RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
ru_RU
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/51852-v
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Этот протокол подробно описывает восстановление светособирающих комплексов in vitro. Эти интегральные мембранные белки координируют хлорофиллы и каротиноиды и отвечают за сбор света в высших растениях и зеленых водорослях.
Общая цель данного эксперимента заключается в воссоздании in vitro светособирающих пигментных белковых комплексов растений или водорослей. Это достигается за счет извлечения пигментов из листьев шпината или культур водорослей, а также чрезмерной экспрессии протеза APA в кишечной палочке. На втором этапе проте APA смешивают с пигментами для получения восстановленного комплекса.
Затем восстановленный пигментный белковый комплекс очищают от избытка пигментов и получают результаты развертки белка, которые демонстрируют схожие спектроскопические характеристики восстановленного пигментного белкового комплекса и нативного комплекса на основе спектров поглощения, флуоресцентных спектров и кругового деизма. Основным преимуществом данной процедуры является то, что она позволяет получить относительно большое количество пигментных белковых комплексов, а также манипулировать комплексами с использованием в мутировавшем типе белковых и пигментных смесей с различным составом. С помощью блендера гомогенизируйте горсть шпината, оставьте примерно 20 грамм в 100 миллилитрах буфера холодного помола на 20 секунд.
Отфильтруйте раствор через два слоя нейлоновой ткани с плохим диаметром 20 микрометров и центрифугируйте фильтрат при давлении 1 500 G в течение 10 минут. При четырех градусах по Цельсию. Снимите надосадочную жидкость и добавьте один миллилитр буфера для холодной стирки.
Суспендируйте гранулу, содержащую хлоропласты, мягкой кистью художника. Как только гранула будет ресуспендирована, добавьте 50 миллилитров промывки, буфера и центрифуги, раствор в 10 000 г на 10 минут. При четырех градусах Цельсия удалите надосадочную жидкость и аккуратно ресуспендируйте гранулу в 50 миллилитрах промывочной буферной центрифуги, растворе при 10 000 G в течение 10 минут при четырех градусах Цельсия, с этого момента полностью удалите надосадочную жидкость.
Эту процедуру необходимо выполнять в темное время суток. Чтобы избежать окисления пигмента, добавьте примерно 20 миллилитров 80% ацетона, буферизованного карбонатом натрия, чтобы извлечь пигменты, оставьте раствор на льду на 10 минут. Время от времени вихревая подошва клеточных компонентов путем центрифугирования при 12 000 G в течение 15 минут при четырех градусах Цельсия.
Общая экстракция пигмента должна привести к получению белой гранулы. Соберите снат в разделительную воронку. Добавьте 0,4 объема датилэфира.
Энергично встряхните и обязательно откройте клапаны, чтобы выпустить газ. Добавьте 0,8 объема пункта 33 моляра натрия хлорида и энергично перемешайте. Подождите примерно 10 минут, чтобы слои разделились.
Эфирная фаза сверху содержит извлеченные пигменты. Удалите и выбросьте прозрачную нижнюю фазу. Удалите эфир, перелив его с верхней части разделительной воронки в подходящую стеклянную емкость.
Высушите эфир, добавив ложку гранулированного безводного сульфата натрия. Взбейте раствор и дайте примерно пять минут, чтобы адсорбент впитал воду из эфира. Когда эфир достаточно высохнет.
Должно быть некоторое количество свободно плавающих кристаллов и не должно быть комкования сульфата натрия. Сцедите эфир в новую стеклянную емкость, оставив твердое вещество сульфата натрия после аликвоты пигментов, и высушите их в вакууме с вращающейся скоростью до полного испарения ацетона. Храните высушенные пигменты при температуре минус 80 градусов по Цельсию.
Извлечение кератиноида из шпината в этом видео не показано, но высушенные пигменты также хранятся при температуре минус 80 градусов по Цельсию. Светособирающий комплекс или БАК для восстановления экспрессировали и очищали от кишечной палочки в виде тел включения. Для успеха восстановления решающее значение имеет соотношение между пигментными белками и количеством используемого буфера.
Эту процедуру следует выполнять при слабом освещении. Ресуспендировать 800 микрограммов включений LHC в общей сложности 400 микролитров te. В двухмиллилитровую пробирку добавьте 400 микролитров двух x восстановителей, буфера и вихря.
Кратковременно добавьте 0,6 микролитра 14,8 молярного бета-мара запаса этанола CAPTA. Чтобы получить конечную концентрацию в 10 миллимоляров, нагрейте белок при температуре 98 градусов Цельсия в течение одной минуты. Вортись ненадолго и поместить при комнатной температуре на три минуты.
