31 июля 2017 г.
Этот протокол был разработан для количественного определения компонентов микроокружения опухоли при резекциях пациентов с глиобластомой с использованием хромогенной иммуногистохимии и ImageJ.
Общая цель этого протокола заключается в количественной идентификации компонентов микроокружения опухоли при резекции пациента с глиобластомой с использованием хромогенной иммуногистохимии и изображения J. Этот метод может помочь ответить на ключевые вопросы в области микроокружения опухоли, например, как эти компоненты выглядят в образцах пациентов и как мы можем определить физиологически значимые соотношения клеток. Основное преимущество этой методики заключается в том, что она проста для анализа в образцах пациентов. Применение этого метода распространяется на выяснение недостаточно охарактеризованного, сложного микроокружения опухоли глиобластомы.
Как правило, люди, плохо знакомые с этим методом, испытывают трудности, потому что время хромогенного развития необходимо тщательно контролировать, чтобы предотвратить чрезмерное развитие и насыщение ткани. Начните протокол с выполнения промывок, указанных в сопроводительном текстовом протоколе. Разбавить демаскирующий раствор антигена высокого pH на основе триса и дистиллированную воду в соответствии с рекомендациями производителя.
Перейдите к извлечению антигена, опосредованного нагреванием, добавив разбавленный демаскирующий раствор в негерметичный сосуд для микроволновой печи. Поместите в сосуд горки. Затем поместите сосуд с горками в микроволновую печь.
Далее прокипятите сосуд в течение 20 минут на высокой мощности. Следите за уровнем испарения жидкости и при необходимости пополняйте емкость дистиллированной водой. Дайте образцам остыть в растворе в течение одного часа при комнатной температуре.
Обведите образец ткани гидрофобным средством, чтобы свести к минимуму объем реагентов, необходимых для покрытия образца. Затем нанесите достаточное количество раствора для пермеабилизации, от 100 до 200 микролитров, чтобы покрыть образец ткани. Удалите и выбросьте раствор и снова покройте образец ткани раствором для пермеабилизации.
Инкубируйте образцы при комнатной температуре с блокирующим раствором в течение одного часа. Затем инкубируйте образцы в течение ночи при четырех градусах Цельсия с первичными антителами, разведенными в блокирующем растворе. На следующий день обнаруживают первичные антитела с помощью полимерного реагента пероксидазы хрена, соответствующего животному-хозяину с первичным антителом.
Нанесите внутрь достаточное количество раствора для пермеабилизации, чтобы покрыть образец ткани, и инкубируйте образец в течение пяти минут. Удалите и выбросьте раствор и покройте образец ткани раствором для пермеабилизации еще раз на пять минут. Инкубируйте предметные стекла в 0,3%-ной перекиси водорода и IX TBS в течение 15 минут.
Проявляйте образцы с помощью пероксидазы диаминобензидина или субстрата dab в течение двух-10 минут до достижения желаемой интенсивности окрашивания. Для идентификации ядра клеток проведите контрокрашивание образцов, например, гематоксилином, следуя протоколу производителя. Обезвоживайте образцы с помощью 100% этанола и ксилола.
Наконец, закрепите образцы на постоянной основе с помощью монтажного носителя. Две области, представляющие интерес в наших резекциях опухолей, первичная опухоль Bulk и прилегающие области, в основном состоящие из здоровой ткани с диффузными вторгшимися раковыми клетками, были идентифицированы сотрудничающим невропатологом на образцах пациентов, окрашенных гематоксилином и эозином. Хромогенная иммуногистохимия выявила положительное окрашивание астроцитов, микроглии и олигодендроцитов в каждом образце пациента.
Мы проводили окрашивание без первичных антител для отрицательного контроля. Производитель рекомендовал дальнейшие разведения, прежде чем остановиться на разведении от 1 до 200 в связи с оптимальным положительным окрашиванием клеточного тела и процессом с минимальным фоном для антитела против ALDH 1l1. Используя изображение J, был количественно определен процент покрытия OSP-1 положительным окрашиванием олигодендроцитов, чтобы в конечном итоге сравнить различия в интересующих нас регионах.
После того, как соответствующий порог был применен к изображению, процент покрытия от порога может быть измерен и сравнен для нескольких пациентов. Пять смежных и объемных областей образцов пациентов с глиобластомой или ГБМ, а также здоровая ткань мозга сравнивались на предмет покрытия первого белка, специфичного для олигодендроцитов, или процентного охвата OSP1. После освоения техника окрашивания может быть выполнена за четыре часа в первый день и за два часа во второй день, если она выполнена правильно.
Пытаясь выполнить эту процедуру, важно помнить о тщательном контроле интенсивности окрашивания тканей и увлажненности.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
Этот протокол описывает метод для количественной идентификации компонентов микроокружения опухоли в резекциях пациентов с глиобластомой с использованием иммуногистохимии и программы ImageJ. Эта техника направлена на предоставление представления о сложном микроокружение опухоли глиобластомы.
Quantitative analysis of the tumor microenvironment in patient-derived glioblastoma samples enables mechanistic de-risking of glial cell targets in neuro-oncology drug discovery. By providing reproducible, region-specific measurements of astrocytes, microglia, and oligodendrocytes, this method supports target validation and phenotypic screening in disease-relevant systems. It enhances predictive confidence in preclinical models by linking microenvironment composition to therapeutic response and resistance mechanisms.
This method fits within the discovery continuum from target hypothesis testing to lead optimization, particularly for neuro-oncology programs focused on microenvironment modulation.