26 января 2017 г.
Мы описываем здесь новый, надежный и эффективный метод тандемной аффинной очистки (TAP) для экспрессии, выделения и характеристики белковых комплексов из эукариотических клеток. Этот протокол может быть использован для биохимической характеристики дискретных комплексов, а также для идентификации новых интеракторов и посттрансляционных модификаций, которые регулируют их функции.
Общая цель этого метода тандемной аффинной очистки заключается в выделении белковых комплексов, экспрессируемых эукариотическими клетками, для биохимической характеристики и молекулярных сборок, а также идентификации новых интеракторов и посттрансляционных модификаций, которые регулируют их функцию. Этот метод позволяет проводить очистку интактных белковых комплексов из эукариотических клеток для выявления новых интеракторов и регуляторных посттрансляционных модификаций, которые тонко настраивают их функцию. Основное преимущество этой методики заключается в том, что она позволяет обеспечить высокую чистоту и выход белковых комплексов для последующего применения in vitro с целью изучения их функции и активности.
Клетки собираются путем аффинной очистки STREP через 48 часов после трансфекции. Удалите среду и добавьте восемь миллилитров холодной PBS. Проводите пипеткой вверх и вниз, чтобы отделить ячейки от пластины.
Соберите и перенесите клеточную суспензию в 15-миллилитровую пробирку и вращайте клетки при 800-кратном g в течение четырех минут при четырех градусах Цельсия. Удалите надосадочную жидкость PBS. Вращайте при 800 g в течение одной минуты при четырех градусах Цельсия, чтобы устранить остатки PBS.
Чтобы начать эту процедуру, ресуспендируйте каждую клеточную гранулу в объеме, в пять раз превышающем объем клеточной гранулы буфера пассивного лизиса или PLB. Перенесите клеточную суспензию в микроцентрифужную пробирку объемом 1,5 миллилитров. Кратковременно перебейте суспензию в вихрь, и взбейте в течение 30 минут при температуре четыре градуса Цельсия.
Уменьшите клеточную суспензию при 10 000 умноженных на g в течение 10 минут при четырех градусах Цельсия. Перелейте растворимый лизат в новую микроцентрифужную пробирку объемом 1,5 миллилитра и выбросьте клеточную гранулу. Сохраните 10% от конечного объема растворимого лизата на входе STREP-AP и храните его при температуре четыре градуса Цельсия.
Важно использовать шарики STREP для первого этапа аффинной очистки, потому что комплексы, извлеченные с помощью шариков STREP, восстанавливают значительно больше белка, чем те, которые были поглощены с помощью шариков FLAG. С помощью наконечника пипетки с широким горлышком удалите необходимое количество 50% суспензии STREP для аффинной очистки. Вращайте при перегрузке в 1,500 раз g в течение двух минут при четырех градусах Цельсия.
Удалите надосадочную жидкость и добавьте в бусины 500 микролитров PLB. Взбейте смесь бусин в течение пяти минут при температуре четыре градуса Цельсия. Снова убавьте обороты.
После третьей промывки удалите надосадочную жидкость и повторно суспендируйте шарики в PLB до конечного объема n умножить на 40 микролитров, где n — количество образцов. Добавьте 40 микролитров суспензии из гранул 50% STREP в каждый образец лизата клеток и измельчайте в течение двух часов при температуре четыре градуса Цельсия. Во время этого производства и восстановления белка можно использовать несколько пластин клеток, и одни и те же образцы белка, лизированные из разных пластин, могут быть объединены с одной порцией гранул во время аффинной очистки STREP.
После того какклеточный лизат и суспензионные смеси STREP будут инкубированы в течение двух часов, уменьшите их при 1500 g в течение двух минут при четырех градусах Цельсия. Сохраните надосадочную жидкость при прохождении STREP AP и храните при температуре четыре градуса Цельсия. Добавьте 500 микролитров промывочного буфера STREP AP в один раз в бусины.
Измельчите шарики в буферной смеси в течение пяти минут при четырех градусах Цельсия и центрифугируйте при 1500 г в течение двух минут при четырех градусах Цельсия. Выбросьте надосадочную жидкость и снова промойте 500 микролитрами буфера для стирки STREP AP. После третьей промывки переложите раствор в новую микроцентрифужную пробирку объемом 1,5 миллилитра, чтобы снизить белковый фон.
Промойте четвертый раз с помощью буфера для стирки STREP AP. После отжима снимите надосадочную жидкость и добавьте 500 микролитров смывочного масла два. Уравновесьте бусины, перевернув трубки, а затем вращайте вниз со скоростью 1,500 g в течение двух минут при четырех градусах Цельсия.
Выбросьте надосадочную жидкость. Разбавьте интересующий белок 50 микролитрами элюирующего буфера STREP. Вихрь при 800 об/мин в течение 15 минут при четырех градусах Цельсия.
Крутите бусины при 1,500 g в течение одной минуты при четырех градусах Цельсия. Соберите надосадочную жидкость. Эта фракция соответствует элюирующему образцу STREP AP.
Сохраните фракцию бусин при четырех градусах Цельсия для повторного вымывания. Аликвота 10% элюирования STREP AP для окрашивания серебра и/или вестерн-блоттинга. Для увеличения количества исходного материала для последующей иммунопреципитации FLAG первый и второй элюции STREP могут быть объединены для более эффективного восстановления элюирования FLAG.
