-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
<<<<<<< HEAD
K12 Schools
Biopharma
=======
K12 Schools
>>>>>>> dee1fd4 (fixed header link)

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Engineering
Плазмонная Ловушка и Высвобождение Наночастицы в мониторингу окружающей среды
Плазмонная Ловушка и Высвобождение Наночастицы в мониторингу окружающей среды
JoVE Journal
Engineering
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Engineering
Plasmonic Trapping and Release of Nanoparticles in a Monitoring Environment

Плазмонная Ловушка и Высвобождение Наночастицы в мониторингу окружающей среды

Full Text
7,971 Views
09:13 min
April 4, 2017

DOI: 10.3791/55258-v

Jung-Dae Kim1, Yong-Gu Lee2

1Division of Scientific Instrumentation,Korea Basic Science Institute (KBSI), 2School of Mechanical Engineering,Gwangju Institute of Science and Technology (GIST)

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Процесс изготовления микрочип, который включает в себя плазмонный пинцет здесь представлен. Микрочип позволяет визуализацию в запертой частицы для измерения максимальных отлова сил.

Общая цель этого эксперимента состоит в том, чтобы наблюдать за частицами в двух измерениях, как параллельных, так и ортогональных симметричной оси плазмонной нанодырочной структуры, и количественно оценить максимальную захватывающую силу системы. Этот метод может помочь ответить на вопросы в области наук о жизни, связанные с разработкой быстрого иммунологического анализа, захватом клеток и бактерий, анализом липосом и исследованиями высвобождения наночастиц лекарств. Основное преимущество этого метода заключается в том, что он позволяет контролировать движение частицы в двух измерениях: одно — по оси лазерного луча, а другое — в направлении, ортогональном ему.

Для начала изготовьте микроканальную форму с помощью стандартных фотолитографических техник и поместите пластину в чашку Петри диаметром 150 мм. Затем смешайте 10 частей основы PDMS с одной частью отвердителя и перемешивайте смесь в течение двух минут. После смешивания вылейте 100 миллилитров смеси PDMS на пластину.

Поместите чашку Петри в вакуумную камеру и потяните вакуум, чтобы удалить все пузырьки из PDMS. Затем поместите чашку Петри в духовку на два часа при температуре 80 градусов Цельсия, чтобы раствор PDMS застыл. Как только остынет, достаньте блюдо из духовки, и разрежьте по контурам микроканала PDMS лезвием бритвы, и отсоедините его от.

Затем с помощью 1,5-миллиметрового биопсийного перфоратора сформировайте 1,5-миллиметровые входные и выходные отверстия на каждом конце микроканала PDMS. Используйте перфоратор диаметром 0,3 мм, чтобы сформировать отверстие для одномодового оптоволоконного кабеля в центре микроканала. Начните с очистки имеющейся в продаже золотой пластины, как описано в сопроводительном текстовом протоколе.

Затем поместите пластину на прядильную машину и налейте 0,5 миллилитра гексаметилдисилазана на золотую пластину. Нанесите на пластину отжимное покрытие в течение 40 секунд при 3000 оборотах в минуту. Затем налейте 0,5 миллилитра положительного фоторезиста поверх гексаметилдисилазана с полимерным покрытием и нанесите на пластину дополнительное покрытие в течение 40 секунд при 3000 оборотах в минуту.

Снимите пластину с прядильной машины и поместите ее на горячую плиту на 90 секунд при температуре 110 градусов Цельсия, чтобы фоторезист стал мягким. Затем с помощью скотча закрепите пленочную маску на стеклянной пластине и поместите мягкую золотую пластину на подложку. Подвергните образец воздействию ультрафиолетового света в течение 4 с половиной секунд, чтобы растворить фоторезист и создать золотой прямоугольник длиной 400 микрон и шириной 150 микрон.

Далее погрузите золотую пластину в проявитель фоторезиста на одну минуту, чтобы удалить растворенный фоторезист. Затем промойте золотую пластину деионизированной водой и высушите ее с помощью газообразного азота. Погрузите золотую пластину в золотую травлю на 45 секунд, чтобы удалить обнаженный слой золота.

Затем промойте золотую пластину деионизированной водой и снова высушите с помощью газообразного азота. Затем погрузите пластину в титановый травитель на пять секунд, чтобы удалить обнаженный титан, затем еще раз промойте золотую пластину деионизированной водой и высушите ее газообразным азотом. Удалите остатки фоторезиста на золотой пластине, погрузив ее последовательно в ацетон, метанол и, наконец, в деионизированную воду на три минуты каждая.

Промойте пластину три раза деионизированной водой в течение 10 секунд каждый, а затем еще раз высушите пластину газообразным азотом. Затем поместите тарелку на горячую плиту на три минуты при температуре 120 градусов Цельсия, чтобы полностью удалить остатки влаги. Используя сфокусированный ионный пучок, измельчите 400-нанометровое наноотверстие в центре изготовленного золотого блока, как описано в сопроводительном текстовом протоколе.

Поместите микроканал PDMS и золотую пластину в плазменную камеру. Обрабатывайте соприкасающиеся поверхности в течение одной минуты с помощью кислородной плазмы. Закрепите золотую пластину на подложке стенда выравнивателя.

Затем с помощью камеры на выравнивателе найдите центры отверстия кабеля SMF и отверстия в золотом блоке так, чтобы они были выровнены по одной оси. Поднимите ручную ступень, чтобы объединить две части. Затем налейте два миллилитра смешанного раствора PDMS в чашку Петри и покройте чашку в течение 30 секунд при 1000 оборотах в минуту.

