2 марта 2017 г.
Здесь мы приводим протокол для мозаичной техники маркировки, которая позволяет визуализировать нейронов, полученных из общей клетки-предшественника в двух различных цветах. Это облегчает нейронную анализ клонов с возможностью рождения-знакомства отдельных нейронов и изучения функции гена в одних и тех же нейронов разных людей.
Общая цель этого протокола MARCM с двумя пятнами заключается в проведении анализа клеточных линий с высоким разрешением и улучшении исследований функций генов. Мозговая ткань состоит из огромного количества разнообразных нейронов, поэтому сложно изучить механизм, лежащий в основе того, как нейроны собираются вместе во время развития. Основное преимущество этого метода заключается в том, что нейроны, полученные от общих предшественников нейронов, могут быть помечены двумя различными цветами.
Которые позволяют извлекать информацию об образовании отдельных нейронов. Таким образом, этот метод может помочь исследователям изучить клеточный и молекулярный механизм, лежащий в основе развития нейронов. Демонстрировать процедуру сегодня будет Пей-Чи Чунг.
Техник из лаборатории профессора Юй. Начните с смешивания готовых самцов и самок MARCM с двойным пятном в флаконе с кормом для мух со свежими дрожжами во флаконе. Поддерживайте готовность скрещенных двухпятнистых мух MARCM при температуре 25 градусов Цельсия в течение двух дней, чтобы повысить вероятность спаривания перед сбором оплодотворенных яиц.
Чтобы избежать переполнения, когда личинки вылупятся, выложите готовые мухи MARCM с двойным пятном и переложите их в свежедрожжевые флаконы. Культивируйте двухпятнистое потомство MARCM, пока они не достигнут нужной стадии развития. Здесь мухи на стадии личинки подвергаются тепловому шоку, чтобы вызвать выражение лица.
Перенесите флаконы с мухами на водяную баню при температуре 37 градусов Цельсия на 10, 20, 30, 40 и 50 минут, чтобы определить оптимальный тепловой шок для выражения флиппаса. Для создания интересующих вас клонов MARCM с двойным пятном. Время теплового шока определяет стадию генерации расчистки, в то время как период теплового шока определяет, сколько вырубок будет создано.
Культивируйте животных с двойным пятном MARCM при температуре 25 градусов Цельсия, до желаемой стадии развития. Затем приступают к окрашиванию и монтажу. Добавьте PBS в защитные тарелки для щипцов.
А затем переложите животных MARCM с двойным пятном в посуду. Глядя в диссекционный микроскоп, с помощью щипцов препарируйте мозг животных с двойным пятном MARCM. Для начала удалите голову из тела мухи.
Затем аккуратно удалите кутикулу, не повреждая мозг. Далее аккуратно удалите трахеи, которые выглядят как волокна белого цвета. Перенесите мозги в стеклянную пятнистую пластину, содержащую 4% формальдегида и PBS.
И закрепить при комнатной температуре на 20 минут. Начните процедуру окрашивания с трех промывки мозгов мухи 1%-ным ПБТ. А затем стирка с 1%-ным ПБТ три раза.
С встряхиванием по 30 минут каждый раз. Инкубируйте мозг мухи со смесью первичных антител в течение ночи при четырех градусах Цельсия или в течение четырех часов при комнатной температуре. Промойте и промойте мозги мухи три раза каждый с 1% ПБТ, встряхивая, как и раньше.
Затем инкубируйте мозг мухи со смесью вторичных антител в течение четырех часов при комнатной температуре или в течение ночи при четырех градусах Цельсия. После промывки и промывки мозгов, как и раньше, закрепите мозги на микропредметном стекле с антигашающим реагентом. А затем поставьте покровное стекло, чтобы накрыть и защитить мозги мухи.
Запечатайте края микрозащитного стекла и микрослайда прозрачным лаком для ногтей. Наконец, получите флуоресцентные изображения клонов MARCM с двойным пятном из образцов с помощью выбранной системы конфокальной микроскопии. На этом рисунке показаны результаты работы клона MARCM с двойным пятном, нейронов антеродорсальной обонятельной проекции VL2p, полученных путем индукции флиппазы.
Опосредует митотическую рекомбинацию в нейробласт adPN на эмбриональной стадии. На этой первой диаграмме показана картина нейрогенеза. На этом изображении головного мозга, полученном с помощью конфокального микроскопа, VL2p adPN показаны зеленым цветом и связаны с многоклеточными нейробластными adPN пурпурного цвета.
На этом изображении показаны клетки в боковом роге. Здесь показана морфология нейронов антенной доли. На этом рисунке показаны данные для adPN DL1.
Как видно из приведенного примера, adPN DL1 появляются на более поздних этапах разработки, чем adPN VL2p. Индукция двухпятнистых клонов MARCM DC3 adPNs показывает, что этот тип нейронов появляется на более поздних этапах развития. На этом изображении показано, что событие MARCM в двойном пятне происходит в негативном нейроне GAL4 в линии adPN.
После освоения этот метод может помочь исследователям проанализировать нейронную линию и предоставить различные маркеры для отличия нейронов от клона нейробласта. Кроме того, MARCM с двойным пятном может производить гомозиготные мутантные клоны для изучения молекулярного механизма. На гетерозиготном генетическом фоне.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
В данной статье представлен протокол twin-spot MARCM, разработанный для высокоразрешающего анализа клеточных линий и изучения функций генов в нейронах. Маркируя нейроны, происходящие от общих клеток-предшественников, двумя различными цветами, исследователи могут эффективно отслеживать развитие и определять время появления отдельных нейронов.
Понимание нейрональных линий и функций генов в модельных организмах дает фундаментальные сведения для валидации мишеней при разработке нейротерапевтических средств. Метод twin-spot MARCM позволяет проводить высокоразрешающее картирование порядка рождения нейронов и фенотипический анализ генетически идентичных нейронов у разных особей, что способствует снижению механистических рисков на ранних этапах поиска. Этот подход повышает прогностическую достоверность, связывая механизмы развития с функциональными исходами в системах, релевантных для заболевания.
Метод twin-spot MARCM интегрируется в общий процесс исследований — от ранней валидации мишеней до доклинических механистических исследований, особенно при изучении нейроонтогенетических нарушений, где критически важными являются происхождение и связность нейронов.