-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
Экстракорпоральное возобновлении деятельности светособирающих комплексов растений и зеле...
Экстракорпоральное возобновлении деятельности светособирающих комплексов растений и зеле...
JoVE Journal
Biology
This content is Free Access.
JoVE Journal Biology
In Vitro Reconstitution of Light-harvesting Complexes of Plants and Green Algae

Экстракорпоральное возобновлении деятельности светособирающих комплексов растений и зеленых водорослей

Full Text
19,027 Views
11:55 min
October 10, 2014

DOI: 10.3791/51852-v

Alberto Natali1, Laura M. Roy1, Roberta Croce1

1Department of Physics and Astronomy,VU University Amsterdam

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Этот протокол подробно описывает восстановление светособирающих комплексов in vitro. Эти интегральные мембранные белки координируют хлорофиллы и каротиноиды и отвечают за сбор света в высших растениях и зеленых водорослях.

Общая цель данного эксперимента заключается в воссоздании in vitro светособирающих пигментных белковых комплексов растений или водорослей. Это достигается за счет извлечения пигментов из листьев шпината или культур водорослей, а также чрезмерной экспрессии протеза APA в кишечной палочке. На втором этапе проте APA смешивают с пигментами для получения восстановленного комплекса.

Затем восстановленный пигментный белковый комплекс очищают от избытка пигментов и получают результаты развертки белка, которые демонстрируют схожие спектроскопические характеристики восстановленного пигментного белкового комплекса и нативного комплекса на основе спектров поглощения, флуоресцентных спектров и кругового деизма. Основным преимуществом данной процедуры является то, что она позволяет получить относительно большое количество пигментных белковых комплексов, а также манипулировать комплексами с использованием в мутировавшем типе белковых и пигментных смесей с различным составом. С помощью блендера гомогенизируйте горсть шпината, оставьте примерно 20 грамм в 100 миллилитрах буфера холодного помола на 20 секунд.

Отфильтруйте раствор через два слоя нейлоновой ткани с плохим диаметром 20 микрометров и центрифугируйте фильтрат при давлении 1 500 G в течение 10 минут. При четырех градусах по Цельсию. Снимите надосадочную жидкость и добавьте один миллилитр буфера для холодной стирки.

Суспендируйте гранулу, содержащую хлоропласты, мягкой кистью художника. Как только гранула будет ресуспендирована, добавьте 50 миллилитров промывки, буфера и центрифуги, раствор в 10 000 г на 10 минут. При четырех градусах Цельсия удалите надосадочную жидкость и аккуратно ресуспендируйте гранулу в 50 миллилитрах промывочной буферной центрифуги, растворе при 10 000 G в течение 10 минут при четырех градусах Цельсия, с этого момента полностью удалите надосадочную жидкость.

Эту процедуру необходимо выполнять в темное время суток. Чтобы избежать окисления пигмента, добавьте примерно 20 миллилитров 80% ацетона, буферизованного карбонатом натрия, чтобы извлечь пигменты, оставьте раствор на льду на 10 минут. Время от времени вихревая подошва клеточных компонентов путем центрифугирования при 12 000 G в течение 15 минут при четырех градусах Цельсия.

Общая экстракция пигмента должна привести к получению белой гранулы. Соберите снат в разделительную воронку. Добавьте 0,4 объема датилэфира.

Энергично встряхните и обязательно откройте клапаны, чтобы выпустить газ. Добавьте 0,8 объема пункта 33 моляра натрия хлорида и энергично перемешайте. Подождите примерно 10 минут, чтобы слои разделились.

Эфирная фаза сверху содержит извлеченные пигменты. Удалите и выбросьте прозрачную нижнюю фазу. Удалите эфир, перелив его с верхней части разделительной воронки в подходящую стеклянную емкость.

Высушите эфир, добавив ложку гранулированного безводного сульфата натрия. Взбейте раствор и дайте примерно пять минут, чтобы адсорбент впитал воду из эфира. Когда эфир достаточно высохнет.

Должно быть некоторое количество свободно плавающих кристаллов и не должно быть комкования сульфата натрия. Сцедите эфир в новую стеклянную емкость, оставив твердое вещество сульфата натрия после аликвоты пигментов, и высушите их в вакууме с вращающейся скоростью до полного испарения ацетона. Храните высушенные пигменты при температуре минус 80 градусов по Цельсию.

