RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
ru_RU
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/52861-v
Dibash K. Das1,2, Michelle K. Naidoo1, Adeodat Ilboudo1, Pascal DuBois1, Victoria Durojaiye1, Chen Liu3, Olorunseun O. Ogunwobi1,2
1Department of Biological Sciences,Hunter College of The City University of New York, 2Departments of Biology and Biochemistry,The Graduate Center of The City University of New York, 3Department of Pathology, Immunology, and Laboratory Medicine,University of Florida
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Было показано, что циркулирующие опухолевые клетки (ЦОК) играют важную роль в метастазировании опухоли. В данной работе описан способ выделения и размножения ЦОК из цельной крови модели метастазирования гепатоцеллюлярной карциномы (ГЦК) сингенной опухоли мыши.
Общая цель этой процедуры заключается в выделении и размножении циркулирующих опухолевых клеток из цельной крови сингенной модели опухоли мыши с метастазированием гепатоцеллюлярной карциномы. Это достигается путем центрифугирования, сбора цельной крови у мышей и выделения охристой шерсти. Затем эритроциты в охристой оболочке лизируются и циркулирующие опухолевые клетки собираются в гранулу.
Затем клетки промывают, суспензируют в полной питательной среде и размножают в клеточной культуре. Быстро растущие опухолевые клетки остаются жизнеспособными благодаря многочисленным проходам и могут быть проверены с помощью стандартных методов молекулярной диагностики. Важность выделения циркулирующих опухолевых клеток с помощью нашей методики заключается в том, что она обеспечивает воспроизводимую модель, которая может быть оптимизирована для потенциального использования в клинических условиях.
Вместе со мной эту процедуру будет демонстрировать Мишель Наду, студентка бакалавриата из нашей лаборатории «Начать сбор урожая». Цельная кровь из модели опухоли Ciea Kamau с метастазированием гепатоцеллюлярной карциномы, как описано в отдельном J вертикальной центрифуги. Собирают цельную кровь в 1,167 раза G в течение пяти минут при комнатной температуре.
После разделения на слои осторожно удалите верхний слой плазмы и перенесите его в отдельную 1,5-миллилитровую пробирку без рогена для дальнейших экспериментов, таких как обнаружение бесклеточных нуклеиновых кислот. Затем перенесите слой кода Баффи в отдельную 1,5-миллилитровую бесплатную пробирку ROGEN для подготовки к лизису эритроцитов. Это необходимо для удаления остаточных эритроцитов в слое шерсти Баффи до выделения циркулирующих опухолевых клеток.
Начните с приготовления одного литра раствора буфера для лизиса эритроцитов с конечной концентрацией 155 миллимоляров хлорида аммония и 10 миллимоляров трисса. Отрегулируйте pH раствора до 7,5. Возьмите из запаса примерно два-четыре миллилитра аликвоты, один литр буферной смеси для лизиса эритроцитов.
Затем добавьте один миллилитр буфера для лизиса эритроцитов в пробирку, содержащую собранную охристую шерсть. Перемешайте содержимое пробирки, перевернув ее несколько раз. Затем инкубируйте трубку в течение пяти минут при комнатной температуре на скамейке.
Далее центрифугируйте смешанное содержимое в течение пяти минут. При 1, 167 умножении G после центрифугирования получится белесая гранула. Медленно и осторожно выбросьте красноватый супернат в 10% отбеливателя, не нарушая гранулы.
Выбросив надосадочную жидкость, промойте белесую гранулу в одном миллилитре PBS. Затем снова гранулируют клетки и повторно суспендируют их в полной питательной среде. Поместите ресуспендированные клетки в чашку для клеточной культуры и инкубируйте клетки при температуре 37 градусов Цельсия во влажном инкубаторе с воздухом и 5% углекислым газом.
Меняйте среду для культивирования клеток каждые два-три дня. Через пять-семь дней циркулирующие опухолевые клетки прилипают к чашке для клеточной культуры и начинают размножаться. Для того, чтобы убедиться в правильности выделения циркулирующих опухолевых клеток гепатоцеллюлярной карциномы.
Выполните ПЦР для определенного сегмента гена бета-глобина мыши, как описано и подтверждено Стю. Затем иммуноокрашивают клетки антителом, специфичным к гепатоцитарному специфическому маркеру. Циклический МП МП связывает белок три типа три с использованием стандартных методов, показанных здесь, являются репрезентативными изображениями циркулирующих опухолевых клеток от двух отдельных мышей.
В культуре из ортотопической сингенной мышиной модели гепатоцеллюлярной карциномы. Метастазирующие опухолевые клетки прилипают к чашке и быстро размножаются. Они могут быть расширены за пределы 25 проходов и выдерживать повторные циклы замораживания и оттаивания.
Так что после просмотра этого видео у вас должно сложиться хорошее понимание того, как выделять и размножать кольцевые опухолевые клетки, которые жизнеспособны, а также характеризовать их как молекулярно, так и функционально.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Related Videos
04:08
Related Videos
5K Views
03:50
Related Videos
1.9K Views
06:31
Related Videos
16.4K Views
05:06
Related Videos
12.7K Views
10:15
Related Videos
11.6K Views
08:03
Related Videos
14.5K Views
06:19
Related Videos
10.6K Views
07:39
Related Videos
9.8K Views
05:17
Related Videos
9K Views
09:21
Related Videos
7.5K Views