-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Селективный Истощение микроглии от мозжечка ЗК культур, используя L-лейцина
Селективный Истощение микроглии от мозжечка ЗК культур, используя L-лейцина
JoVE Journal
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
Selective Depletion of Microglia from Cerebellar Granule Cell Cultures Using L-leucine Methyl Ester

Селективный Истощение микроглии от мозжечка ЗК культур, используя L-лейцина

Full Text
8,820 Views
08:10 min
July 7, 2015

DOI: 10.3791/52983-v

Joseph Jebelli*1, Thomas Piers*2, Jennifer Pocock3

1Department of Neurology,University of Washington, 2Therapeutic Innovation Group, School of Life and Medical Sciences,University College London, 3Department of Neuroinflammation,University College London

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Summary

Микроглия может влиять на нейроны и другие глии в культуре с помощью различных неклеточных автономных механизмов. В этой статье мы представляем протокол селективного истощения микроглии из первичных нейронных культур. Этот метод имеет потенциал для выяснения роли микроглиально-нейронных взаимодействий с последствиями для нейродегенеративных состояний, где нейровоспаление является отличительной чертой.

Transcript

Общая цель этой процедуры заключается в избирательном удалении микроглиальных клеток из культур гранулярных клеток селла. Это достигается путем предварительного культивирования популяции cgc и хранения их в инкубаторе при температуре 37 градусов Цельсия с 6% углекислого газа. Вторым шагом является получение раствора LME в среде MEM с получением конечной концентрации 150 миллимолярных LME.

Следующую половину МЭМ-среды из культур CGC удаляют и оставляют в инкубаторе, а затем культуры CGC заменяют равным объемом среды LME, содержащей MEM, и помещают в инкубатор при температуре 37 градусов Цельсия с 6% углекислого газа на один час. Заключительным этапом является двукратная промывка культур CGC свежим предварительным прогреванием. MEM средний.

Замените задержанную питательную среду таким же объемом свежей, среды, а затем верните клетки в инкубатор на 24 часа перед любой дальнейшей обработкой. В конечном счете, иммунохимия и флуоресцентная микроскопия используются для того, чтобы показать специфическое истощение клеток микроглии из культур гранулярных клеток мозжечка. Этот метод может помочь ответить на ключевые вопросы в области нейробиологии, например, какое влияние микроглия оказывает на нейроны при различных условиях и какое значение эти эффекты имеют для нашего понимания нейродегенеративных расстройств, таких как болезнь Альцгеймера и Паркинсона.

Как правило, люди, плохо знакомые с этой техникой, испытывают трудности, потому что работа с первичными культурами требует точности и скорости. Начните эту процедуру со сбора мозжечка от четырех до семи дней крысят. Поместите их сразу в чашку Петри, содержащую пять миллилитров раствора А на льду.

Затем удалите излишки раствора из мозжечка и поместите салфетку в крышку чашки Петри. Затем мелко нарежьте ткань лезвием бритвы как минимум в трех разных направлениях. Впоследствии добавьте измельченную ткань в раствор В. Поместите его на водяную баню при температуре 37 градусов Цельсия на пять минут и аккуратно встряхивайте каждые пару минут.

Затем добавьте в пробирку 20 миллилитров раствора D для нейтрализации трипсина, встряхните в центрифуге при 60 5G в течение пяти минут. Потом. Слейте S надосадочную жидкость, ресуспендированную в четырех миллилитрах раствора КТ три. Оценивайте образец по 10 раз каждой из трех пипеток из пламенного стекла уменьшающегося диаметра до тех пор, пока суспензия не станет максимально однородной.

Затем медленно и осторожно добавьте несколько капель этого гомогената поверх B-S-A-E-B-S-S, если он начинает проникать через B-S-A-E-B-S-S-T тритрат больше и добавьте немного больше раствора C. Гомогенат должен сидеть слоем поверх B-S-A-E-B-S-S. Крутите его при 100 G в течение пяти минут и не встряхивайте. Затем удалите надосадочную жидкость и снова поддержите нёбо.

В одном миллилитре среды MEM подсчитайте клетки с помощью гемоцитометра и наведите на них 800 000 клеток на покрытие. После этого влейте 500 микролитров среды MEM, поместите его в инкубатор при температуре 37 градусов Цельсия с 6% углекислого газа. Затем делают раствор МЭМ-среды, содержащей 10 микроляров ингибитора клеточного цикла RC. Для каждого покровного стекла сохраняют 250 микролитров старой среды в свежей 24-луночной пластине, а остальное аспирируют.

Добавьте 250 микролитров обычной среды MEM для промывки клеток. Затем добавьте 250 микролитров старой среды обратно в клетки и долейте 250 микролитров среды, содержащей RSE. В этой процедуре добавьте чистую LME к пяти миллилитрам среды MEM, чтобы получить конечную концентрацию 150 миллимолярных LME.

