16 февраля 2016 г.
Этот метод описывает использование квантовой микрокомпьютерной томографии (микрокомпьютерной томографии) для оценки морфологии, функции, перфузии, метаболизма и жизнеспособности сердца с йодированным контрастным веществом у мышей с экспериментально индуцированной ишемией миокарда. Этот метод может быть применен для неразрушающей высокопроизводительной продольной визуализации in vivo различных животных моделей сердечных заболеваний человека.
Общая цель данной процедуры — продемонстрировать использование высокоскоростной микрокомпьютерной томографии для визуализации собственных кардиореспираторных ворот для оценки глобальных и региональных функций миокарда в модели ишемии сердца у мышей. Этот метод может помочь ответить на ключевые вопросы патофизиологии сердца, такие как каково влияние лечения малфой на глобальную и регионарную функцию миокарда? Основное преимущество этой методики заключается в том, что она обеспечивает быструю, продольную, неинвазивную оценку наиболее важных сердечных параметров, которая легко выполняется неспециалистами.
Применение этой методики распространяется и на терапию сердечно-сосудистых заболеваний. AS может быть использован в качестве доклинического инструмента для получения расширенного представления о развитии сердечно-сосудистых заболеваний. Демонстрировать процедуру будут техник Николь ван Влит, а также постдок Эльза ван Дил и еще один техник из нашей лаборатории Янто Ридван
.Начните с того, что сделайте небольшой разрез на коже 12-недельной мыши между вторым и третьим ребрами. Затем с помощью небольших крючков отведите в сторону мышцы груди, чтобы обнажить межреберные мышцы. Далее с помощью изогнутых пружинных ножниц с двухмиллиметровым лезвием аккуратно прорежьте третью межреберную мышцу, не повредив при этом легкие.
Затем с помощью щипцов разорвите перикард и с помощью куска влажной марли отодвиньте легкие. Переместите крючки внутрь грудной клетки так, чтобы была видна большая часть свободной стенки левого желудочка и часть левого предсердия. Затем, используя предсердие для определения местоположения левой коронарной артерии, вставьте шелковый хирургический шов с семью нулями под левую коронарную артерию и завяжите шов на два миллиметра ниже края левого предсердия, чтобы стандартизировать размер инфаркта.
После визуального подтверждения успешности индукции инфаркта путем отшелушивания свободной стенки левого желудочка осторожно повторно надуть легкое и плотно закрыть грудную клетку хирургическим швом из шелка. Очистите рану физиологическим раствором и используйте больше шелковых швов для закрытия кожи, а затем нанесите спрей для раны для стимуляции заживления и предотвращения инфекции. Затем поместите мышь в клетку на грелку до полного восстановления.
Через три-четыре часа после операции включите микрокомпьютерный томограф, откройте управляющее программное обеспечение микрокомпьютерной томографии и прогрейте рентгеновскую трубку. Затем обработайте резиновую пробку флакона контейнера с йодистым контрастным веществом 70% спиртом и используйте шприц с низким мертвым пространством, чтобы извлечь от 5 до 10 микролитров средства на грамм массы тела животного. После продувки пузырьков воздуха промокните хвост мыши, находящейся под наркозом, 70% спиртом и теплом расширьте хвостовые вены.
Введите контрастное вещество в боковую хвостовую вену. Когда в управляющем программном обеспечении появляется кнопка живого режима, рентгеновская трубка готова. Вставьте крышку для малого канала ствола и лежанку для мелких животных.
Нажмите кнопку «Новая база данных» в окне базы данных и введите имя новой базы данных. Когда появится диалоговое окно, нажмите кнопку обзора и перейдите к диску, на котором будет сохранена база данных. Затем нажмите OK и посмотрите на новую базу данных в окне базы данных.
Чтобы задать условия сканирования, выберите соответствующие параметры. Теперь поместите мышь под наркозом на кровать для животных в сканере и сдвиньте дверцу прибора вправо, чтобы зафиксировать блокировку безопасности. Нажмите кнопку в режиме реального времени, чтобы просмотреть объект в режиме реального времени и наблюдать за окном съемки X и животным.
