27 апреля 2017 г.
Хондрогенез из стволовых клеток требует тонкой настройки условия культивирования. Здесь мы представляем магнитный подход для конденсации клеток, существенный шаг для инициирования хондрогенеза. Кроме того, мы покажем, что динамическое Созревание в биореакторе применяется механическое раздражение на клеточные конструкции и повышает хрящевой внеклеточный матрикс.
Общей целью этого метода магнитной агрегации клеток и динамического созревания является улучшение in vitro хондрогенеза мезенхимальных стромальных клеток или МСК. Магнитная агрегация стволовых клеток вместо хондрогенеза в виде конденсации клеток является ранним ключевым этапом процесса регенерации хряща. После того, как стволовые клетки заключены в каркасы, скаффолды могут быть перемещены в клеточный биореактор для оценки динамического созревания клеток.
Важный метод динамики может быть применен к другим биосистемам, таким как мышечная, сердечная или сосудистая коррекция. Но, как вы увидите, он очень хорошо подходит для регенерации хряща. Визуальная демонстрация магнитного посева клеток и динамического созревания клеток с использованием реального биореактора имеет решающее значение, поскольку эти два метода трудно изучить только с помощью текстовых инструкций.
Чтобы сконструировать микромагнитное устройство для формирования заполнителя, сначала вставьте магнитный наконечник диаметром 750 микрометров в каждое трехсантиметровое отверстие в алюминиевой пластине толщиной шесть миллиметров и поместите пластину на постоянный неодимовый магнит. Чтобы сконструировать устройство для засева лесов, сначала разрежьте твердый полистирол на квадраты площадью 2,4 квадратных сантиметра и вставьте магниты диаметром три миллиметра и шесть миллиметров на равном расстоянии на поверхность площадью 1,6 квадратного сантиметра. Затем поместите устройство на постоянный неодимовый магнит.
Чтобы пометить человеческие МСК, сначала культивируйте стволовые клетки в полной питательной среде МСК при температуре 37 градусов Цельсия и 5% углекислого газа до тех пор, пока они не станут слитыми на 90%. Отсадите, а затем промойте клетки сывороткой трех RPMI средой без глютамина и добавьте 10 миллилитров раствора наночастиц оксида железа на 150 квадратных сантиметровых колб для культуры для 30-минутной инкубации в инкубаторе для клеточных культур. В конце инкубации промойте клетки в течение пяти минут сывороткой со средой трех RPMI без глутамина, чтобы усвоить наночастицы, все еще прикрепленные к плазматической мембране.
Затем замените RPMI в каждой колбе 25 миллилитрами полной питательной среды MSC и верните клетки в инкубатор для клеточных культур на ночь. На следующее утро отделите магнитные элементы восемью миллилитрами 05% трипсина-ЭДТА в колбе. И собрать диссоциированные клетки методом центрифугирования.
Подвешиваем гранулы для подсчета и помещаем стеклянное дно 35 миллиметровой клеточной культуры в чашку Петри сверху каждого магнитного устройства. Для магнитного формирования агрегатов добавьте в каждую чашку Петри по три миллилитра хондрогенной среды и аккуратно внесите не более восьми микролитров в 2,5 раза по 10 на 5-ю меченые ячейки на один агрегат. Очень важно, чтобы клетки откладывались не слишком медленно и не слишком быстро.
И не слишком близко и не слишком далеко от магнетизма. Когда все агрегаты будут размещены, дайте сфероидам образоваться в течение 20-30 минут без помех. Затем переложите агрегаты в инкубатор для клеточных культур.
В тот же день сформировать агрегаты путем центрифугирования 2,5 раза по 10 до 5-го меченых стволовых клеток в конических пробирках объемом 15 миллилитров с 1,5 миллилитровыми хондрогенными средами. Для магнитного засеменения каркасов помещают по одному высушенному пуллулан/декстрановому полисахаридному пористому каркасу в чашку Петри и разводят в 2 раза по 10-6-ю меченые клетки в 350 микролитрах хондрогенной среды без TGFbeta3. Осторожно наведите клетки пипеткой на каркасы и инкубируйте структуры при температуре 37 градусов Цельсия, чтобы обеспечить полное проникновение клеток.
Через пять минут осторожно добавьте три миллилитра хондрогенной среды в чашку Петри и верните каркасы в инкубатор для клеточных культур на четыре дня, чтобы позволить клеткам мигрировать через поры каркаса. В тот же день также засейте еще один набор скаффолдов с 2 раза по 10 до 6-й меченых стволовых клеток, как показано на рисунке, и инкубируйте клетки без магнита для получения равномерно засеянных скаффолдов в качестве положительного контроля. Для хондрогенеза в скаффолды на 5-й день удалите магнитное устройство со всех скаффолдов и верните статические скаффолды в инкубатор для клеточных культур до 25-го дня, меняя среду два раза в неделю.
