-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Medicine
Создание Анатомически точного и воспроизводимого внутричерепного Ксенотрансплантаты человека опух...
Создание Анатомически точного и воспроизводимого внутричерепного Ксенотрансплантаты человека опух...
JoVE Journal
Medicine
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Medicine
Creating Anatomically Accurate and Reproducible Intracranial Xenografts of Human Brain Tumors

Создание Анатомически точного и воспроизводимого внутричерепного Ксенотрансплантаты человека опухолей головного мозга

Full Text
16,171 Views
11:14 min
September 24, 2014

DOI: 10.3791/52017-v

Angela M. Pierce1, Amy K. Keating1

1Department of Pediatrics,University of Colorado School of Medicine

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Мозг представляет собой уникальное место с качествами, которые не очень хорошо, представленных в пробирке или внематочной анализов. Ортотопическая мышиные модели с воспроизводимыми местоположения и роста характеристик может быть надежно создан с внутричерепных инъекций с использованием стереотаксической фиксации инструмента и шприцевой насос низкого давления.

Общая цель этой процедуры заключается в создании согласованной и воспроизводимой модели опухоли головного мозга человека, которая может быть использована для точного тестирования и сравнения новых терапевтических стратегий. Это достигается путем подготовки животного к операции и определения правильного места для инъекции. После его обнаружения в черепе просверливается отверстие и на нужную глубину опускается шприц

.

Чтобы добиться роста опухоли, клетки затем медленно вводят контролируемым образом, после чего следует отсроченное и постепенное извлечение иглы. В конечном счете, может быть разработана последовательная мышиная модель с гистопатологически сходным с человеческим состоянием роста и измерены темпы роста с помощью Lucci на основе визуализации in vivo. Точность этой техники жизненно важна для понимания новых терапевтических стратегий для опухолей головного мозга человека.

Вариабельная локализация инъекции опухоли может привести к изменениям в росте опухоли, которые обусловлены микроокружением, доставкой лекарств или другими факторами, которые сильно различаются в разных областях мозга. Визуальная демонстрация этого метода важна, потому что шаги, связанные с позиционированием мыши и локализацией места инъекции, требуют трехмерных манипуляций, которые нелегко описать в письменном или графическом формате. Для начала очистите и обеззаратьте мышь стереотаксической рамкой и всем остальным оборудованием, необходимым для проведения операции.

Использование оптимизированных для модели выбранной программы настроек, параметров впрыска и других переменных для работы шприцевого насоса. Далее расположите автоклавные хирургические инструменты в рабочей зоне, включают в себя не менее двух стоматологических бормашин диаметром 1,0 миллиметра для серийных процедур. Продезинфицируйте хирургические инструменты 70% этанолом, а затем в течение 30 секунд в стерилизаторе для бусин между каждым животным или в соответствии с вашими протоколами IACUC.

Наконец, соберите все необходимые медицинские принадлежности и одноразовые материалы Тонкий наконечник, перманентный маркер для маркировки черепа должен быть обеззаражен и предназначен для хирургического использования. После трипсина резус суспензируют клетки в PBS и гранулируют центрифугированием Резус. Суспендируйте клетки примерно в пяти миллилитрах свободной сыворотки dmem на 100-миллиметровую пластину.

Затем подсчитайте жизнеспособные клетки с помощью гемо, цитометра или автоматического счетчика клеток. После подсчета отрегулируйте плотность живых клеток, гранулируя клетки и суспензируя SF dmm. Храните клетки в охлажденном состоянии на льду или охлаждающем пакете, но не допускайте их замерзания.

Осторожно перемешайте, взмахнув пальцами, нанесите животному обезболивающее средство и убедитесь, что животное адекватно усыплено, проверив на пишущий рефлекс или отсутствие активности. После обезболивания накройте мышь марлевыми салфетками для тепла и регулярно следите за животным на протяжении всей процедуры. Далее расположите мышь в стереотаксической рамке.

Используя поддон и ушные планки, старайтесь, чтобы поверхность уха к глазу была как можно более горизонтальной. Наконец, смажьте глаза офтальмологической мазью и дважды очистите кожу между ушами и глазами, чередуя нанесение повидон-йода, антисептика и 70% этанола. После подкожного введения обезболивающего средства подтвердите, что животное полностью обезболито, проверив рефлекс защемления пальца ноги.

