14 сентября 2016 г.
Этот протокол описывает использование спектрофотометрии для обнаружения ультрафиолетового отражающей структуры на организмы (в данном примере SailFin Molly Poecilia latipinna) и описывает дихотомические тесты выбора для рыб , которые позволяют умозаключения быть сделан на роли ультрафиолетовых репликами во время выбора партнера.
Общая цель регистрации отражения УФ-излучения у таких рыб, как Poecilia latipinna, заключается в том, чтобы понять, как структуры, отражающие УФ-свет, могут влиять на брачное поведение данного вида. Этот метод позволяет определить такие предпочтения при выборе партнера, как значимость УФ-сигналов и то, используются ли они обоими полами. Основным преимуществом данного метода является возможность обнаружения сигналов, которые могут быть невидимы для человека, но могут иметь большое значение для рыб.
Для данного протокола сначала откалибруйте спектрофотометр и источник света по известному белому стандарту. Перед проведением всех калибровок освещение в помещении должно быть приглушенным. Откалибруйте прибор по всем длинам волн, которые будут измеряться, включая УФ-длины волн в диапазоне от 300 до 400 нанометров.
Теперь наденьте перчатки и подвергните рыбу анестезии в 5% растворе метансульфоната этил-3-аминобензоата, известного как MS222, буферизованном равным количеством гидрокарбоната натрия. Когда рыба перестанет реагировать, немедленно перенесите ее на черный небликующий фон. Перед проведением измерений снова приглушите свет в помещении.
Для записи данных коэффициента отражения используйте программное обеспечение для анализа. Чтобы повторить данные настройки, установите время интегрирования на 2000 секунд. Установите среднее количество сканирований на два, а значение сглаживания пикселей — на пять.
Теперь измерьте коэффициент отражения рыбы с помощью волоконно-оптического зонда. Держите зонд так, чтобы между волоконной оптикой и телом был угол 45 градусов. Вычислите среднее значение по нескольким сканированиям для каждого участка тела.
Проверьте коэффициент отражения для нескольких участков тела и определите наличие различий между отдельными особями. По завершении процедуры при желании нанесите коммерческий защитный препарат для восстановления слизистого слоя, после чего верните рыбу в резервуар для содержания с хорошим насыщением кислородом. После восстановления у рыбы нормализуются плавание и ритм движения жаберных крышек.
В данном тесте используется резервуар с камерами выбора, оснащенный УФ- и непрозрачными фильтрами. Когда перегородки из плексигласа удаляются, рыба в нейтральной камере может видеть свет полного спектра или свет без УФ-излучения благодаря фильтрам, установленным в разных частях резервуара. Для P.latipinna используйте тестовый аквариум объемом 75,7 литра.
Перед каждым тестом убедитесь, что между тремя секциями аквариума отсутствуют общие водные потоки или ольфакторные сигналы. Для проведения теста используйте половозрелых особей. Для самок P.latipinna выбирайте рыб в течение 48 часов после метания икры, а самцов — тех, кто находился в изоляции не менее 24 часов.
Для проведения теста сначала перенесите подопытное животное в нейтральный отсек. Затем выберите двух потенциальных партнеров для спаривания, которые максимально схожи друг с другом по размеру, окраске и характеристикам брачного поведения. Сопоставление по цвету можно выполнить точно с помощью приборов или приблизительно на глаз.
Теперь при полноспектральном освещении поместите одного из двух потенциальных партнеров в каждый из двух отсеков выбора. Непрозрачные и УФ-фильтры, а также перегородки отсеков должны быть установлены. Дайте животным адаптироваться к этим условиям в течение 15 минут.
Для каждого опыта случайным образом определите, в каком отделении будет установлен УФ-фильтр. Затем снимите непрозрачные крышки с перегородок. Через 15 минут с помощью секундомера начните фиксировать время, которое фокальная особь проводит в определенных зонах предпочтения.
Область в пределах двух длин тела от выбранного отсека считается зоной предпочтения. В качестве альтернативы можно использовать программное обеспечение для регистрации событий. Регистрируйте активность рыбы в течение 15 минут.
Если рыба не посетила каждую зону предпочтения хотя бы один раз, считайте ее невосприимчивой и исключите из данных эксперимента. Измерение отражения УФ-излучения у P.latipinna показывает, что оба пола обладают УФ-характеристиками, которые варьируются между особями. Эти признаки наиболее выражены вдоль боков их тел.
После обнаружения УФ-признаков тест на дискриминацию показал, что самки, в отличие от самцов, используют эти характеристики при выборе партнера для спаривания. Поскольку УФ-признаки присутствуют у обоих полов, возможно, они задействованы в других социальных взаимодействиях, таких как кооперированное плавание (шоалинг) или поиск пищи. После освоения методы измерения УФ-излучения могут быть выполнены менее чем за два часа.
Испытания по выбору партнера могут быть завершены менее чем за час для каждой рыбы. При выполнении данной процедуры важно убедиться, что рыбы находятся в репродуктивно восприимчивом состоянии. После завершения этой процедуры можно провести дополнительные эксперименты для изучения роли УФ-признаков в индивидуальном или видовом распознавании.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
В данном протоколе описывается использование спектрофотометрии для обнаружения ультрафиолетовых отражающих структур у организмов, в частности у широкоплавниковой молли Poecilia latipinna. Приводятся тесты с дихотомическим выбором для рыб, которые позволяют сделать выводы о роли ультрафиолетовых сигналов при выборе партнера.
Понимание невизуальных сенсорных сигналов, таких как отражение УФ-излучения, расширяет возможности валидации мишеней в поведенческой нейробиологии, выявляя механистически значимые пути в процессе принятия социальных решений. Данный анализ позволяет проводить фенотипический скрининг зависимого от сигналов поведения, что способствует снижению механистических рисков в доклинических моделях, где сенсорное восприятие влияет на терапевтический ответ. Метод обеспечивает получение количественных, воспроизводимых результатов, что повышает прогностическую достоверность исследований взаимодействия с мишенями в нейронных цепях, регулирующих выбор партнера и социальную аффилиацию.
Определяет место метода в континууме открытий — от ранних этапов поиска до идентификации соединений-лидеров, обеспечивая проверку гипотез о сенсорных путях и поведенческое фенотипирование перед проведением скрининга соединений.