понадобится что-то более постоянное. Одним из распространенных методов является создание насечек в ухе таким образом, чтобы положение и количество насечек соответствовали идентификационному номеру.

После того, как мышь помечена, соберите небольшой кусочек ткани (обычно 2-5 мм хвоста, с помощью бритвенного лезвия или ножниц), из которого извлеките ДНК. Если вы собираете ткань у нескольких мышей, отметьте используемые сегменты лезвия, чтобы убедиться, что вы не будете использовать одну и ту же часть на следующем животном, что может привести к перекрестному загрязнению ваших образцов.

Чтобы начать процесс отделения генетического материала от других компонентов ткани, образец расщепляют в буфере для лизиса, содержащем фермент протеиназу К. После ночного разложения образец центрифугируется для гранулирования волос и любого другого непереваренного материала. Чтобы выделить ДНК из переваренного лизата, простым и эффективным методом является добавление алкоголя в осадок нуклеиновых кислот. После короткой инкубации образец снова центрифугируют для сбора ДНК в грануле.

После промывки 70% этанолом для удаления избытка солей, гранула ДНК ресуспендируется в воде или буфере и готова к генотипированию.

Существует множество стратегий для определения того, присутствует ли конкретная последовательность ДНК у ваших мышей. Большинство из них требуют сначала амплификации интересующей генетической области с помощью полимеразной цепной реакции, или ПЦР. Для получения дополнительной информации о том, как настроить ПЦР, ознакомьтесь с JoVE Science Education ? Руководство по ПЦР.

Одним из методов различения генотипов является обнаружение изменений в размере фрагмента, амплифицированного с помощью ПЦР. Допустим, вы проводите скрининг мышей с генетической вставкой 700 пар оснований. После ПЦР полосы дикого типа составляют 200 пар оснований, а трансгенные полосы должны состоять из 900 пар оснований.

После проведения ПЦР разделите продукты реакции на соответствующем процентном содержании агарозного геля, чтобы вы могли различить размеры ваших фрагментов. Элемент управления wildtype должен иметь только полосу wildtype из 200 пар оснований; трансгенный контроль должен иметь только одну пару оснований 900, трансгенную полосу; И блок управления HET должен иметь обе полосы. Наконец, "нет шаблона? Контроль включен для того, чтобы убедиться, что реагенты не содержат загрязняющей ДНК и, следовательно, не должны образовывать полосы.

Теперь, когда мы уверены, что управление сработало как ожидалось, давайте посмотрим на неизвестных мышей. Поскольку мыши 1 и 2 имеют только одну полосу дикого типа, они являются гомозиготными дикими типами. Мыши 4 и 6 имеют только одну трансгенную полосу и поэтому являются гомозиготными трансгенами.

А мыши 3 и 5 имеют по две полосы, и поэтому являются гетами.

Наконец, когда вы вернетесь, чтобы найти мышей с нужным вам генотипом, вам просто нужно сопоставить узор ушных выемок с идентификационным номером мыши.

После того, как вы разберетесь в том, что такое генотипирование и как оно проводится, давайте рассмотрим несколько примеров того, почему это полезно.

В некоторых случаях для получения желаемого фенотипа требуются более сложные генетические модификации. Например, чтобы установить эту модель рака кожи у мышей, требуется два трансгена. Один из них несет индуцируемый «онкоген», или ген, который может вызвать рак, а второй несет фермент Cre рекомбиназу, который экспрессируется только в клетках кожи и удаляет последовательность, предотвращающую транскрипцию онкогенов, тем самым обеспечивая экспрессию онкогенов. Чтобы получить потомство с обоими трансгенами, гетерозиготных по каждому из них мышей скрещивают. Затем генотипирование используется для идентификации желаемого потомства.

Иногда бывает невозможно генотипировать мышей до проведения эксперимента. Например, в этом исследовании частоты сердечных сокращений у эмбрионов невозможно собрать ткань для генотипирования эмбрионов без нарушения их поведения. Поэтому сначала тщательно маркируются положения эмбрионов в организме матери, а затем регистрируются ультразвуковые измерения. Наконец, берется биопсия хвоста для определения влияния генотипа на частоту сердечных сокращений.

В этом видео был продемонстрирован один из методов экстракции ДНК, но существует множество вариаций. Например, система Direct PCR требует менее пяти минут для переваривания тканей. Кроме того, после вращения непереваренного материала надосадочная жидкость готова к ПЦР, что устраняет необходимость в очистке ДНК.

Вы только что посмотрели руководство JoVE по генотипированию мышей. В этом видео мы рассмотрели основы генетики мышей, способы подготовки и анализа образцов ДНК мышей, а также некоторые практические применения этой методики. Спасибо за просмотр!

Explore More Videos

Генотипирование мышей Последовательности ДНК Генотип Фенотип Генотипирование на основе ПЦР Генетика мыши Генетические манипуляции Гомозиготный нокаут Дикий тип Гетерозиготный Трансгены Трансгенные мыши

Related Videos

Введение в лабораторную мышь: <i>Mus musculus</i>

09:12

Введение в лабораторную мышь: <i>Mus musculus</i>

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

100.3K Просмотры

Знакомство с цыпленком: <i>Gallus gallus domesticus</i>

07:26

Знакомство с цыпленком: <i>Gallus gallus domesticus</i>

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

69.0K Просмотры

Знакомство с рыбками данио-рерио: <i>Danio rerio</i>

08:31

Знакомство с рыбками данио-рерио: <i>Danio rerio</i>

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

82.7K Просмотры

Базовый уход за мышью и обслуживание

08:29

Базовый уход за мышью и обслуживание

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

47.5K Просмотры

Базовый уход за цыплятами и их содержание

06:42

Базовый уход за цыплятами и их содержание

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

14.7K Просмотры

Содержание и разведение рыбок данио рерио

07:58

Содержание и разведение рыбок данио рерио

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

25.7K Просмотры

Разработка и размножение лабораторной мыши

09:04

Разработка и размножение лабораторной мыши

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

61.6K Просмотры

Развитие цыпленка

07:24

Развитие цыпленка

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

93.0K Просмотры

Размножение и развитие рыбок данио

08:07

Размножение и развитие рыбок данио

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

104.4K Просмотры

<em>В ово</em> Электропорация куриных эмбрионов

06:57

<em>В ово</em> Электропорация куриных эмбрионов

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

25.8K Просмотры

Разведение рыбок данио и обращение с эмбрионами

07:48

Разведение рыбок данио и обращение с эмбрионами

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

59.4K Просмотры

Введение экспериментальных агентов в мышь

07:40

Введение экспериментальных агентов в мышь

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

42.9K Просмотры

Цыпленок <em>ex ovo</em> Культура

06:48

Цыпленок <em>ex ovo</em> Культура

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

19.3K Просмотры

Техники микроинъекций рыбок данио

08:12

Техники микроинъекций рыбок данио

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

56.0K Просмотры

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code