RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
ru_RU
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/54122-v
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Мы описали протокол предотвращения эффектов теплового стресса у крыс путем предварительной обработки полости рта полезными бактериями. Этот протокол может быть модифицирован и использован для различных путей введения и для анализа различных соединений.
Общая цель данного эксперимента — оценить профилактический эффект штамма B.subtilis BSB3 против осложнений после теплового стресса. Этот метод может помочь ответить на ключевые вопросы в профилактике неблагоприятных последствий теплового стресса. Основное преимущество этого метода заключается в том, что его можно использовать для оценки различных подходов к смягчению осложнений теплового стресса.
Демонстрировать эту процедуру будет Людмила Глоба. И Олег Пусовый, научные сотрудники нашей лаборатории. Для начала с одной колонии Bacillus subtilis BSB3, которая была выращена за ночь на питательной агаровой пластине.
Заквашите десять миллилитров питательного отвара в колбу. Выращивают культуру за ночь при 37 градусах Цельсия. Приготовьте 500 миллилитров среды для спороношения в соответствии с приведенным здесь рецептом.
И автоклав при 121 градусе Цельсия в течение 20 минут. Дайте среде остыть до 50 градусов Цельсия перед добавлением следующих стерильных растворов. В стерильном шкафу охладите подготовленную среду при комнатной температуре до 40 градусов Цельсия в течение 20 минут.
И налить по 25 миллилитров в каждую из 20 стерильных чашек Петри. Дайте среде застыть в течение ночи. Далее разложите 0,5 миллилитра ночной культуры Bacillus subtilis BSB3 на поверхность пластин среды для спороношения.
Инкубируйте планшеты при температуре 37 градусов Цельсия в течение пяти дней до 90% спороношения. Затем используйте микроскопию высокого разрешения, чтобы проверить наличие фазовых спор. Чтобы собрать бактерии, добавьте один миллилитр PBS в тарелки и используйте стерильный распределитель клеток, чтобы соскоблить бактерии с поверхности.
Храните суспензию при температуре четыре градуса Цельсия до тех пор, пока она не понадобится. Подтвердите жизнеспособность бактерий путем нанесения 0,1 миллилитра соответствующего разведения бактериальной суспензии на планшеты со споруляционной средой и инкубируйте при температуре 37 градусов Цельсия в течение 18-24 часов. Используйте счетчик колоний колоний для подсчета колоний бактерий и расчета титра бактерий в тестируемой суспензии.
Затем приготовьте бактериальную суспензию в PBS в конечной концентрации от одного умножить на десять-восьмую КОЕ на миллилитр. После обработки крыс пероральным зондированием B.subtilis BSB3 или PBS в течение двух дней, затем разделения животных и измерения их температуры, содержание крыс из первой и второй групп при комнатной температуре в течение 25 минут. Поместите животных третьей и четвертой групп в климатическую камеру при температуре 45 градусов Цельсия и относительной влажности 55% на 25 минут.
После повторного измерения ректальной температуры каждой крысы поместите всех животных при комнатной температуре на четыре часа. Затем, после усыпления животных, сбора крови из туловища и выделения органов в соответствии с текстовым протоколом, поместите каждый образец органа в предварительно взвешенные стерильные пробирки и взвесьте. Добавьте стерильный PBS в каждую пробирку, чтобы получить разведение образца от одного до десяти весов на объем, и используйте гомогенизатор тканей из стерильного стекла для получения однородных тканевых суспензий.
Затем используйте стерильный PBS для последовательного разведения каждого образца. Затем нанесите 0,1 миллилитра всех разведений на поверхность Мак-Конки и 5% кровяного агара. И бруцелла кровяной агар с гемином и витамином К1. После инкубации пластин используйте счетчик колоний, чтобы подсчитать колонии на каждой группе пластин.
Выразите результаты в виде количества колониеобразующих единиц, или КОЕ, на грамм ткани. После подготовки и окрашивания срезов тонкого кишечника в соответствии с текстовым протоколом с помощью микроскопа высокого разрешения измерьте кишечные ворсинки и общую толщину стенки слизистой оболочки. Проанализируйте не менее четырех образцов от каждой крысы и проведите не менее 20 измерений в каждом образце.
Для проведения световой микроскопии образцов крови с высоким разрешением используйте виброизоляционную платформу в качестве базы для микроскопической системы с видеокамерой и компьютером для записи изображений в реальном времени. После калибровки тестовых изображений в соответствии с текстовым протоколом поместите на предметное стекло семь микролитров свежевзятой крови от каждой крысы и добавьте покровный листок. Затем сфотографируйте и запишите десять кадров изображения размером 72 на 53,3 микрометра в квадрате в каждом образце.
Наконец, с помощью программного обеспечения, которое обеспечивает прямой просмотр оптических изображений с высоким разрешением в режиме реального времени, измерьте концентрацию везикул. Средняя температура тела животных до и сразу после теплового стресса составила 36,7 плюс-минус 07 градусов Цельсия и 40,3 плюс-минус 0,17 градусов Цельсия соответственно. Воздействие тепла на крыс приводило к значительному угнетению высоты ворсинок и общей толщины слизистой оболочки.
Однако лечение штаммом BSB3 перед стрессом, защитило кишечник от вредного воздействия тепла. На предмет транслокации бактерий из кишечника анализировали брыжеечные лимфатические узлы, печень и селезенку. Как показано на рисунке, бактерии были выделены в концентрации от 1,7 до 10 до 3 плюс-минус 4,6 умножить на 10 на 2 КОЕ на грамм ткани только в образцах из брыжеечных лимфатических узлов и печени крыс, получавших PBS, подвергшихся воздействию тепла.
С другой стороны, все протестированные образцы от контрольных и подвергшихся тепловому стрессу животных, получавших штамм BSB3, были стерильными. У крыс, подвергшихся тепловому стрессу, не было зарегистрировано никаких изменений в уровнях IL 1beta, IL-6, TNFalpha или цитокинов интерферона гамма. Тем не менее, уровни IL-10 и LPS были повышены у животных, получавших PBS до термической обработки.
Таким образом, предварительная обработка B.subtilis BSB3 предотвращала повышение уровня IL-10 и ЛПС в сыворотке крови после термической обработки. Наконец, значительное увеличение концентрации свободных пузырьков было обнаружено в крови крыс, получавших PBS до теплового стресса, но не у животных, получавших BSB3. Важно помнить о необходимости использования пирогенных материалов для забора крови и точности поддерживать температуру жидкостей сыворотки при температуре минус 20 градусов Цельсия при многократном замораживании и размораживании, а также соблюдать стерильную процедуру во время анализа на бактериальную транслокацию.
Следуя этой процедуре, можно провести введение бактерий после теплового стресса, чтобы ответить на дополнительные вопросы об осложнениях теплового стресса.
Related Videos
02:47
Related Videos
55 Views
04:32
Related Videos
2.4K Views
10:03
Related Videos
9.7K Views
09:06
Related Videos
11K Views
10:36
Related Videos
14.4K Views
08:22
Related Videos
4.1K Views
08:34
Related Videos
1K Views
11:40
Related Videos
3K Views
05:56
Related Videos
1.4K Views
07:31
Related Videos
42.9K Views