RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
ru_RU
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/52017-v
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Мозг представляет собой уникальное место с качествами, которые не очень хорошо, представленных в пробирке или внематочной анализов. Ортотопическая мышиные модели с воспроизводимыми местоположения и роста характеристик может быть надежно создан с внутричерепных инъекций с использованием стереотаксической фиксации инструмента и шприцевой насос низкого давления.
Общая цель этой процедуры заключается в создании согласованной и воспроизводимой модели опухоли головного мозга человека, которая может быть использована для точного тестирования и сравнения новых терапевтических стратегий. Это достигается путем подготовки животного к операции и определения правильного места для инъекции. После его обнаружения в черепе просверливается отверстие и на нужную глубину опускается шприц
.Чтобы добиться роста опухоли, клетки затем медленно вводят контролируемым образом, после чего следует отсроченное и постепенное извлечение иглы. В конечном счете, может быть разработана последовательная мышиная модель с гистопатологически сходным с человеческим состоянием роста и измерены темпы роста с помощью Lucci на основе визуализации in vivo. Точность этой техники жизненно важна для понимания новых терапевтических стратегий для опухолей головного мозга человека.
Вариабельная локализация инъекции опухоли может привести к изменениям в росте опухоли, которые обусловлены микроокружением, доставкой лекарств или другими факторами, которые сильно различаются в разных областях мозга. Визуальная демонстрация этого метода важна, потому что шаги, связанные с позиционированием мыши и локализацией места инъекции, требуют трехмерных манипуляций, которые нелегко описать в письменном или графическом формате. Для начала очистите и обеззаратьте мышь стереотаксической рамкой и всем остальным оборудованием, необходимым для проведения операции.
Использование оптимизированных для модели выбранной программы настроек, параметров впрыска и других переменных для работы шприцевого насоса. Далее расположите автоклавные хирургические инструменты в рабочей зоне, включают в себя не менее двух стоматологических бормашин диаметром 1,0 миллиметра для серийных процедур. Продезинфицируйте хирургические инструменты 70% этанолом, а затем в течение 30 секунд в стерилизаторе для бусин между каждым животным или в соответствии с вашими протоколами IACUC.
Наконец, соберите все необходимые медицинские принадлежности и одноразовые материалы Тонкий наконечник, перманентный маркер для маркировки черепа должен быть обеззаражен и предназначен для хирургического использования. После трипсина резус суспензируют клетки в PBS и гранулируют центрифугированием Резус. Суспендируйте клетки примерно в пяти миллилитрах свободной сыворотки dmem на 100-миллиметровую пластину.
Затем подсчитайте жизнеспособные клетки с помощью гемо, цитометра или автоматического счетчика клеток. После подсчета отрегулируйте плотность живых клеток, гранулируя клетки и суспензируя SF dmm. Храните клетки в охлажденном состоянии на льду или охлаждающем пакете, но не допускайте их замерзания.
Осторожно перемешайте, взмахнув пальцами, нанесите животному обезболивающее средство и убедитесь, что животное адекватно усыплено, проверив на пишущий рефлекс или отсутствие активности. После обезболивания накройте мышь марлевыми салфетками для тепла и регулярно следите за животным на протяжении всей процедуры. Далее расположите мышь в стереотаксической рамке.
Используя поддон и ушные планки, старайтесь, чтобы поверхность уха к глазу была как можно более горизонтальной. Наконец, смажьте глаза офтальмологической мазью и дважды очистите кожу между ушами и глазами, чередуя нанесение повидон-йода, антисептика и 70% этанола. После подкожного введения обезболивающего средства подтвердите, что животное полностью обезболито, проверив рефлекс защемления пальца ноги.
Непосредственно перед разрезом кожи сделайте небольшой разрез, чтобы обнажить БМА и место инъекции. Диагональный разрез от точки между осью средней линии и правым глазом к правому уху позволяет провести ось как к bgma, так и к месту инъекции. Втяните кожу и с помощью стерильного ватного тампона высушите поверхность черепа.
Промокните косточку другим тампоном, смоченным перекисью водорода. Чтобы визуализировать bgma, зафиксируйте пустой шприц с иглой в микропомпе и переместите наконечник прямо над bgma. Обнулите координаты на консоли выравнивания.
Переместите иглу на 2,5 миллиметра в сторону и на 1,5 миллиметра вперед с уважением. Торема. С помощью ручек управления на стереотаксическом блоке слегка приподнимите шприц и отметьте точное местоположение на черепе специальным наконечником из войлока. Ручка. Если наружная поверхность черепа больше не находится на уровне bgma в дорсальной плоскости, сбросьте дорсальные вентральные показания до нуля, чтобы убедиться в правильности глубины инъекции.
