10 декабря 2016 г.
Здесь мы опишем процедуру визуализации и количественной оценки с высокой чувствительностью эндогенные взаимодействия между эндоплазматического ретикулума и митохондрий в фиксированных клетках. Протокол оснащен оптимизированной Ситу лигирования анализа близости в ориентации инозита 1,4,5-трифосфат / белок глюкозы регулируемого рецептора 75 / зависящие от напряжения анион канала / циклофилин D комплекса на границе раздела мембраны митохондрии-ассоциированной.
Общая цель этого эксперимента заключается в визуализации и количественной оценке взаимодействий митохондрий эндоплазматического ретикулума с использованием анализа близкого лигирования in situ в фиксированных клетках. Этот метод может помочь ответить на ключевые вопросы в биомедицинской области, чтобы лучше проанализировать взаимодействия митохондрий ER в фиксированных клетках с помощью простого метода иммунофлуоресценции. Надеюсь, предложу новые стратегии лечения. Основное преимущество этого метода заключается в том, что мы можем визуализировать и количественно оценить взаимодействия митохондрий ER в фиксированных клетках, и этот метод может быть применен к биопсии тканей пациентов, залитых парафином. С помощью анализа близкого лигирования in situ, продемонстрированного в этом видео, первичное антитело мыши, направленное против VDAC1 на внешней митохондриальной мембране, и первичное антитело кролика, направленное против IP3R1 на мембране эндоплазматического ретикулума, объединяются со своими эпитопами, находящимися вблизи на границе митохондриальной мембраны. Зонды бесконтактного лигирования, к которым прикреплены концевые хвосты ДНК и которые направлены против IgG мыши и кролика, могут образовывать матрицы для лигирования олигонуклеотидов коннектора и могут быть амплифицированы и визуализированы с использованием техасских красных олигонуклеотидов. В соответствии с расстоянием между обоими мембранами органелл, на границе митохондриальной ассоциированной мембраны. Для фиксации и блокирования клеток для анализа бесконтактного лигирования in situ поместите клетки H7 человека в 150 000 клеток на некодированную чашку со стеклянным дном диаметром 35 мм. На следующий день удалите питательную среду и используйте 1 мл PBS для промывания клеток. Затем аспирируйте буфер и добавьте 1 мл десятипроцентного формальдегида. Инкубируйте планшеты при комнатной температуре с помешиванием в течение 10 минут для фиксации клеток. Чтобы остановить реакцию, добавьте 1 мл 1 М глицина и перемешайте пластины вращением. Удалите раствор глицина и добавьте 1 мл 1XPBS. Затем кратковременно взбалтируйте пластины и аспирируйте буфер. Далее добавьте в клетки 1 мл 100 мМ глицина. Инкубируйте пластины при комнатной температуре с перемешиванием в течение 15 минут. После аспирации раствора проникните клетки, добавив 1 мл 0,1% тритона-Х100 в PBS. И повторите инкубацию. Аспирируйте моющее средство и добавьте 1 мл PBS для промывания клеток. После удаления буфера добавьте по 40 микролитров блокирующего раствора в каждую чашку с клетками и инкубируйте образцы во влажной камере при температуре 37 градусов Цельсия в течение 30 минут. Затем смахните блокирующий раствор с посуды, стараясь получить равные остаточные объемы буфера для каждой горки, не позволяя слайдам высохнуть. Для проведения анализа на бесконтактное лигирование используйте PBS для разбавления первичных антител. Вортексируйте и добавьте раствор в посуду. Инкубируйте образцы при 4
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
В данной статье представлена процедура высокочувствительной визуализации и количественной оценки взаимодействий между эндоплазматическим ретикулумом и митохондриями в фиксированных клетках. Метод основан на использовании оптимизированного анализа лигации близости in situ для выявления специфических белковых комплексов на интерфейсе митохондриально-ассоциированных мембран.
Количественная оценка эндогенных взаимодействий между ЭР и митохондриями имеет решающее значение для снижения рисков при проверке гипотез на ранних этапах поиска, связанных с клеточной сигнализацией и метаболической регуляцией. Метод анализа лигации вблизи in situ обеспечивает чувствительную мультиплексную детекцию сайтов контакта органелл без гиперэкспрессии белков, что повышает прогностическую уверенность в системах, имеющих отношение к заболеванию. Эта возможность укрепляет обоснованность принятия решений по портфелю проектов на стыке валидации мишеней и анализа механизмов функционирования путей.
Этот метод анализа близости с помощью лигирования in situ связывает этап ранних открытий и доклинические исследования, позволяя проводить надественный количественный анализ взаимодействий между ЭР и митохондриями в фиксированных клетках и тканях.