7 октября 2014 г.
Тонкая кишка часто подвергаются воздействию токсинов, которые могут повлиять приток крови и отрицательно повлиять усвоение питательных веществ. Использование multimyograph и брыжеечной артерии и вены изолирует, соединения или токсины, представляющие интерес может пройти обследование на вазоактивности.
Общая цель этой процедуры состоит в том, чтобы изолировать поперечные сечения брыжеечных артерий и вен крупного рогатого скота в мультиметровом графике, чтобы обеспечить скрининг экспериментальных соединений на их вазоактивность. Это достигается путем предварительного сбора образца брыжеечной ткани у животного. На втором этапе образец очищается и сосуды разрезаются.
Далее срезы монтируются и уравновешиваются на миографте. На заключительном этапе изолированные сосуды подвергаются воздействию интересующих соединений. В конечном счете, этот биоанализ артерий и вен может быть использован для оценки вазоактивности соединений и их влияния на кровоток в брыжеечных кровеносных сосудах крупного рогатого скота.
Основное преимущество этого метода по сравнению с существующими методами, такими как измерение кровотока in vivo, заключается в том, что с помощью этого метода ткань одного животного может подвергаться воздействию нескольких соединений одновременно. Хотя этот метод может дать представление об очень специфических синдромах животных, которые могут вызывать сужение сосудов, таких как овсяница, токсикоз или эрготизм, он также может быть применен к другим сценариям, которые могут представлять интерес для исследователей, таким как разрабатываемые фармацевтические препараты или натуральные продукты. Кроме того, его также можно применять не только к сосудистой сети крупного рогатого скота, но и к сосудистой сети любого другого вида млекопитающих.
После удаления кровеносных сосудов из брыжеечной ткани с помощью пары щипцов поместите образец ткани на режущую поверхность и частично погрузите его в ледяной буфер из кребса. Затем с помощью ювелирных щипцов номер пять, щипцов и шума ножницы Iris аккуратно рассекают жир и соединительные ткани, окружающие сосуды. После отделения артерии и вены определите отверстие сосуда на одном конце разреза и осторожно захватите щипцами фасцию, окружающую сосуд.
Затем просуньте кончик ножниц под приподнятую фасцию, чтобы сделать разрез ножницами параллельно сосуду. После первоначального разреза разрежьте сосуд с любой стороны, чтобы еще больше отделить жир и соединительные ткани, а также очистить сосуд. Поместите очищенные кровеносные сосуды в свежую пробирку со световым буфером Кребса Хенцеля и храните пробирку при температуре четыре градуса Цельсия до 24 часов.
Когда все будет готово, используйте тканевый срез для получения последовательных поперечных сечений интересующего сосуда на желаемое количество двухмиллиметровых срезов, а затем исследуйте каждый срез при 12,5-кратном увеличении, чтобы убедиться, что каждый образец не имеет аномалий, ответвлений, клапанов или поверхностных повреждений, полученных в процессе вскрытия и очистки. Допустимые нарезанные участки сосуда хранят в световом буфере Кребса Хенцеля при температуре четыре градуса Цельсия в течение 30 минут. Затем аккуратно вставьте опоры через просвет каждого образца и используйте микропозиционер на миографе, чтобы постепенно увеличивать натяжение для крепления сосуда на миотрансплантате.
Следите за тем, чтобы сосуды не растягивались выше двух-трех граммов. Как только все камеры будут закрыты, пропылесосьте буфер из каждой камеры и наполните их пятью миллилитрами свежего буфера. После того как все участки сосуда уравновешиваются в течение 1,5 часов для достижения стабильного напряжения покоя в один грамм при 500 микролитрах 1,32 моляра хлорида калия до 0,12 молярной конечной концентрации на 5,5 миллилитр раствора, купают сосуд.
Не регулируйте напряжение вручную, так как максимальная реакция на хлорид калия будет использована для нормализации данных обработки, замените раствор на свежий световой буфер Кребса Хенцеля с интервалом в 15 минут, пока напряжение не вернется к исходному значению в один грамм. Как только напряжение вернется к исходному уровню, добавьте стандарты в 25 микролитровых аликвотах в каждую камеру в соответствии с протоколом эксперимента. Когда последний стандарт будет добавлен, запустите девятиминутный таймер.
В конце инкубации удалите из камер содержащий обработку буфер и добавьте в каждую камеру по пять миллилитров свежего буфера. Затем запустите 2,5-минутный таймер после завершения, повторите это 2,5-минутное полоскание. Второй раз по окончании второго полоскания отсасывайте камеры.
Затем, добавив новый буфер еще раз, запустите минутный таймер, чтобы отсчитывать время до начала второго стандартного издания. Как видно из проиллюстрированных здесь девятиминутных инкубационных периодов, наблюдается постепенное увеличение реакции на стандарты, что с увеличением концентраций обработки добавление хлорида калия в конце эксперимента является существенным, поскольку оно подтверждает жизнеспособность ткани. Этот биоанализ может быть использован для оценки вазоактивности экспериментальных соединений на кровеносных сосудах, которые поставляют питательные вещества в тонкую кишку, а также на кровеносных сосудах, которые выводят абсорбированные питательные вещества.
Например, в этом эксперименте не наблюдалось различий в артериальных или венозных сократительных реакциях после пяти сеансов приема гидрокситриптамина. И наоборот, сократительная реакция брыжеечной вены на возрастающие концентрации норадреналина была выше, чем у брыжеечной артерии. После этой процедуры метод может быть дополнительно модифицирован для включения в буфер агонистов или антагонистов, которые представляют особый интерес для исследователя.
Это позволило бы исследователю лучше понять участие очень специфических рецепторов и механизмы сосудистых реакций, наблюдаемых во время эксперимента с мио. После просмотра этого видео у вас должно сложиться хорошее представление о том, как собирать, обрабатывать и изолировать кровеносные сосуды. Для моего эксперимента.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
Данное исследование посвящено выделению брыжеечных артерий и вен быка для оценки вазоактивности различных соединений. С помощью мультимиографа исследователи могут оценить влияние этих соединений на кровоток и абсорбцию питательных веществ.
Данный биоанализ in vitro позволяет проводить раннюю оценку влияния соединений на сосудистый тонус мезентериальной артерии и вены быка, что способствует валидации мишеней и снижению рисков при изучении механизмов в гастроинтестинальной фармакологии. Благодаря выделению сосудистой сети из одного животного и одновременному тестированию нескольких соединений, этот метод повышает прогностическую достоверность и снижает зависимость от моделей in vivo на этапе идентификации ведущих соединений. Данный подход имеет трансляционную ценность для оценки вазоактивных рисков или терапевтических кандидатов, влияющих на кровоток в кишечнике и абсорбцию питательных веществ.
Данный биоанализ вписывается в континуум разработки лекарственных средств — от подтверждения взаимодействия с мишенью до идентификации ведущих соединений, обеспечивая функциональный считываемый результат, который связывает молекулярную активность с сосудистыми ответами на уровне тканей в физиологически релевантном контексте.