Ресуспендируйте 500 микрограммов общего количества высушенных пигментов хлорофилла, а также 80 микрограммов кератиноидных пигментов в 30 микролитрах 100% этанола путем энергичного вортексирования. На одну минуту. Вращайте смесь пигментов при температуре 15 800 G при четырех градусах Цельсия в течение примерно 30 секунд и убедитесь, что гранул нет сразу после отжима, медленно добавляйте смесь пигментов к охлажденному белку во время вортекса.
Будьте осторожны и не делайте вихри слишком энергично, так как белок может переполнить верхнюю часть трубки. Продолжайте делать вихрь в течение пяти-10 секунд, а затем положите трубку на мокрый лед. Добавьте 94 микролитра 20% октала, бета-D глюкозида или og, чтобы получить конечную концентрацию 2% Vortex на короткое время, и держите на льду в течение 10 минут, добавьте 90 микролитров двух моляров хлорида калия, чтобы получить конечную концентрацию от 150 до 200 микромоляров.
Ненадолго перемешайте и оставьте на льду на 20 минут. Вращайте при температуре 15, 800 GS при четырех градусах Цельсия в течение 10 минут. Перенесите натант SUP в 10-миллилитровую трубку, не потревожив гранулу.
Хранить натин в холоде и в защищенном от света месте. Начните эту процедуру с подготовки колонки с никелевым СРО объемом один миллилитр, как описано в тексте протокола. Добавьте три-четыре миллилитра OG-буфера к образцу белка и загрузите образец в колонку.
Промойте колонку пятью миллилитрами буфера OG, а затем двумя миллилитрами буфера для полоскания OG. Разбавьте связанный белок тремя миллилитрами буфера элу. Соберите зеленый эллу, который содержит восстановленный белок.
Градиент сахарозы готовится, как описано в тексте протокола, тщательно удаляется из верхней части градиента, в том же объеме, что и у зеленой фракции, указанной в столбце с никелевыми СРО. Медленно загрузите восстановленный образец сверху, стараясь не нарушить градиент. Поместите трубку и весы в вращающийся ротор ковша S SW 41 или SW 60 и вращайте в ультрацентрифуге при давлении 200 000 G при четырех градусах Цельсия в течение 18 часов с медленным ускорением и остановкой без перерывов.
Когда ультрацентрифуга будет готова, с помощью щипцов осторожно вынимайте градиент из держателя пробирки. Зеленая полоса — это дробь, которую нужно собрать. Спектр поглощения CP 24.
Восстановленный in vitro белок, связывающий хлорофилл AB, сравнивают со спектром нативного комплекса. Идентичные спектры указывают на практически идентичный состав и организацию пигмента. Качество восстановленного комплекса также можно оценить с помощью флуоресцентной спектроскопии.
Поскольку пигменты излучают флуоресценцию при возбуждении на разных длинах волн, хлорофилл А на 440 нанометрах хлорофилл B на 475 нанометрах и зилы на 500 нанометрах. Спектры флуоресцентного излучения восстановленного комплекса дикого типа CP 24 и нормализованные до максимума показывают эффективный перенос энергии от хлорофилла B и наполнителей XANTHE к хлорофиллу A. Присутствие хлорофилла B, не скоординированного с белком, можно распознать по дополнительному плечу около 650 нанометров. Присутствие свободного хлорофилла А приводит к дополнительному излучению около 675 нанометров.
Спектры флуоресцентного излучения на 475 нанометрах как восстановленного, так и нативного комплексов CP 24 показывают один пик на 681 нанометре, что указывает на то, что восстановленный комплекс правильно свернут. Восстановленный CP 24 и нативный комплекс также демонстрируют очень похожие круговые спектры харизмы. Остатки отдельных аминокислот, важные для координации различных пигментов, могут быть изменены для анализа свойств отдельных пигментов или оценки их вклада в функцию и стабильность комплекса.
Здесь показаны спектры поглощения дикого типа и мутировавшего CP 29. Зеленая линия показывает различия между двумя графиками При использовании этого метода, включая градиент SUSE, ультрацентрифугирование может быть выполнено за 24 часа, если оно выполнено правильно.
Related Videos
10:10
Related Videos
16.3K Views
08:04
Related Videos
12.7K Views
11:26
Related Videos
15.3K Views
13:52
Related Videos
13.4K Views
11:28
Related Videos
8.2K Views
12:25
Related Videos
11.4K Views
08:40
Related Videos
8.8K Views
07:01
Related Videos
10.8K Views
08:00
Related Videos
5K Views
12:13
Related Videos
13.8K Views