2 ноября 2016 г.
Мы описываем микрохирургической подход к генерации артериовенозные (AV) петли в качестве модели для анализа васкуляризации в естественных условиях в изолированном и хорошо охарактеризованного окружающей среды. Эта модель не только полезно для исследования ангиогенеза, но и оптимально подходит для инженерных и аксиально васкуляризированных перевивных тканей.
Общая цель данного микрохирургического подхода заключается в создании артериовенозной петли для инженерии аксиолизированных, васкуляризированных и трансплантируемых тканей, а также для анализа васкуляризации in vivo, а также в изолированной и хорошо охарактеризованной среде. С помощью этого метода мы можем использовать собственные организмы в качестве живых биореакторов для создания различных типов аксиолизированных васкуляризированных тканей, адаптированных к индивидуальным потребностям пациента. Основным преимуществом данной техники является то, что созданная ткань может быть пересажена вместе с ее сосудистым доступом и соединена с местными сосудами на стороне реципиента для немедленного снабжения кислородом и питательными веществами.
Помимо исследований в области тканевой инженерии, данный метод позволяет изучить процессы ангиостеноза в живом организме. Он также может быть применен при патологических состояниях, таких как ангиогенез при раке. Как правило, специалисты, впервые использующие этот метод, сталкиваются с трудностями из-за высокой сложности хирургического вмешательства, в частности, при выполнении микроанастомоза субмиллиметрового сосуда.
Идея этого метода возникла у нас при работе с клиническими случаями обширных дефектов тканей, которые требовали трансплантации аутологичной васкуляризированной ткани, что создавало значительную подвижность в области донорского участка. После подтверждения надлежащей анестезии взвесьте крысу для расчета доз препаратов. Затем нанесите глазную мазь для предотвращения пересыхания слизистой во время анестезии.
После введения обезболивающих препаратов и антибиотиков поместите крысу на грелку и начните подачу изофлурана в непрерывном режиме. Затем повторно проверьте глубину анестезии с помощью щипкового теста (сжатия пальца лапы). По возможности используйте пульсоксиметрию для контроля уровня анестезии крысы.
Продолжите, выбрів шерсть на внутренней стороне задних конечностей. Затем продезинфицируйте операционное поле, поочередно используя бетадин и спиртовой раствор. После этого разведите задние конечности и зафиксируйте их с помощью адгезивной ленты.
Наконец, поместите крысу под хирургический микроскоп и застелите стерильным операционным бельем. Проведите операцию, соблюдая правила стерильности. С помощью скальпеля сделайте продольный разрез кожи в средней части левого бедра от верхней части колена до паха.
Затем, используя диссекционные ножницы и микропинцет, послойно рассеките подкожную клетчатку и фасцию на протяжении примерно трех сантиметров. Прекратите разрез, когда бедренный сосудисто-нервный пучок будет обнажен от тазовой артерии в паху до колена. После этого, используя ножницы для жировой ткани и микропинцет, отделите сосуды и удалите жировую ткань.
При необходимости коагулируйте боковые ветви с помощью электрокоагуляции. По завершении накройте операционное поле влажным компрессом и повторите процедуру на правой стороне крысы. После того как первая процедура будет симметрично выполнена на обеих сторонах, приступите к забору венозного трансплантата.
Сначала перевяжите правую бедренную вену с помощью электрокоагуляции на проксимальном и дистальном концах, чтобы получить трансплантат длиной примерно от 1 до 1.5 см. Затем извлеките венозный трансплантат с помощью микропинцета. Для расширения отверстия венозного трансплантата используйте расширитель сосудов.
Затем промойте венозный трансплантат раствором гепарина с помощью ирригационной канюли. Перенесите промытый трансплантат на левое бедро и накройте операционное поле с правой стороны влажным компрессом. Далее проксимально перевяжите бедренную вену слева в паховой области с помощью микрососудистого зажима.
Затем коагулируйте бедренную вену дистально в верхней части колена перед местом разветвления. Для выполнения анастомоза соедините проксимальный конец венозного трансплантата с проксимальным концом вены, используя технику «конец в конец» и шов 11-0. Начните с наложения первых двух швов в положениях на 12 и 6 часов.
