15 марта 2017 г.
оценки инсектицидами часто направлены против взрослых насекомых, а не незрелых стадий. Здесь мы приводим протокол для оценки инсектицидов против яиц ошибка постели с по сравнению с первым нимф этапе кровать ошибка. Эти протоколы могут быть скорректированы для других насекомых, чтобы оценить эффективность инсектицида в не только на взрослых стадиях жизни.
Общая цель этого эксперимента — оценить эффективность инсектицидов в уничтожении яиц постельных клопов и первых возрастов. Этот метод может помочь ответить на ключевые вопросы в области энтомологии, такие как влияние токсикологических анализов на яйца постельных клопов и мелких нимф. Основное преимущество этой методики заключается в том, что она предназначена для обработки инсектицидами сложной стадии жизни насекомых, в частности стадии яйца.
Чтобы начать эксперимент, вытащите от 5 до 10 спаренных взрослых самок постельных клопов из колонии и поместите самок в чашку Петри с фильтровальной бумагой. Подготовьте 10 повторов, чтобы убедиться, что яиц будет достаточно для анализа инсектицидами. Проверяйте посуду каждый день, чтобы узнать, не отложили ли самки яйца.
После того, как самки отложили яйца, вынимайте самок из чашки Петри и ежедневно помещайте их в новые чашки Петри с новой фильтровальной бумагой. Запишите данные о старых и новых чашках Петри. Дайте яйцеклеткам состариться за четыре-пять дней до начала анализа.
Как только яйца состарятся, аккуратно удалите яйца постельных клопов из фильтровальной бумаги с помощью щипцов с мягким наконечником. Аккуратно соскребите с помощью щипцов дно яйца, прикрепленного к фильтровальной бумаге, а затем осторожно возьмите яйцо, не оказывая слишком большого давления, чтобы не подбросить яйца постельного клопа. Поместите удаленные яйца постельных клопов в соответствующие группы внутри пластиковых чашек Петри.
Натрите дно каждой чашки Петри снаружи простыней для кондиционера для белья, чтобы ограничить статическое электричество от выбрасывания яиц постельных клопов. Затем приготовьте серийные разведения инсектицидов, чтобы получить диапазон из пяти различных концентраций и контрольный раствор только с водопроводной водой каждый до объема 20 мл. Возьмите центрифужные пробирки объемом 50 мл, предварительно нарезанные на линии mL, а затем разрежьте мелкие ячейки на квадраты, достаточно большие, чтобы поместиться в колпачк.
Плотно закрутите сетку, исключая любые неровности в пробирках центрифуги, используя крышку пробирки центрифуги. Затем с помощью кисти поместите группу яиц постельных клопов на сетку внутри центрифужной трубки. Опустите группу яиц постельных клопов внутрь разрезанной центрифужной пробирки в концентрацию инсектицида на пять секунд.
Извлеките центрифужную трубку из раствора инсектицида. Поместите центрифужную трубку непосредственно на рабочую ткань, чтобы высушить сетку с яйцами внутри. После сушки извлеките группу яиц из центрифужной пробирки с помощью небольшой кисти с мелкой щетиной и поместите их в чистую чашку Петри с чистой фильтровальной бумагой.
Зарегистрируйте смертность яиц в течение 14 дней, чтобы убедиться, что все яйца успели вылупиться. Коррекция смертности при контрольном лечении с использованием формулы Эбботта. Введите зарегистрированную смертность с соответствующими концентрациями в программное обеспечение для анализа, чтобы рассчитать значения LC50.
Отделите группу из пяти взрослых самцов и пяти взрослых самок постельных клопов, которых кормили накануне, и поместите их в чашку Петри с фильтровальной бумагой. Дайте взрослым постельным клопам спариваться и откладывать яйца в течение восьми дней. Затем извлеките взрослых особей из чашек Петри и дайте яйцам вылупиться в первые возрасты в чашках Петри.
Соберите неоткормленные первые возрастные возрасты с помощью кисти, затем поместите их в новые чистые чашки Петри до проведения инсектицидного анализа. Пипетку по 150 мкл аликвот каждого из пяти предварительно приготовленных разведений инсектицида и воды для контрольной группы на индивидуальную фильтровальную бумагу. Равномерно распределите инсектицид, нанеся капли по всему краю и центру фильтровальной бумаги.
Поместите обработанную фильтровальную бумагу по отдельности поверх отдельных панелей из оргалита. Выпустите группы первых возрастов на отдельные фильтрующие бумаги, пока они еще влажные инсектицидом, и накройте первые возрасты перевернутым дном чашки Петри и положите груз на верхнюю часть чашки Петри, чтобы предотвратить побег постельных клопов первого возраста. Регистрируйте смертность постельных клопов первого возраста после 24 часов воздействия всех концентраций инсектицидов.
Коррекция смертности при контрольном лечении с использованием формулы Эбботта. Введите записанные данные о смертности и концентрациях в аналитическое программное обеспечение для расчета значений LC50. Процентная реакция или смертность яиц постельных клопов штамма Харлин на пять различных концентраций метоклоприда бета-цифлутрина увеличивалась по мере увеличения дозы.
Смертность достигала 100% при самой высокой испытанной концентрации. После просмотра этого видео вы должны лучше понять, как оценить эффективность инсектицида против яиц постельных клопов и первых возрастов.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
Это исследование представляет протокол для оценки эффективности инсектицидов против яиц и первых стадий клоп-подорожников. Метод направлен на решение проблем, связанных с оценкой эффективности инсектицидов на незрелых стадиях развития, которые часто не учитываются в традиционных оценках.
Evaluating insecticide efficacy across all life stages, including eggs and early instars, is critical for comprehensive pest control strategies in biopharma and public health R&D. This method enables quantitative assessment of toxicological impact on immature bed bug stages, supporting target validation and mechanistic de-risking in vector control programs. By generating concentration-response data and LC50 values for non-adult life stages, the approach improves predictive confidence in early-stage discovery and portfolio prioritization for novel insecticidal compounds.
The method integrates into the discovery continuum from early target validation through lead identification and preclinical evaluation, particularly for vector control and public health insecticide development.