Непосредственно перед разрезом кожи сделайте небольшой разрез, чтобы обнажить БМА и место инъекции. Диагональный разрез от точки между осью средней линии и правым глазом к правому уху позволяет провести ось как к bgma, так и к месту инъекции. Втяните кожу и с помощью стерильного ватного тампона высушите поверхность черепа.

Промокните косточку другим тампоном, смоченным перекисью водорода. Чтобы визуализировать bgma, зафиксируйте пустой шприц с иглой в микропомпе и переместите наконечник прямо над bgma. Обнулите координаты на консоли выравнивания.

Переместите иглу на 2,5 миллиметра в сторону и на 1,5 миллиметра вперед с уважением. Торема. С помощью ручек управления на стереотаксическом блоке слегка приподнимите шприц и отметьте точное местоположение на черепе специальным наконечником из войлока. Ручка. Если наружная поверхность черепа больше не находится на уровне bgma в дорсальной плоскости, сбросьте дорсальные вентральные показания до нуля, чтобы убедиться в правильности глубины инъекции.

Просверлите небольшое отверстие в черепе с помощью ручной вращающейся дрели, оснащенной стерильным наконечником для зубов. Держите сверло под углом к черепу и очень аккуратно прикоснитесь кончиком к кости. Не стоит сверлить кость полностью.

Получается самая чистая инъекция с наименьшей травматичностью. При прокалывании черепа иглой шприца во время инъекции клеток удалите костную пыль ватным тампоном, смоченным в PBS или физрастворе. Верните шприц в насос и опустите иглу прямо вниз к отверстию бора.

Чтобы подтвердить местоположение, аккуратно перемешайте клеточную суспензию и наберите клетки в шприц. Используя контроллер насоса, избегайте образования пузырей и комочков и протрите иглу спиртовым тампоном. Чтобы удалить загрязняющие клетки на наружной поверхности, опустите иглу до уровня поверхности черепа.

Затем медленно опустите иглу. Проткните всю толщину черепа и проникните в мозг на глубину до четырех миллиметров вентрально в течение одной минуты, прежде чем медленно извлечь иглу на 3,5 миллиметра вентрально, подтвердите, что правильные параметры введены в контроллер насоса и нажмите на прогон. Остановка. Чтобы произвести автоинъекцию клеток, следите за работой шприца и убедитесь, что поршень движется в бочке.

Оставьте иглу на месте на одну-две минуты, прежде чем очень медленно извлекать иглу из ткани. Иглу следует извлекать в течение пяти минут. С помощью ватного тампона промокните область вокруг отверстия и оставьте края кожи открытыми, чтобы кость высохла.

Извлеките шприц из насоса и быстро прокачайте его стерильной водой и этанолом. Затем нанесите стерильный костный воск на отверстие для бора и с помощью деревянного конца стерильного ватного тампона нанесите воск на кость и внутрь нее. Если поверхность достаточно высушена, она должна прилипнуть После наложения швов на рану уменьшите изофтор до 0% и снимите мышь со стереотаксической установки.

Поместите животное на нагретую поверхность и наблюдайте до полного восстановления. Важно очистить все инструменты и оборудование с использованием 70% этанола и стерилизатора для шариков или провести дезинфекцию между каждым животным. За инъекционными мышами следует наблюдать в течение двух дней после процедуры на предмет признаков боли, инфекции или других осложнений.

Оцените мышей на наличие клинических признаков паралича заболевания, снижения активности, потери веса, судорог или общего заболевания в желаемое время. Точки после инъекции контролируйте развитие опухоли с помощью магнитно-резонансной томографии или систем визуализации in vivo. Эти взвешенные изображения МРТ сравнивают опухоль, полученную из клеток U 87, с опухолью, полученной из клеток U2 51.

Объемы опухоли, построенные во времени, показывают воспроизводимое окно развития и роста опухоли, которое согласуется во всех экспериментах. Трансдуцированные клетки GBM, введенные внутричерепно обнаженным мышам, показывают, что мышь слева была успешно инъецирована, и показывает очень сильный вокализованный сигнал в нужном месте. В то время как мышь справа демонстрирует неудачный результат от неправильного расположения инъекции или техники.

