27 декабря 2015 г.
Здесь мы представляем протокол лазерно-индуцированной хориоидальной неоваскуляризации (CNV) у мышей, экспериментальную модель, которая воссоздает сосудистые признаки неоваскулярной возрастной макулярной дегенерации (ВМД). После освоения он может надежно и эффективно индуцировать CNV в качестве модельной системы для тестирования различных экспериментальных мер.
Общая цель этой процедуры заключается в воссоздании признаков неоваскулярной возрастной макулярной дегенерации или МД на простой для изучения животной модели. Этот метод может быть использован для изучения различных аспектов исследований неоваскулярных исследований МД, в том числе того, как генетические изменения или фармацевтическое лечение могут повлиять на заболевание или как болезнь может проявляться при различных методах визуализации. Основное преимущество этой техники заключается в том, что после освоения ее легко воспроизвести, что позволяет проводить эксперименты быстро и эффективно.
Как правило, люди, плохо знакомые с этим методом, испытывают трудности, потому что им не хватает тонкой ловкости и координации, чтобы добиться успеха, и то, и другое улучшается с практикой. Чтобы подготовить положение лазерной станции, лазер и щелевая лампа там, где она может быть легко доступна, включают лазер и устанавливают его на заданные параметры. Здесь используются настройки 75 микрометров, размер пятна, мощность 100 милливатт и продолжительность 100 миллисекунд.
Далее поместите анестезию животного на согревание тканей, салфетки и глазные капли с легкой досягаемостью лазерного оператора. После обезболивания первой мыши поместите ее на грелку для животного примерно на три-пять минут. Выполните щипление пальцев ног, чтобы обеспечить полную анестезию.
Затем с помощью скрученной салфетки предотвратить назальную аспирацию жидкости. Поместите по 30 микролитров капли гидрохлорида тетракаина в каждый глаз. Подождите две минуты, пока раствор подействует.
Затем нанесите по одной капле местного тропического средства на каждый глаз, чтобы расширить зрачки. И подождите две минуты, пока раствор подействует. Теперь быстро поместите мышь на рабочую поверхность мыши, а затем установите рабочую область на подбородочную часть щелевой лампы.
Включите щелевую лампу и отрегулируйте ее на самую низкую яркость света. Оцените расширение зрачка мыши. Если зрачок не достиг расширения на 2,5 – три миллиметра.
Верните мышь в согревание животного или введите дополнительную каплю Tropic Aide после расширения зрачка. Ориентируйте мышь на платформе так, чтобы она лежала горизонтально перпендикулярно щелевой балке. Слегка поверните мышь так, чтобы она не находилась под углом примерно 170 градусов.
Расположив голову ближе к оператору лазера, расположите мышь как можно ближе к щелевой лампе, сохраняя при этом устойчивость платформы и оставляя достаточно места для выполнения мелких моторных манипуляций. После того, как мышь будет правильно установлена, нанесите одну каплю раствора искусственной слезы на стеклянную крышку размером 25 на 25 миллиметров. Кроме того, нанесите одну каплю этого раствора на нецелевой глаз мыши, чтобы предотвратить обезвоживание.
Возьмитесь за один угол крышки, проденьте его между большим и указательным пальцами, а оставшиеся три пальца обхватите мышь, чтобы поддерживать и стабилизировать как животное, так и руку оператора. Затем осторожно нажмите на крышку. Наденьте на глаз мыши, чтобы сделать роговицу плоской.
Расположите защитный колышек перпендикулярно траектории лазерного луча, чтобы предотвратить рассеивание или отражение луча. Глядя через щелевую лампу, свободной рукой отрегулируйте фокус до тех пор, пока сетчатка не появится в поле зрения. Сетчатка должна казаться от светло-желтого до красного цвета, с отчетливыми красными кровеносными сосудами, медленно и осторожно двигайте головой мыши или покровом, пока не будет замечен зрительный нерв.
