17 августа 2014 г.
Болезнь Паркинсона представляет собой нейродегенеративное расстройство, которое возникает в результате дегенерации допаминергических нейронов в центральной нервной системе, в результате чего передвижения, дефекты. Модели Ротенон болезнь Паркинсона у дрозофилы. В настоящем документе излагаются два анализов, которые характеризуют как спонтанные и поразить индуцированные недостатки передвижения, вызванные ротенона.
Общей целью данного эксперимента является определение индуцированной испугом и долгосрочной спонтанной локомоции в модели болезни Паркинсона, вызванной ротеноном, у дрозофилы, что достигается путем выращивания дрозофилы на пище, дополненной ротеноном, чтобы индуцировать фенотип. В качестве второго шага мух подвергают анализу на реакцию испуга и двойному флакону, а также долгосрочному анализу спонтанной локомоции. Результаты мониторинга активности дрозофилы показывают, что воздействие ротенона вызывает дефекты локомоции у дрозофилы на основе количественной оценки испуга и долгосрочной спонтанной локомоции.
Эти методы могут помочь ответить на ключевые вопросы в области дрозофил, моделей нейродегенеративных и двигательных нарушений, таких как дефекты локомоции, вызванной испугом, и долгосрочная спонтанная локомоция. Для начала добавьте 1,5 грамма растворимой дрозофилы средней. В стандартный флакон от мух входят среда с пятью миллилитрами деионизированной воды, содержащей соответствующую дозу ротенона.
Затем усыпляют, от восьми до 12 самцов мух в возрасте от одного до трех дней используют углекислый газ и транспортируют их во флаконы, содержащие препарат. Дополненный корм позволяет мухам восстановиться после седативного эффекта в течение 20 минут при горизонтальном положении флакона. Затем поместите флакон вертикально в 12-часовой светлый темный инкубатор при температуре 25 градусов Цельсия до конца эксперимента.
Далее переверните стандартный флакон с мухой поверх другого флакона и заклейте шов скотчем, чтобы получился двойной флакон аппарата. Затем разделите двойной флакон на три равные секции по 6,33 сантиметра, отметив круги вокруг флаконов постоянным маркером. После трех суток воздействия препарата переложите мух в двойной флакон аппарата.
Замена ленты поверх шва позволяет мухам акклиматизироваться к новой среде в течение 15 минут. Затем поместите флаконы на белый фон и настройте цифровую камеру. Убедитесь, что весь аппарат виден в одном кадре, что двойной флакон и таймер находятся в поле зрения, а все мухи находятся в фокусе.
Отметьте расположение камеры и флакона для поддержания единообразия кадров между испытаниями, четко отображайте номер испытания и лекарственное лечение в поле зрения камеры. Затем сильно постучите двойным флаконом по столешнице три раза и убедитесь, что все мухи упадут на дно флакона, и немедленно запустите таймер. Фотографируйте аппарат каждые пять секунд в течение одной минуты.
Затем дайте мухам спокойно восстановиться в течение одной минуты. Повторите анализ еще два раза с интервалом восстановления в одну минуту между каждым испытанием. Просмотрите фотографии и запишите количество мух в каждой секции с течением времени, чтобы сделать расчеты для восстановления трех граммов растворимой опг, среды с 15 миллилитрами деионизированной воды и соответствующей дозой ротенона.
Через пять минут осторожно поместите пробирки вертикально в прозрачные флаконы и загрузите твердую пищу на высоту одного сантиметра, повернув пробирку. Далее аккуратно надавите на пластиковый колпачок на конце трубки, не допуская образования пузырьков воздуха Седативный. Однодневного самца мухи с углекислым газом и аккуратно вставляют по одной мухе в каждую трубочку с помощью кисточки.
Затем заткните конец трубки небольшим ватным тампоном. Дайте мухам восстановиться от углекислого газа, установив трубки в горизонтальном положении в течение 15 минут, и убедитесь, что все мухи живы и активны. Вставьте трубки в монитор активности дрозофилы или DAM и убедитесь, что все трубки находятся в одном и том же положении относительно DAM.
Поместите DAM в 12-часовой светлый темный инкубатор при температуре 25 градусов Цельсия. Далее подключите ДАМ к системе сбора данных. Затем откройте программное обеспечение DAM в настройках.
Выберите длину ячейки 10 минут, чтобы начать сбор данных, и позвольте программе собирать данные в течение семи дней. Далее откройте программу сканирования файла DAM и получите доступ к данным монитора, нажав кнопку «Выбрать входные данные». Затем выберите подходящий диапазон монитора и установите длину ячейки с интервалом в 10 минут.
Далее в поле Тип выходного файла выберите файлы каналов и оставьте все остальные параметры по умолчанию. Затем нажмите кнопку «Сканировать данные» и сохраните файлы в указанную папку. Наконец, импортируйте данные в программное обеспечение для анализа циркадных данных, чтобы получить количество данных в минуту.
После трех дней воздействия различных дозировок дикого типа у мух Кантона, подвергшихся воздействию повышенных доз, наблюдался дефицит реакции на испуг. Более низкий процент мух находился в верхней части и более высокий процент в нижней части аппарата через 30 секунд указывал на дефицит сарального ответа, аналогичная тенденция наблюдалась для мух в анализе спонтанной локомоции. Количество отсчетов в минуту измерялось в мониторе активности дрозофил или DAM.
На четвертый день после воздействия у мух, подвергшихся воздействию 250 микромоляров и 500 микромоляров ротенона, наблюдается значительное снижение количества в минуту. Эти анализы могут быть удобно адаптированы для характеристики дефектов локомоции в других моделях заболевания пищевода и эффективности терапевтических агентов.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
В данном исследовании изучаются нарушения локомоции на модели болезни Паркинсона у Drosophila, индуцированной ротеноном. Исследование сосредоточено как на спонтанной, так и на вызванной испугом локомоции, что позволяет глубже понять механизмы нейродегенеративных заболеваний.
В данном исследовании представлен масштабируемый высокопроизводительный подход к количественному определению двигательного дефицита на модели болезни Паркинсона у Drosophila, что позволяет проводить валидацию мишеней на ранних стадиях и снижать механистические риски при разработке терапевтических средств для лечения нейродегенеративных заболеваний. За счет регистрации фенотипов как спонтанного, так и вызванного испугом движения, данные тесты обеспечивают прогностическую достоверность при модуляции путей и проведении кампаний по фенотипическому скринингу. Методология обеспечивает трансляционную непрерывность от этапа открытия до доклинической оценки, способствуя приоритизации соединений, влияющих на целостность дофаминергических нейронов и функцию митохондрий, с учетом рисков.
Данный метод интегрируется в рабочие процессы раннего поиска путем установления базовых показателей локомоции перед скринингом соединений и продолжает применяться на этапе оптимизации ведущих соединений для подтверждения механизма действия.