November 9th, 2014
Цель этого метода - позволить исследователям выполнять диссекцию, иммуноокрашивание и монтаж куколочных глазных дисков у Drosophila melanogaster любого возраста.
Добро пожаловать на вскрытие межпозвоночного диска зрачка глаза и монтаж дрозофилы меланогастер. Следует выбирать куколку с соответствующей степенью БГ. Рассечение начинается с прокалывания зрачкового корпуса и извлечения куколки из корпуса.
Надрез делается по диагонали середины грудной клетки в области куколки. После разрезания куколки мозг и IIS будут изолированы и обработаны перед установкой IIS. Для микроскопии начинается процесс вскрытия и соответствующего возраста выбирается куколка.
Поместите куколку в большую каплю PBS на препарирующую тарелку. Лучше всего ориентировать куколку крючками для рта вниз. Это крючки для рта, обращенные к крючкам для рта вниз.
Аккуратно обхватите куколку одной парой щипцов. Будьте осторожны, чтобы не выдавить развивающуюся куколку внутрь зрачкового корпуса слишком сильно с помощью острых щипцов. Проткните корпус зрачка и позвольте четырем ступеням разойтись, чтобы оторвать конец.
Протяните руку внутрь и вытащите развивающуюся куколку из только что созданной ямы. Затем возьмите ножницы и разрежьте куколку примерно до середины грудной клетки. Сделайте разрез по диагонали.
Тогда лучше всего удалить мусор или перенести ПУ вперед на новую каплю PBS. Очистку можно проводить с помощью трубки воздуходувки для дозатора, а при необходимости следует добавлять дополнительную PBS, стараясь не допустить обезвоживания. Далее надежно захватите верхнюю часть головки зрачка кутикулой с помощью щипцов.
Убедитесь, что вы не захватываете какую-либо ткань внутри кутикулы кончиком трубки воздуходувки. Осторожно надавите на зрачок, чтобы выдавить мозг и прикрепить глазной диск из зрачка. Чтобы помочь в этом процессе, используйте PBS в трубке воздуходувки, чтобы аккуратно выдуть мусор, как показано здесь, из корпуса головки, чтобы обеспечить четкое разделение и идентификацию диска мозга и I, продолжайте этот процесс проталкивания и продувания по мере необходимости до тех пор, пока мозг и диски I не будут отделены от окружающих тканей и легко идентифицированы. уже начался, и I дисс имеет легкий цвет.
Глазные диссы обведены красным цветом, а мозг выделен между ними. При большем увеличении каждый I диск может быть легко идентифицирован. Опять же, I-образные диски обведены красным цветом с мозгом между ними.
Мозг и внутримышечные диски должны оставаться очищенными и отделенными от оставшейся ткани с помощью щипцов и воздуходувной трубки оптимальным образом, глазной диск и мозг должны оставаться прикрепленными к кутикуле головы, чтобы он мог выступать в качестве ручки для щипцов для будущих манипуляций. Несмотря на то, что в процессе выдувания и надавливания обычно происходит смещение диска мозга и глаза из кутикулы головы. После тщательной изоляции I диса и головной мозг аккуратно помещают ткань в фиксированный раствор.
Первоначально позвольте I-образному диску плавать на верхней части фиксатора, чтобы он не рухнул сам по себе и не зафиксировался В закрытой ориентации лучше всего рассечь I dis и позволить им плавать на фиксации. Они остаются плавающими, пока следующий набор дисков I не рассекается, а затем погружаются в фиксацию после фиксации диска I. Они обрабатываются по мере необходимости, например, для иммуноокрашивания, а затем устанавливаются на предметное стекло для визуализации.
Здесь зафиксированы зрачки I дисков с мозгом, все еще прикрепленным к большой капле PBS. Монтаж и глицерин сделать очень сложно, хотя мы успешно смонтировали iis и 50% глицерин и PBS. Если вы монтируете в PBS, обязательно избегайте обезвоживания.
Обратите внимание, что кутикула головы была удалена. Красным цветом обведен каждый I диск. Мозг выделяется между ними.
Возьмите острые щипцы и разорвите связь между глазным диском и мозгом. Это достигается путем удержания мозга и размещения острых щипцов в месте соединения здесь. Это может быть очень сложно.
Важно использовать острые щипцы, потому что они значительно облегчают этот процесс. Также можно сделать это разделение с помощью тонкой рассекающей иглы, как это видно. Иногда легче оторвать мозг, стабилизируя глазной диск в месте соединения.
На этом глазном диске осталось довольно много посторонней ткани, которая не должна влиять на визуализацию глазного диска, если I-образный диск установлен на предметном стекле микроскопа этой стороной вверх. Это позволяет сделать апикальную поверхность диска I плоской на предметном стекле микроскопа. Мы установили, что дальнейшее удаление этой ткани обычно приводит к повреждению тканей I диска.
Поэтому предпочтительно оставить эту ткань и избегать ее на стадии визуализации. Другой метод удаления мозга включает в себя прикрепление глазного диска к месту соединения либо иглой, либо острыми щипцами, как показано здесь, а затем вытягивание мозга. Эта отслойка была намного чище, на I-образном диске оставалось меньше ткани.
Когда вы закончите подготовку всех дисков I, выровняйте их в ряд так, чтобы оптическая дорожка была направлена вверх. Снимите PBS и замените его защитным экраном VTA или другим монтажным материалом и закройте их защитным колпачком. Теперь диски I уровня готовы к визуализации с помощью описанных здесь методов, а также подробного протокола иммуноокрашивания.
В рукописи I диск может быть визуализирован с помощью конфокальной микроскопии для определения морфологических характеристик, как показано здесь с помощью окрашивания фосфотирозином, что выявляет апикальную морфологию омельных клеток в I диске. Другие антитела и генетические методы могут быть использованы для идентификации клеточных трубок и паттернов экспрессии, как показано здесь для экспрессии разрезанного транскрипционного фактора в колбочках диска I. Это видео представляет собой ремастеринг обучающих видеороликов, которые были созданы для обучения студентов бакалавриата этой технике.
Многие из наших учеников были успешно обучены этой технике с помощью этого видео, и мы надеемся, что оно поможет и вам. Мы желаем вам удачи в ваших экспериментах и надеемся, что эта методика принесет вам пользу.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Эта статья описывает методику для вскрытия, иммуногистохимического окрашивания и монтирования глазных дисков куколок из Drosophila melanogaster. Процесс начинается с выбора куколки соответствующего возраста и включает в себя тщательное вскрытие для изоляции необходимых компонентов для дальнейшего анализа.
Dissection and mounting of Drosophila pupal eye discs enables high-resolution visualization of cellular architecture and protein expression in a genetically tractable model system. This approach supports target validation and mechanistic de-risking in early discovery by providing quantitative, reproducible readouts of developmental processes. The technique enhances predictive confidence for pathway interrogation and phenotypic screening in neurobiology and genetics research.
The method integrates into early discovery workflows by providing biologically relevant, quantifiable outputs for hypothesis testing and pathway analysis.