Зрительный нерв будет желтого цвета с множеством кровеносных сосудов, отходящих от него. Затем включите лазерный фокусирующий луч и маневрируйте им, чтобы сфокусироваться на пигментном эпителии сетчатки или РПЭ глазного дна. Если фокусирующий луч кажется овальным или не в фокусе, отрегулируйте фокусировку щелевой лампы или скольжение крышки.
Когда фокусирующий луч правильно отрегулирован, используйте ножной триггер для запуска лазера. Пузырь должен образоваться сразу после введения лазера Поражения с туманными границами или глаза с кровоизлияниями должны быть исключены из анализа. Обязательно наблюдайте образование пузырьков и четкую резко очерченную круглую область, указывающую на сфокусированный лазерный ожог.
Поражения, которые не образуют пузырь, могут не вызывать ХНВ должным образом. Создать дополнительные очаги поражения во всех желаемых положениях хориоидальной неоваскуляризации или ХНВ. Переключите лазер в режим ожидания, когда он не используется, записывайте в лабораторный ноутбук местоположение и результат каждого введения лазера.
Повторите лазерное введение для второго глаза мыши, используя свежий покровный лист и противоположную руку для стабилизации мыши. Выполнив все введения, выключите лазер и щелевую лампу, выбросьте крышку и поместите мышь на животное. Теплее макроскопически.
Осмотрите глаз на предмет любой поверхности роговицы или травмы катаракты. После восстановления верните мышь в клетку. Количественная оценка CNV с помощью анализа плоских сосудистых оболочков после иммунофлуоресцентного окрашивания здесь.
Мечение fit c dextran проводилось с помощью перфузии непосредственно перед жертвоприношением животных. За этим последовала количественная оценка площади с помощью порогового значения на изображении J. Здесь посмертное иммуноокрашивание маркером эндотелиальных клеток. Был проведен селектин ISO GS IB 4 с последующей визуализацией с помощью конфокальной микроскопии.
Были созданы 3D-реконструкции поражения CNV на FOSS и вид сбоку. Оптическая когерентная томография также использовалась для визуализации поражений CNV in vivo. Здесь показано изображение поперечного сечения сетчатки с поражением CNV, обведенным желтым цветом.
Также показано изображение поражения в формате en FOSS, обведенное желтым цветом. После освоения этой техники ее можно сделать за 10 минут, если она выполнена правильно. Пытаясь выполнить эту процедуру, важно убедиться, что животное правильно обезболито, и расположить руки так, чтобы они поддерживались и устойчивы.
После просмотра этого видео у вас должно сложиться хорошее понимание того, как обеспечить концентрацию. Лазерные ожоги вызывают CNV, которые впоследствии могут быть изучены различными способами.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
В данной статье представлен протокол индуцирования хориоидальной неоваскуляризации (ХНВ) у мышей, имитирующий сосудистые характеристики неоваскулярной возрастной макулярной дегенерации (ВМД). Метод разработан таким образом, чтобы обеспечить воспроизводимость и эффективность при проведении различных экспериментальных исследований.
Мышиная модель хориоидальной неоваскуляризации (ХНВ), индуцированной лазером, представляет собой воспроизводимую и экономически эффективную систему для изучения неоваскулярной формы возрастной макулярной дегенерации (ВМД), позволяющую проводить экспресс-оценку генетических и фармакологических вмешательств. Ее ценность заключается в моделировании ангиогенных путей, необходимых для валидации мишеней и снижения доклинических рисков при разработке офтальмологических препаратов. Данная модель поддерживает проведение механистических исследований и терапевтического скрининга, обеспечивая трансляционную преемственность от этапа поиска до оптимизации ведущих соединений.
Данная модель вписывается в континуум поиска лекарственных средств — от идентификации мишени до оптимизации соединений-лидеров, обеспечивая фенотипические данные, которые служат основанием для принятия решений о переходе к этапу доклинических исследований.