Просверлите небольшое отверстие в черепе с помощью ручной вращающейся дрели, оснащенной стерильным наконечником для зубов. Держите сверло под углом к черепу и очень аккуратно прикоснитесь кончиком к кости. Не стоит сверлить кость полностью.
Получается самая чистая инъекция с наименьшей травматичностью. При прокалывании черепа иглой шприца во время инъекции клеток удалите костную пыль ватным тампоном, смоченным в PBS или физрастворе. Верните шприц в насос и опустите иглу прямо вниз к отверстию бора.
Чтобы подтвердить местоположение, аккуратно перемешайте клеточную суспензию и наберите клетки в шприц. Используя контроллер насоса, избегайте образования пузырей и комочков и протрите иглу спиртовым тампоном. Чтобы удалить загрязняющие клетки на наружной поверхности, опустите иглу до уровня поверхности черепа.
Затем медленно опустите иглу. Проткните всю толщину черепа и проникните в мозг на глубину до четырех миллиметров вентрально в течение одной минуты, прежде чем медленно извлечь иглу на 3,5 миллиметра вентрально, подтвердите, что правильные параметры введены в контроллер насоса и нажмите на прогон. Остановка. Чтобы произвести автоинъекцию клеток, следите за работой шприца и убедитесь, что поршень движется в бочке.
Оставьте иглу на месте на одну-две минуты, прежде чем очень медленно извлекать иглу из ткани. Иглу следует извлекать в течение пяти минут. С помощью ватного тампона промокните область вокруг отверстия и оставьте края кожи открытыми, чтобы кость высохла.
Извлеките шприц из насоса и быстро прокачайте его стерильной водой и этанолом. Затем нанесите стерильный костный воск на отверстие для бора и с помощью деревянного конца стерильного ватного тампона нанесите воск на кость и внутрь нее. Если поверхность достаточно высушена, она должна прилипнуть После наложения швов на рану уменьшите изофтор до 0% и снимите мышь со стереотаксической установки.
Поместите животное на нагретую поверхность и наблюдайте до полного восстановления. Важно очистить все инструменты и оборудование с использованием 70% этанола и стерилизатора для шариков или провести дезинфекцию между каждым животным. За инъекционными мышами следует наблюдать в течение двух дней после процедуры на предмет признаков боли, инфекции или других осложнений.
Оцените мышей на наличие клинических признаков паралича заболевания, снижения активности, потери веса, судорог или общего заболевания в желаемое время. Точки после инъекции контролируйте развитие опухоли с помощью магнитно-резонансной томографии или систем визуализации in vivo. Эти взвешенные изображения МРТ сравнивают опухоль, полученную из клеток U 87, с опухолью, полученной из клеток U2 51.
Объемы опухоли, построенные во времени, показывают воспроизводимое окно развития и роста опухоли, которое согласуется во всех экспериментах. Трансдуцированные клетки GBM, введенные внутричерепно обнаженным мышам, показывают, что мышь слева была успешно инъецирована, и показывает очень сильный вокализованный сигнал в нужном месте. В то время как мышь справа демонстрирует неудачный результат от неправильного расположения инъекции или техники.
Размер опухоли оценивается по активности люцифер в интересующей области мозга и строится на графике с течением времени. Синяя линия соответствует мыши с успешной внутричерепной инъекцией, в то время как красная линия соответствует мыши со смещением опухолевых клеток в позвоночник после h и e, окрашивание опухоли из клеток U 87 GBM показывает область плотного опухолевого роста и прилегающую нормальную ткань мозга с микроскопической инвазией злокачественных клеток. Этот участок центра опухоли, полученный из клеток U2 51 GBM, очень точно повторяет причудливую гистопатологию с многоядерными злокачественными клетками, наблюдаемую у типичного человека GBM.
При попытке проведения этой процедуры важно помнить, что воспроизводимость модели опухоли зависит от точного и безопасного положения головы мыши и последовательной локализации места инъекции. Кроме того, важна постепенная скорость и постоянное давление впрыска. Этот метод позволяет исследователям в области нейроонкологии исследовать новые терапевтические стратегии для опухолей головного мозга человека, устраняя при этом некоторую вариабельность, которая усугубляется неточной локализацией инъекции клеток опухоли головного мозга.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Related Videos
11:09
Related Videos
40.3K Views
08:11
Related Videos
23.6K Views
10:52
Related Videos
26.4K Views
09:43
Related Videos
8.4K Views
09:52
Related Videos
21.1K Views
10:13
Related Videos
13.9K Views
09:57
Related Videos
12.7K Views
11:15
Related Videos
8.4K Views
06:44
Related Videos
8K Views
07:37
Related Videos
3.6K Views