Извлечение кератиноида из шпината в этом видео не показано, но высушенные пигменты также хранятся при температуре минус 80 градусов по Цельсию. Светособирающий комплекс или БАК для восстановления экспрессировали и очищали от кишечной палочки в виде тел включения. Для успеха восстановления решающее значение имеет соотношение между пигментными белками и количеством используемого буфера.

Эту процедуру следует выполнять при слабом освещении. Ресуспендировать 800 микрограммов включений LHC в общей сложности 400 микролитров te. В двухмиллилитровую пробирку добавьте 400 микролитров двух x восстановителей, буфера и вихря.

Кратковременно добавьте 0,6 микролитра 14,8 молярного бета-мара запаса этанола CAPTA. Чтобы получить конечную концентрацию в 10 миллимоляров, нагрейте белок при температуре 98 градусов Цельсия в течение одной минуты. Вортись ненадолго и поместить при комнатной температуре на три минуты.

Ресуспендируйте 500 микрограммов общего количества высушенных пигментов хлорофилла, а также 80 микрограммов кератиноидных пигментов в 30 микролитрах 100% этанола путем энергичного вортексирования. На одну минуту. Вращайте смесь пигментов при температуре 15 800 G при четырех градусах Цельсия в течение примерно 30 секунд и убедитесь, что гранул нет сразу после отжима, медленно добавляйте смесь пигментов к охлажденному белку во время вортекса.

Будьте осторожны и не делайте вихри слишком энергично, так как белок может переполнить верхнюю часть трубки. Продолжайте делать вихрь в течение пяти-10 секунд, а затем положите трубку на мокрый лед. Добавьте 94 микролитра 20% октала, бета-D глюкозида или og, чтобы получить конечную концентрацию 2% Vortex на короткое время, и держите на льду в течение 10 минут, добавьте 90 микролитров двух моляров хлорида калия, чтобы получить конечную концентрацию от 150 до 200 микромоляров.

Ненадолго перемешайте и оставьте на льду на 20 минут. Вращайте при температуре 15, 800 GS при четырех градусах Цельсия в течение 10 минут. Перенесите натант SUP в 10-миллилитровую трубку, не потревожив гранулу.

Хранить натин в холоде и в защищенном от света месте. Начните эту процедуру с подготовки колонки с никелевым СРО объемом один миллилитр, как описано в тексте протокола. Добавьте три-четыре миллилитра OG-буфера к образцу белка и загрузите образец в колонку.

Промойте колонку пятью миллилитрами буфера OG, а затем двумя миллилитрами буфера для полоскания OG. Разбавьте связанный белок тремя миллилитрами буфера элу. Соберите зеленый эллу, который содержит восстановленный белок.

Градиент сахарозы готовится, как описано в тексте протокола, тщательно удаляется из верхней части градиента, в том же объеме, что и у зеленой фракции, указанной в столбце с никелевыми СРО. Медленно загрузите восстановленный образец сверху, стараясь не нарушить градиент. Поместите трубку и весы в вращающийся ротор ковша S SW 41 или SW 60 и вращайте в ультрацентрифуге при давлении 200 000 G при четырех градусах Цельсия в течение 18 часов с медленным ускорением и остановкой без перерывов.

Когда ультрацентрифуга будет готова, с помощью щипцов осторожно вынимайте градиент из держателя пробирки. Зеленая полоса — это дробь, которую нужно собрать. Спектр поглощения CP 24.

Восстановленный in vitro белок, связывающий хлорофилл AB, сравнивают со спектром нативного комплекса. Идентичные спектры указывают на практически идентичный состав и организацию пигмента. Качество восстановленного комплекса также можно оценить с помощью флуоресцентной спектроскопии.