Затем наложите еще от двух до трех швов между этими точками на передней стороне. После этого наложите от двух до трех швов на задней стороне. Анастомоз петель сосудов является наиболее критическим этапом протокола.
Важно обеспечить максимальную точность наложения швов, чтобы снизить риск пережатия и закрытия сосудов петли. Затем перевяжите бедренную артерию с помощью микрососудистого зажима и выполните электрокоагуляцию аналогично перевязке бедренной вены. Перед продолжением убедитесь, что сосуды петли не перекручены.
Затем выполните анастомоз дистального конца венозного трансплантатa с проксимальным концом артерии, используя ту же технику наложения швов, что была продемонстрирована ранее. После второго анастомоза введите 25 iu гепарина внутривенно. Теперь повторно убедитесь, что сосуды петли не перекручены, и снимите зажимы.
Наблюдайте за петлей в течение примерно пяти минут, проверяя ее на наличие утечек и проходимость. При наличии проходимости петля расширится, и будет видна пульсация артерии. Во время наблюдения капайте папаверин на сосуды для предотвращения сосудистых спазмов.
Затем предварительно заполните имплантационную камеру первой половиной матричной смеси, примерно 0,5 мл. После этого поместите петлю в имплантационную камеру. Закройте вход в камеру двумя сгустками фибрина и заполните камеру второй половиной матричной смеси, чтобы общий объем составил 1 мл.
Теперь закрепите камеру на бедре, закройте ее крышкой и зафиксируйте крышку нерассасывающимся швом 6-0. Затем закрепите имплантационную камеру на бедре дополнительным нерассасывающимся швом 6-0. Остановите любое кровотечение с помощью электрокоагуляции.
Наконец, зашейте кожу рассасывающимися швами 4-0 и покройте рану алюминиевым спреем. Для целей костной тканевой инженерии в модель А-V петли на крысах было имплантировано несколько различных костных заменителей. Васкуляризация наблюдалась с помощью 3D микрокомпьютерной томографии.
Предварительная васкуляризация обработанного губчатого костного матрикса быка в течение шести недель привела к более высокой выживаемости введенных остеобластов. Петли собирали, разрезали и окрашивали в различные временные точки после имплантации. Например, окрашивание гематоксилином и эозином показало, что использование костного заменителя на основе бета-трикальцийфосфата и гидроксиапатита с мезенхимальными стволовыми клетками привело к образованию множества сосудистых соединений в течение шести недель.
После освоения данной методики ее выполнение при правильном подходе занимает от пяти до шести часов. Следуя этой процедуре, можно имплантировать большое разнообразие различных клеточных факторов или антител для изучения широкого спектра состояний. Данный метод также применим в модели венозной петли на крупных животных (овцах).
Таким образом, это позволит исследователям создавать васкуляризированные ткани в больших, клинически значимых объемах. Данная модель может предоставить возможность изучать васкуляризацию при патологических состояниях. Например, можно будет исследовать влияние различных факторов роста и клеток на формирование сосудистой сети опухоли
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
В данной статье описывается микрохирургический подход к созданию артериовенозной (АВ) петли, которая служит моделью для анализа васкуляризации in vivo. Эта методика полезна для исследования ангиогенеза и создания пересаживаемых тканей с аксиальной васкуляризацией.
Модель артериовенозной (АВ) петли создает контролируемую среду in vivo для изучения ангиогенеза и формирования васкуляризированных тканей, что отвечает критической потребности доклинических исследований в воспроизводимых моделях васкуляризации. Позволяя изолировать сосудистые процессы от системных влияний, данная модель способствует механистическому снижению рисков при оценке проангиогенных и антиангиогенных кандидатов. Эта возможность повышает прогностическую достоверность при валидации мишеней и идентификации ведущих соединений для разработки средств терапии сосудистых заболеваний и применения в регенеративной медицине.
Модель AV-петли вписывается в континуум исследований — от валидации мишени и идентификации ведущих соединений до доклинической оценки, что особенно актуально для программ по биологии сосудов и тканевой инженерии.