Для динамической клеточной культуры также на пятый день отрежьте силиконовые трубки до соответствующей длины в соответствии с инструкциями производителя и переместите трубки, камеру для культуры на 500 миллилитров, двухсторонние ротаторы и клетки в стерильную станцию микробиологической безопасности. Следуя инструкциям производителя, подключите трубку к двусторонним вращателям в камере для культивирования. Затем с помощью стерильного шпателя аккуратно перенесите два клеточных каркаса в каждую клетку.
Когда все каркасы будут перенесены, вставьте клетки через иглы в крышку, чтобы они не двигались во время вращения. И заполните камеру культуры хондрогенной средой. Используйте стерильную антисептическую технику при подготовке камер, чтобы избежать загрязнения любого из инструментов или лесов.
Далее вставьте клетки в камеру, а затем закройте камеру и включите перистальтический насос, чтобы заполнить трубку хондрогенной средой и устранить пузырьки воздуха. Поместите и закрепите заполненную камеру внутри двигателя биореактора и включите компьютер, который управляет вращением манипулятора и камеры. Затем примените скорость вращения пять оборотов в минуту к манипулятору и камере и отрегулируйте перистальтический насос на скорость потока 10 оборотов в минуту для непрерывной подачи ячеистых каркасов.
Чтобы создать конструкцию 3D агрегата без скаффолда, на восьмой день инициируйте слияние, поместив два агрегата в контакт в хондрогенной среде до восьми дублей. Затем на 11-й день объедините два четверных, чтобы сформировать четыре четверняшки, и сформируйте окончательную структуру на 15-й день, соединив четыре четверки. Ткани, полученные в результате магнитного синтеза, демонстрируют значительное увеличение экспрессии коллагена II по сравнению с гранулами, полученными центрифугированием.
С повышенным трендом на агрегантное выражение. Для целлюляризованных статических скаффолдов наблюдается увеличение экспрессии агреганта и коллагена II при использовании магнитного посева, по сравнению с каркасом, затравленным без магнитных сил. Интересно, что экспрессия коллагена II намного выше, когда магнитное затравливание сочетается с динамической дифференцировкой.
Гистологический анализ с использованием толуидинового синего показывает, что последовательное магнитное слияние 16 агрегатов демонстрирует обильное отложение глюкозаминовых гликанов. Кроме того, в каркасах с магнитным посевом содержание глюкозаминагликана выше при дифференцировке каркасов в биореакторе, чем при их статическом культивировании. После освоения агрегация магнитных элементов может быть завершена за два часа, если все выполнено правильно.
При попытке выполнить эту процедуру важно помнить о ресуспендии меченых клеток в как можно меньшем объеме, чтобы облегчить образование агрегатов. После магнитного посева каркасов может быть выполнено динамическое созревание с использованием собственно биореактора для улучшения экспрессии новых синтезированных хондроцитов. С момента своего развития этот метод проложил путь исследователям в области регенеративной медицины к изучению регенерации суставного хряща у человека.
После просмотра этого видео у вас должно сложиться хорошее представление о том, как конструировать магнитные устройства, мечить стволовые клетки из агрегатов стволовых клеток, магнитно засеивать каркасы и использовать настоящий биореактор. Не забывайте, что работа с клетками и тканями человека может быть чрезвычайно опасной, и что всегда следует принимать меры предосторожности, такие как ношение перчаток, лабораторных халатов и защитных очков.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
В данном исследовании представлен магнитный подход к конденсации мезенхимальных стромальных клеток (МСК) для усиления хондрогенеза. Метод предполагает динамическое созревание в биореакторе с применением механической стимуляции для повышения продукции внеклеточного матрикса.
Магнитная агрегация стволовых клеток позволяет преодолеть основной барьер в регенерации хрящевой ткани, обеспечивая контролируемую конденсацию клеток, которая является необходимым условием для хондрогенеза. В сочетании с динамическим созреванием в биореакторе данный подход усиливает отложение внеклеточного матрикса, что повышает прогностическую ценность моделей in vitro для снижения рисков при разработке стратегий восстановления хряща. Этот метод способствует валидации мишеней и разработке анализа, предоставляя воспроизводимую и масштабируемую систему для оценки хондрогенного потенциала в условиях физиологически значимых механических воздействий.
Данный метод интегрируется в общий процесс исследования — от конденсации стволовых клеток и формирования трехмерной ткани до динамического созревания, что способствует идентификации перспективных соединений и доклинической оценке кандидатов для регенерации хрящевой ткани.