Нажатие кнопок управления по оси Z вперед и назад перемещает лежанку животного до тех пор, пока сундук с мышью не окажется в поле зрения. Затем с помощью стрелок влево и вправо на ручке управления кроватью животного поместите животное внутрь синей ограничивающей рамки. Выберите 90 из выпадающего списка управления вращением в окне программного обеспечения управления и нажмите кнопку «Установить», чтобы повернуть портал, убедившись, что животное остается в пределах синей ограничивающей рамки окна захвата X.
В окне захвата X щелкните левой кнопкой мыши, чтобы изменить размер интересующей вас кардиореспираторной области. Перетащите края так, чтобы кардиореспираторные траектории были четко видны в режиме синхронизации. Нажмите на исходное положение и измените размер интересующей области для кардиореспираторной системы.
Убедитесь, что интересующая область охватывает диафрагму и апикальную часть сердца во всех положениях портала. Затем поверните портал на 90 градусов, чтобы убедиться, что кардиореспираторные следы все еще хорошо видны. Когда животное находится в нужном положении, нажмите кнопку компьютерной томографии, чтобы инициализировать захват.
Появится сообщение о подтверждении КТ. Нажмите «Да». Красный рентгеновский индикатор включения включит прибор и начнется сканирование.
В конце сканирования наблюдайте трансаксиальный, корональный и сагиттальный виды реконструкций в программном обеспечении для просмотра 2D. Наконец, извлеките животное из сканера и наблюдайте за ним до полного выздоровления. Здесь показаны репрезентативные короткоаксиальные конечные диастолические и конечные систолические срезы сердца мыши с инфарктом миокарда.
На этих изображениях короткоаксиальные конечные диастолические и конечные систолические сечения сердца мыши без инфаркта миокарда демонстрируют превосходную границу полости левого желудочка с небольшим фоновым шумом. Обратите внимание, как области разрежения контраста, соответствующие инфаркту миокарда, были хорошо разграничены на короткоаксиальных изображениях сердца мыши, подвергшегося перевязке левой передней нисходящей коронарной артерии. Но не в бутафорском животном.
Согласно 17-сегментной модели Американской кардиологической ассоциации, левый желудочек может быть разделен на базальный, среднеполостный и апикальный короткоаксиальные части. На этих репрезентативных кольцевых полярных участках отчетливо видна неодинаковая обильность в средне-передней, средне-нижнелатеральной, средне-переднебоковой, апикальных передних и апикальных латеральных сегментах у мышей с инфарктом миокарда по сравнению с фиктивным животным. После освоения индукция инфаркта миокарда может быть завершена за 45 минут, в то время как последующая микрокомпьютерная томография занимает четыре часа.
При попытке проведения этой процедуры важно помнить, что функциональные показатели сердца зависят от типа и степени анестезии. Таким образом, для точных измерений частота сердечных сокращений должна поддерживаться как можно более физиологичной во время получения изображения. После своего развития этот метод проложил путь исследователям в области фармакологии к изучению стратегий вмешательства у мышей и анализу влияния стратегий лечения на уровне лечения на прогрессирование заболевания.
После просмотра этого видео вы должны иметь хорошее представление о хирургии инфаркта миокарда и знать, как использовать высокоскоростную систему микрокомпьютерной томографии в сочетании с контрастным веществом на основе йода. Не забывайте, что работа с изофлураном может быть опасной, и что при выполнении этой процедуры всегда следует принимать меры предосторожности, такие как хорошая вентиляция.
Этот метод описывает использование Квантовой Микро-Компьютерной Томографии (MicroCT) для оценки морфологии сердца, функции, перфузии, метаболизма и жизнеспособности с иодируемым контрастным агентом у мышей с экспериментально-индуцированной ишемии миокарда. Техника обеспечивает быструю, лонгитюдную, неинвазивную оценку критических параметров сердца.
This method enables rapid, longitudinal, non-invasive assessment of cardiac structure and function in preclinical models, supporting early target validation and mechanistic de-risking in cardiovascular drug discovery. By providing quantitative 3D anatomical and functional data, it enhances predictive confidence in lead identification and preclinical progression decisions. The technique reduces reliance on terminal endpoints and supports scalable, reproducible workflows for cross-functional R&D teams.
The method integrates into the discovery continuum from target validation through lead identification to preclinical efficacy testing, enabling iterative assessment of cardiac safety and efficacy signals.