Размер опухоли оценивается по активности люцифер в интересующей области мозга и строится на графике с течением времени. Синяя линия соответствует мыши с успешной внутричерепной инъекцией, в то время как красная линия соответствует мыши со смещением опухолевых клеток в позвоночник после h и e, окрашивание опухоли из клеток U 87 GBM показывает область плотного опухолевого роста и прилегающую нормальную ткань мозга с микроскопической инвазией злокачественных клеток. Этот участок центра опухоли, полученный из клеток U2 51 GBM, очень точно повторяет причудливую гистопатологию с многоядерными злокачественными клетками, наблюдаемую у типичного человека GBM.

При попытке проведения этой процедуры важно помнить, что воспроизводимость модели опухоли зависит от точного и безопасного положения головы мыши и последовательной локализации места инъекции. Кроме того, важна постепенная скорость и постоянное давление впрыска. Этот метод позволяет исследователям в области нейроонкологии исследовать новые терапевтические стратегии для опухолей головного мозга человека, устраняя при этом некоторую вариабельность, которая усугубляется неточной локализацией инъекции клеток опухоли головного мозга.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Медицина выпуск 91 внутричерепное глиобластома мыши ортотопическая опухоль головного мозга стереотаксическая микронасос инъекции мозг

Related Videos

Создание Внутричерепное ксенотрансплантаты опухолей мозга с последующим анализом роста опухоли и ответ на терапию использования биолюминесценции изображений

11:09

Создание Внутричерепное ксенотрансплантаты опухолей мозга с последующим анализом роста опухоли и ответ на терапию использования биолюминесценции изображений

Related Videos

40.3K Views

Простой метод Винт Руководство по Внутричерепное ксенотрансплантата Исследования на мышах

08:11

Простой метод Винт Руководство по Внутричерепное ксенотрансплантата Исследования на мышах

Related Videos

23.6K Views

Стереотаксическая имплантация и внутричерепных В естественных условиях Bioluminescent Визуализация опухолевых ксенотрансплантатов в системе мышиной модели глиобластомы

10:52

Стереотаксическая имплантация и внутричерепных В естественных условиях Bioluminescent Визуализация опухолевых ксенотрансплантатов в системе мышиной модели глиобластомы

Related Videos

26.4K Views

Первичная ортопедическая Глиома Ксенотрансплантирует резюмировать инфильтративный рост и изоцитрат дегидрогеназы I Мутация

09:43

Первичная ортопедическая Глиома Ксенотрансплантирует резюмировать инфильтративный рост и изоцитрат дегидрогеназы I Мутация

Related Videos

8.4K Views

Ортотопическая Глиобластома мышь Модель Поддержание Мозг паренхимы физических ограничений и подходит для прижизненной Двухфотонное микроскопии

09:52

Ортотопическая Глиобластома мышь Модель Поддержание Мозг паренхимы физических ограничений и подходит для прижизненной Двухфотонное микроскопии

Related Videos

21.1K Views

Моделирование Астроцитома Патогенез In Vitro И В Vivo Использование кортикальной астроциты или нервные стволовые клетки из условного, генной инженерии мышей

10:13

Моделирование Астроцитома Патогенез In Vitro И В Vivo Использование кортикальной астроциты или нервные стволовые клетки из условного, генной инженерии мышей

Related Videos

13.9K Views

Интраназальная доставка терапевтических стволовых клеток в глиобластому в модели мыши

09:57

Интраназальная доставка терапевтических стволовых клеток в глиобластому в модели мыши

Related Videos

12.7K Views

Стереотаксическая приемных передачи цитотоксических иммунокомпетентных клеток в мышиных моделях ксенотрасплантатов глиобластомы мультиформной ортотопическая человека

11:15

Стереотаксическая приемных передачи цитотоксических иммунокомпетентных клеток в мышиных моделях ксенотрасплантатов глиобластомы мультиформной ортотопическая человека

Related Videos

8.4K Views

Моделирование метастазов мозга через внутричерепную инъекцию и магнитно-резонансную томографию

06:44

Моделирование метастазов мозга через внутричерепную инъекцию и магнитно-резонансную томографию

Related Videos

8K Views

Трансляционные ортотопические модели мультиформной глиобластомы

07:37

Трансляционные ортотопические модели мультиформной глиобластомы

Related Videos

3.6K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code