-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Medicine
Retroductal Подчелюстные Сальник закапывания и локализованный фракционированного облучения в крыс...
Retroductal Подчелюстные Сальник закапывания и локализованный фракционированного облучения в крыс...
JoVE Journal
Medicine
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Medicine
Retroductal Submandibular Gland Instillation and Localized Fractionated Irradiation in a Rat Model of Salivary Hypofunction

Retroductal Подчелюстные Сальник закапывания и локализованный фракционированного облучения в крысиной модели слюнных гипофункции

Full Text
11,673 Views
07:44 min
April 24, 2016

DOI: 10.3791/53785-v

Renjith Parameswaran Nair1, Changyu Zheng2, Gulshan Sunavala-Dossabhoy1

1Department of Biochemistry and Molecular Biology,Louisiana State University Health Sciences Center, 2Molecular Physiology and Therapeutics Branch,National Institute of Dental and Craniofacial Research, NIH, DHHS

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Summary

Гипофункция слюнных желез, основной побочный эффект лучевой терапии головы и шеи снижает качество жизни пациента. Демонстрация эффективности новых методов лечения на животных моделях является предпосылкой перед клиническим переходом. Этот протокол описывает ретродукционное введение и местное облучение подчелюстных желез крыс.

Transcript

Общая цель этой процедуры заключается в ретродуктивном введении препаратов в подчелюстные железы для оценки их эффективности в борьбе с дисфункцией слюны. Этот метод может помочь ответить на ключевые вопросы в области заболеваний слюнных желез, например, какие методы лечения могут защитить или восстановить функцию слюнных желез от облучения. Основное преимущество этой методики заключается в том, что слюнные железы можно лечить локально, тем самым снижая риск нецелевых тканевых побочных эффектов.

Как правило, люди, плохо знакомые с этим методом, испытывают трудности, потому что отверстия протока не видны, и канюля должна быть вслепую введена в проток. Перед началом процедуры отрежьте скальпалом десятисантиметровую трубку из полиэтилена PE 10, затем возьмитесь за оба конца трубки между указательным и большим пальцами каждой руки и нагрейте среднюю часть трубки над мягким пламенем, осторожно потянув за обе стороны, чтобы растянуть размягченную трубку вдвое ее длину. Затем с помощью скальпала разрежьте трубку посередине под углом 45 градусов, чтобы получить две каннули с коническим концом каждая.

Растяните неконический конец одной из каннулей над иглой 29 калибра инсулинового шприца объемом 0,5 куб. см. Затем извлеките канюлю и наберите в шприц 220 микролитров физиологического раствора. Постучите по стержню шприца, чтобы удалить пузырьки воздуха, и снова прикрепите канюлю к игле.

Нажмите на поршень, чтобы вытолкнуть воздух из канюли и обеспечить свободное поступление раствора через трубку и отрегулировать объем физиологического раствора в шприце до 200 микролитров. Теперь подтвердите соответствующий уровень седации крысы щипцом ноги и пальпируемым рефлексом и нанесите глазную смазку на открытые роговицы. Поместите амимал на специально разработанную удерживающую платформу и задействуйте верхние зубцы резцов на поперечной перекладине.

Обмотайте резиновой лентой нижние резцы, чтобы оттянуть челюсть вниз. Прикрепляем его к платформе. Далее проденьте стерильный шов через язык и поднимите его вверх, чтобы поднять дно рта.

Затем с помощью гемостата зажмите швы и пропустите гемостат над поперечной перекладиной. Затем используйте специально изготовленный расширитель для щек, чтобы расширить щеки, и диссекционный микроскоп, чтобы найти подъязычные сосочки на дне рта. С помощью тонких щипцов захватите конический конец предварительно сформированной трубки из полиэтилена 10 и осторожно переместите кончик канюли в протоковое отверстие на сублингвальном сосочке.

Затем проденьте канюлю на три-пять миллиметров в воздуховод, убедившись, что канюля проходит через проток без препятствий. Перед закапыванием физраствора введите атрофин подкожно в загривок шеи животного. Через десять минут после инъекции закрепите канюлю в отверстии протока каплей с помощью капли цианоакрилата.

После того как клей высохнет, медленно нажимайте на поршень шприца со скоростью 50 микролитров в минуту, пока в железу не будет заведено 200 микролитров солевого раствора. Если во время закапывания вы столкнулись с задержкой, остановите и затем удалите трубку, затем повторите ее с помощью новой канюли. Затем зажмите трубку с помощью гемостата и аккуратно извлеките шприц.