Верните раствор к pH 7,4 с помощью раствора на кислотной основе. Затем стерильно отфильтровать его с помощью 28-миллиметрового ПЭС со шприцем фильтром 0,2 микрометра. Далее раствор LME разбавляют до концентрации 50 миллимоляров в среде MEM.

Затем поместите его на водяную баню при температуре 37 градусов Цельсия на 10 минут вместе с обычной средой MEM для контрольных культур. Через 10 минут удалите по 250 микролитров среды MEM из каждой культуры CGC. Затем удерживайте среду при температуре 37 градусов Цельсия.

Затем обрабатывайте клетки средой MEM, содержащей в два раза больше LME, или предварительно теплой средой MEM без LME Для контрольных культур инкубируйте клетки при температуре 37 градусов Цельсия во влажной атмосфере с 6% углекислым газом в течение одного часа. После этого дважды промойте элементы в свежей предварительно подогретой среде MEM, чтобы удалить среду, содержащую LME. Затем замените оставленную питательную среду равным количеством свежей предварительно подогретой МЭМ-среды.

Наконец, инкубируйте культуры в 6% увлажненном углекислом газе при температуре 37 градусов Цельсия в течение 24 часов перед любой дальнейшей обработкой. На этом рисунке представлены репрезентативные изображения из экспериментов, проведенных на культурах CGC после обработки 25-75 миллимолярными LME в течение одного часа с последующим смыванием. Иммунохимия проводилась с DPI для количественной оценки общего количества клеток и клеток с апоптотической морфологией и ISO лектином B 4 для идентификации и количественной оценки микроглии. На этом графике показана количественная оценка клеток, демонстрирующих морфологию апоптоза, показанные здесь, являются репрезентативными изображениями из экспериментов, проведенных на культурах CGC после обработки 25 миллимолярными LME в течение одного часа.

Иммунохимический анализ проводили с помощью тубулина DAPI anti beta three для идентификации изменений плотности нейронов и anti GFAP для идентификации изменений плотности и морфологии астроцитов. Отрицательные контрольные изображения представляют культуры CGC, в которых первичные антитела были опущены после освоения. Эту технику можно выполнить примерно за два часа, если она выполнена правильно.

Explore More Videos

Нейробиология выпуск 101 клеточной биологии микроглии мозжечка ЗК L-лейцина первичной культуры клеток нейрон-глия биологии нейровоспаление

Related Videos

Выделение микроглии из коры головного мозга взрослой мыши

03:48

Выделение микроглии из коры головного мозга взрослой мыши

Related Videos

872 Views

Выделение и культивирование первичных гранулярных нейронов мозжечка мыши

05:49

Выделение и культивирование первичных гранулярных нейронов мозжечка мыши

Related Videos

680 Views

Селективное удаление микроглии из культуры гранулярных нейронов мозжечка крысы

05:58

Селективное удаление микроглии из культуры гранулярных нейронов мозжечка крысы

Related Videos

260 Views

Выделение микроглии из демиелинизирующих поражений мозга мыши с помощью магнитно-активированной сортировки клеток

04:09

Выделение микроглии из демиелинизирующих поражений мозга мыши с помощью магнитно-активированной сортировки клеток

Related Videos

389 Views

Моделирование индуцированной активными формами кислорода гибели нейронов в гранулярных нейронах мозжечка мышей

01:59

Моделирование индуцированной активными формами кислорода гибели нейронов в гранулярных нейронах мозжечка мышей

Related Videos

306 Views

Выделение корковых микроглии с сохранившимися иммунофенотипа и функциональности из мышиных новорожденных

09:12

Выделение корковых микроглии с сохранившимися иммунофенотипа и функциональности из мышиных новорожденных

Related Videos

16.4K Views

Оценка жизнеспособности нейронов с помощью двойного окрашивания флуоресцеина диацетат-пропидиум в культуре нейробных гранул мозжечка

08:53

Оценка жизнеспособности нейронов с помощью двойного окрашивания флуоресцеина диацетат-пропидиум в культуре нейробных гранул мозжечка

Related Videos

12K Views

Моделирования нейронов смерти и дегенерации в мышь первичной мозжечковой гранул нейронов

10:36

Моделирования нейронов смерти и дегенерации в мышь первичной мозжечковой гранул нейронов

Related Videos

8.3K Views

Характеристика и изоляция первичной микроглии мыши по плотности градиентного центрифугирования

10:21

Характеристика и изоляция первичной микроглии мыши по плотности градиентного центрифугирования

Related Videos

19.8K Views

Изоляция региона конкретных микроглии от одного взрослого полушария мозга мыши для глубокой одноклеточной РНК секвенирования

09:49

Изоляция региона конкретных микроглии от одного взрослого полушария мозга мыши для глубокой одноклеточной РНК секвенирования

Related Videos

11.3K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code