Поскольку пигменты излучают флуоресценцию при возбуждении на разных длинах волн, хлорофилл А на 440 нанометрах хлорофилл B на 475 нанометрах и зилы на 500 нанометрах. Спектры флуоресцентного излучения восстановленного комплекса дикого типа CP 24 и нормализованные до максимума показывают эффективный перенос энергии от хлорофилла B и наполнителей XANTHE к хлорофиллу A. Присутствие хлорофилла B, не скоординированного с белком, можно распознать по дополнительному плечу около 650 нанометров. Присутствие свободного хлорофилла А приводит к дополнительному излучению около 675 нанометров.

Спектры флуоресцентного излучения на 475 нанометрах как восстановленного, так и нативного комплексов CP 24 показывают один пик на 681 нанометре, что указывает на то, что восстановленный комплекс правильно свернут. Восстановленный CP 24 и нативный комплекс также демонстрируют очень похожие круговые спектры харизмы. Остатки отдельных аминокислот, важные для координации различных пигментов, могут быть изменены для анализа свойств отдельных пигментов или оценки их вклада в функцию и стабильность комплекса.

Здесь показаны спектры поглощения дикого типа и мутировавшего CP 29. Зеленая линия показывает различия между двумя графиками При использовании этого метода, включая градиент SUSE, ультрацентрифугирование может быть выполнено за 24 часа, если оно выполнено правильно.

Explore More Videos

Биохимия выпуск 92 Восстановление Фотосинтез хлорофилл каротиноиды свет Сбор белка СЫатуйотопаз reinhardtii Arabidopsis THALIANA

Related Videos

Исследование тканей и органов конкретных Фитохром ответы с помощью FACS-помощь камерного типа Конкретные профилирования выражения в Arabidopsis thaliana

10:10

Исследование тканей и органов конкретных Фитохром ответы с помощью FACS-помощь камерного типа Конкретные профилирования выражения в Arabidopsis thaliana

Related Videos

16.3K Views

Новый подход к сравнительному анализу мультибелковых комплексов на основе 15 N Метаболический Маркировка и количественный Масс-спектрометрия

08:04

Новый подход к сравнительному анализу мультибелковых комплексов на основе 15 N Метаболический Маркировка и количественный Масс-спектрометрия

Related Videos

12.7K Views

Вода в масле: Новая система для сборки растворимых в воде Хлорофилл-связывающих белков с гидрофобными Пигменты

11:26

Вода в масле: Новая система для сборки растворимых в воде Хлорофилл-связывающих белков с гидрофобными Пигменты

Related Videos

15.3K Views

Изучение надмолекулярной организации фотосинтетических мембранах внутри Фриз-трещиноватых тканях листа с помощью крио-сканирующей электронной микроскопии

13:52

Изучение надмолекулярной организации фотосинтетических мембранах внутри Фриз-трещиноватых тканях листа с помощью крио-сканирующей электронной микроскопии

Related Videos

13.4K Views

Изоляция и включения светособирающего антенны от диатомовые водоросли Cyclotella Meneghiniana в липосомах с липидами тилакоидов

11:28

Изоляция и включения светособирающего антенны от диатомовые водоросли Cyclotella Meneghiniana в липосомах с липидами тилакоидов

Related Videos

8.2K Views

Изоляция физиологически активных тилакоидов и их использования в энергии зависимых белков транспорт анализов

12:25

Изоляция физиологически активных тилакоидов и их использования в энергии зависимых белков транспорт анализов

Related Videos

11.4K Views

Разделение шпинат тилакоидов белковых комплексов родной электрофорез геля Грин и группа характеристик с помощью подсчета Time-Correlated один фотон

08:40

Разделение шпинат тилакоидов белковых комплексов родной электрофорез геля Грин и группа характеристик с помощью подсчета Time-Correlated один фотон

Related Videos

8.8K Views

Очищение сродства хлоропласта Translocon белковых комплексов с помощью тега крана

07:01

Очищение сродства хлоропласта Translocon белковых комплексов с помощью тега крана

Related Videos

10.8K Views

Agrobacterium tumefaciens-опосредованная генная инженерия зеленых микроводорослей, Chlorella vulgaris

08:00

Agrobacterium tumefaciens-опосредованная генная инженерия зеленых микроводорослей, Chlorella vulgaris

Related Videos

5K Views

Одиночных молекул изображений ядерного транспорта

12:13

Одиночных молекул изображений ядерного транспорта

Related Videos

13.8K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code