Оставьте трубку в протоке на 30-60 минут, пока животное не придет в сознание. Затем снимите шов, который удерживает язык, и переложите животное в отдельную клетку под тепловую лампу до полного восстановления. Местно применять фракционное облучение подчелюстной железы.

Наведите на колонну трехсантиметровую щель радиационного поля, охватывающую область от нижней границы мышцы до верхней части грудины крысы, находящейся под наркозом, в положении лежа на спине. После наложения на область односантиметрового тканевого равносильного болюса. Отрегулируйте расстояние между источником излучения и верхней частью кома до 100 сантиметров с помощью пучка фотонов мощностью шесть мегавольт на линейном ускорителе.

Облучайте животное 2,5 серыми оттенками для соответствующей продолжительности воздействия. По окончании периода радиационного облучения согрейте животное во время его выздоровления, как только что было показано. Во время первоначальных экспериментов правильность установки канюли была подтверждена путем введения в железу раствора гематоксилина или триплана синего и оценки окрашивания железы у усыпленных животных.

Подчелюстные железы были изучены, потому что они могут быть избирательно облучены колоническим излучением в область шеи, избегая серьезных побочных эффектов перорального приема, которые могут повлиять на здоровье животных и результаты эксперимента. Анализ влияния этой схемы фракционированного облучения на отток слюны через восемь недель после облучения показывает, что ежедневное воздействие 2,5 серых приращений резко снижает отток слюны. В 10 раз снижается выделение слюны у облученных животных по сравнению с необлученными животными.

После освоения этой техники ее можно завершить за несколько минут, если она выполнена правильно. При проведении этой процедуры важно помнить о необходимости обеспечить неограниченное прохождение канюли в экскреаторный проток слюнной железы. После своего развития этот метод проложил путь исследователям в области заболеваний слюнных желез к изучению методов лечения лучевой и аутоиммунной болезни слюнных желез.

После просмотра этого видео у вас должно сложиться хорошее представление о том, как проводить ретродуктивную установку в подчелюстную железу крысы и локально облучать железы для оценки терапевтической эффективности улучшения лучевой токсичности. Не забывайте, что работа с генными и белковыми терапевтическими препаратами может быть чрезвычайно опасной, и при выполнении этой процедуры следует соблюдать меры предосторожности, такие как предотвращение уколов иглой и минимизация контакта с биологическими агентами на кожу.

Explore More Videos

Медицина выпуск 110 Human Gene Therapy Том 24 слюнные железы катетеризация коллимации фракции ионизирующее излучение крысы животная модель слюнных гипофункции

Related Videos

Выделение мышью слюнных желез стволовых клеток

09:52

Выделение мышью слюнных желез стволовых клеток

Related Videos

24.2K Views

Катетеризации из Мышь подчелюстные слюнные железы через Канальные Уортон

05:18

Катетеризации из Мышь подчелюстные слюнные железы через Канальные Уортон

Related Videos

26.6K Views

Ультразвук наведением ботулинического токсина Инъекции-A: Способ лечения слюнотечение

07:05

Ультразвук наведением ботулинического токсина Инъекции-A: Способ лечения слюнотечение

Related Videos

23.8K Views

Метод для измерения функции слюнной железы у мышей

07:29

Метод для измерения функции слюнной железы у мышей

Related Videos

19.4K Views

Подготовка мышиных подчелюстной слюнной железы вертикально прижизненной микроскопии

08:13

Подготовка мышиных подчелюстной слюнной железы вертикально прижизненной микроскопии

Related Videos

8.5K Views

Инъекции Retroductal наночастиц в мышиных подчелюстной железы

07:45

Инъекции Retroductal наночастиц в мышиных подчелюстной железы

Related Videos

10.4K Views

Мышиных слюнных функциональной оценки через после стимуляции пилокарпин фракционированный излучения

09:10

Мышиных слюнных функциональной оценки через после стимуляции пилокарпин фракционированный излучения

Related Videos

11.7K Views

Лучевая терапия Органотипных культур от подчелюстной и околоушной слюнных желез модели ключ в естественных характеристик

07:38

Лучевая терапия Органотипных культур от подчелюстной и околоушной слюнных желез модели ключ в естественных характеристик

Related Videos

8.4K Views

Ретроградная инфузия рядовидной железы через проток Стенсена у нечеловеческого примата для векторной доставки генов

03:50

Ретроградная инфузия рядовидной железы через проток Стенсена у нечеловеческого примата для векторной доставки генов

Related Videos

3.4K Views

Исследование межклеточных взаимодействий в слюнных железах с помощью визуализации живых клеток ex vivo

05:40

Исследование межклеточных взаимодействий в слюнных железах с помощью визуализации живых клеток ex vivo

Related Videos

1.9K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code