Начните эту процедуру с помощью наконечника пипетки с широким горлышком, чтобы перенести соответствующее количество раствора FLAG в микроцентрифужную пробирку. Вращайте при перегрузке в 1,500 раз g в течение двух минут при четырех градусах Цельсия. Снимите надосадочную жидкость и добавьте в бусины 500 микролитров буфера для стирки FLAG.
Вращайте при перегрузке в 1,500 раз g в течение двух минут при четырех градусах Цельсия. Выбросьте надосадочную жидкость и снова промойте с помощью буфера для стирки FLAG. После третьей промывки удалите надосадочную жидкость и снова суспендируйте шарики в буфере для промывки FLAG до конечного объема n умножить на 16 микролитров, где n — количество образцов.
Добавьте 16 микролитров суспензии для гранул FLAG к оставшемуся элюированию STREP AP и напейте на ночь при температуре четыре градуса Цельсия. После ночной инкубации суспензии гранул FLAG и элюирования STREP AP продолжайте иммунопреципитацию FLAG. Уменьшите суспензию борта FLAG при перегрузке в 1 500 раз g в течение двух минут при четырех градусах Цельсия.
Сохраните надосадочную жидкость при прохождении FLAG IP и храните при температуре четыре градуса Цельсия. Добавьте в бусины 500 микролитров буфера для стирки FLAG. Наденьте в течение пяти минут при четырех градусах Цельсия и центрифугируйте при 1500 умноженных на g в течение двух минут при четырех градусах Цельсия.
Выбросьте надосадочную жидкость и снова промойте 500 микролитрами буфера для стирки FLAG. После третьей промывки перелейте раствор белковых шариков в новую микроцентрифужную пробирку объемом 1,5 миллилитра, чтобы уменьшить фон. Промойте в четвертый раз с помощью буфера для стирки FLAG.
Снимите надосадочную жидкость с конечного отжима и добавьте в шарики 30 микролитров промывочного буфера FLAG, содержащего 200 нанограмм на микролитр пептида FLAG. Вихрь при 800 об/мин в течение двух часов при четырех градусах Цельсия. Через два часа уменьшите вес при перегрузке в 1 500 раз g в течение двух минут при четырех градусах Цельсия.
Соберите надосадочную жидкость и храните при температуре четыре градуса Цельсия в качестве элюирования FLAG IP. В этом видео к комплексу Cyclin-T1 CDK9 была применена аффинная очистка Tandem, или метод TAP. STREP меченный Cyclin-T1 и меченный FLAG CKD9 были сверхэкспрессированы в HEK293 T клетках.
Также был проведен реципрокный эксперимент с тегом STREP CDK9 и FLAG с тегом Cyclin-T1. Вестерн-блоттинг показывает, что FLAG, помеченный CKD9, коэлюированный с STREP, помечал Cyclin-T1 из гранул STREP, но не в отрицательном контроле, AP без STREP мечен Cyclin-T1. Оба белка были обнаружены в элюции FLAG, что еще раз подтвердило образование комплекса.
Взаимные результаты TAP показывают, что FLAG, помеченный Cyclin-T1, коэлюирован с STREP, мечен CDK9, что еще раз подтверждает, что взаимодействие Cyclin-T1 CDK9 не зависит от используемых эпитопов. Результаты ТАП и реципрокного ТАП также были проанализированы путем окрашивания серебром. Звездочками обозначены коэлюированные примеси.
FLAG помечен CKD9 с помощью STREP помечен Cyclin-T1 с бусин STREP, но не с контрольной AP.In последующего элюирования FLAG, STREP помечен Cyclin-T1 с помощью FLAG помечен CDK9 с бусин FLAG. Аналогично, FLAG помечал Cyclin-T1, коэлюированный с помощью STREP, помечал CDK9 на бусинах STREP, но не на контрольной AP. И белок-белковый комплекс был эффективно восстановлен после второго этапа FLAG IP. После освоения этой техники ее можно выполнить за два дня, начиная с того момента, когда клетки будут готовы к сбору, если она будет выполнена правильно.
При попытке выполнить эту процедуру важно помнить об увеличении количества клеточных пластин в эксперименте соответственно, чтобы обеспечить достаточное количество белка, которое может быть восстановлено и обнаружено. Например, идентификация новых регуляторных субъединиц и/или изучение посттрансляционных модификаций сложных субъединиц. После своего развития этот метод проложил путь исследователям, изучающим белок-белковые взаимодействия, к изучению новых интеракторов и посттрансляционных модификаций в эукариотических клетках.
После просмотра этого видео у вас должно сложиться хорошее понимание того, как выделять и характеризовать белки с помощью меток STREP и FLAG.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
В этой статье представлен новый метод тандема очистки с аффинностью (TAP), разработанный для эффективного выделения и характеристики белковых комплексов из эукариотических клеток. Метод позволяет определить новые интракторы и послесинтетические модификации, которые влияют на функцию белка.
Tandem affinity purification (TAP) using STREP- and FLAG-tagged proteins enables high-purity isolation of eukaryotic protein complexes, supporting target validation and mechanistic de-risking in early discovery. The method facilitates identification of novel interactors and post-translational modifications, improving predictive confidence in protein function and complex assembly. This approach reduces biological ambiguity in target selection and supports scalable workflows for lead identification and preclinical characterization.
The TAP method integrates into the discovery continuum from hypothesis testing through lead identification, enabling biochemical characterization of protein complexes prior to compound screening.