Затем возьмите вырезанный микрочип и поместите поверхность, которая будет расположена на микроскопе, в PDMS, который находится на чашке Петри. Поместите чашку Петри в духовку на один час при температуре 80 градусов Цельсия, чтобы раствор PDMS застыл. После охлаждения обрежьте границу микрочипа и PDMS с помощью лезвия бритвы, а затем отсоедините его от чашки Петри.

Сначала подключите объектив с 40-кратным увеличением к креплению объектива микроскопа на одномодовом соединителе оптоволоконного кабеля. Затем закрепите одномодовый оптоволоконный кабель на оптоволоконном зажиме кабельного соединителя. Выровняйте падающий лазерный луч, чтобы заполнить заднюю апертуру линзы объектива.

Затем сфокусируйте лазерный луч на сердечнике кабеля, отрегулировав трехосевой ручной столик, установленный на соединителе. Измерьте мощность лазера перед установкой на краю оптоволоконного кабеля, так как фиксированный оптоволоконный кабель на микрочипе не может быть отсоединен. Затем вставьте противоположный конец кабеля в отверстие для кабеля микросхемы.

Вручную выровняйте оптоволоконный кабель с помощью визуальной обратной связи так, чтобы он был перпендикулярен золотому блоку, в котором находится наноотверстие. Конец вставленного оптоволоконного кабеля не должен входить в микроканал, чтобы он не блокировал поток жидкости. Наконец, загерметизируйте отверстие кабеля эпоксидным клеем, чтобы предотвратить утечку протекающего раствора частиц из зазора 87,5 микрометров между отверстием кабеля и оболочкой оптоволоконного кабеля.

Присоедините к шприцевому микронасосу шприц, содержащий раствор частиц полистирола диаметром 100 нанометров. Далее подсоедините трубки к входному и выходному отверстиям микросхемы. После подключения установите шприцевой насос на скорость 20 микрометров в секунду и введите раствор частиц в микрочип.

Далее включите люминесцентную лампу и убедитесь, что в канале можно наблюдать флуоресцентную частицу. Когда раствор частиц выйдет из выходного отверстия микрочипа, уменьшите скорость насоса до 3,4 микрометров в секунду. Затем включите лазерный источник так, чтобы он излучал лазер в нанодырку.

Это приведет к захвату флуоресцентной частицы на краю нанодырки. Наконец, увеличивайте скорость жидкости с шагом 0,4 микрометра в секунду, управляя микронасосом до тех пор, пока захваченные частицы не выйдут наружу. Используйте эту информацию для получения максимальной силы захвата для каждой интенсивности лазера.

Здесь показана увеличенная версия микроканальной установки, показывающая выравнивание деталей и расположение наноотверстия. Когда 100-нанометровые флуоресцентные частицы полистирола проходят через микроканал, они захватываются лазером в нанодырке. Также показаны незахваченные частицы, когда они проходят мимо нанодырки, в то время как захваченная частица остается на месте.

Как только скорость потока увеличивалась, захваченные частицы могли вырваться наружу. После нескольких практик процедуры можно проводить в течение примерно 14 часов, если они выполнены правильно. При попытке выполнить эту процедуру важно улучшить размер микрочипа, шероховатость поверхности покрытия PDMS.

После просмотра этого видео у вас должно сложиться хорошее представление о том, как следить за частицами как в параллельном, так и в ортогональном направлениях к симметричной оси плазмонной наноструктуры.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Машиностроение выпуск 122 Плазмоника плазмонный пинцет оптические ловушки оптические силы микрофлюидики наноотверстие иммобилизация наночастиц

Related Videos

Использование плазмонных наноструктур и фотонных кристаллов для работы с улучшенными микро-и наночастиц Манипуляция

09:29

Использование плазмонных наноструктур и фотонных кристаллов для работы с улучшенными микро-и наночастиц Манипуляция

Related Videos

12.6K Views

Оптический захват наночастиц

13:39

Оптический захват наночастиц

Related Videos

22.9K Views

Анализируя движение Навплия ' Артемии Салина 'Оптическими слежения плазмонных наночастиц

05:52

Анализируя движение Навплия ' Артемии Салина 'Оптическими слежения плазмонных наночастиц

Related Videos

10.9K Views

Изготовление и эксплуатация нанооптических конвейерной

11:10

Изготовление и эксплуатация нанооптических конвейерной

Related Videos

12K Views

Треппинг микро частиц в Nanoplasmonic оптической решетки

07:20

Треппинг микро частиц в Nanoplasmonic оптической решетки

Related Videos

7K Views

Строительство и эксплуатация свет driven золото Nanorod Ротари двигательной системы

09:48

Строительство и эксплуатация свет driven золото Nanorod Ротари двигательной системы

Related Videos

9.3K Views

Оптическое улавливание плазмонных наночастиц для характеристик рамановской спектроскопии in situ с усиленной поверхностью

06:19

Оптическое улавливание плазмонных наночастиц для характеристик рамановской спектроскопии in situ с усиленной поверхностью

Related Videos

2.9K Views

Мониторинг конформационной динамики одиночных немодифицированных белков с помощью плазмонного нанопинцета

09:33

Мониторинг конформационной динамики одиночных немодифицированных белков с помощью плазмонного нанопинцета

Related Videos

1.4K Views

Поликристаллического кремния тонкопленочные солнечные элементы с Плазмонных повышенной световой захвата

09:32

Поликристаллического кремния тонкопленочные солнечные элементы с Плазмонных повышенной световой захвата

Related Videos

19.2K Views

Строительство микроскопа высокого разрешения с обычными и голографические оптические возможности отлова

09:12

Строительство микроскопа высокого разрешения с обычными и голографические оптические возможности отлова

Related Videos

12.6K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code