-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Genetics
Первичных зародышевых клеток Трансплантация для ТРИФОСФАТЫ/Cas9-основе скачка в Xenopus
Первичных зародышевых клеток Трансплантация для ТРИФОСФАТЫ/Cas9-основе скачка в Xenopus
JoVE Journal
Genetics
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Genetics
Primordial Germ Cell Transplantation for CRISPR/Cas9-based Leapfrogging in Xenopus

Первичных зародышевых клеток Трансплантация для ТРИФОСФАТЫ/Cas9-основе скачка в Xenopus

Full Text
8,794 Views
05:34 min
February 1, 2018

DOI: 10.3791/56035-v

Ira L. Blitz1

1Department of Developmental and Cell Biology,University of California, Irvine

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

The leapfrogging technique facilitates the creation of mutant lines for essential genes in embryogenesis. This method allows for the generation of homozygous null mutants in the F1 generation, overcoming the challenges posed by lethal mutations.

Key Study Components

Area of Science

  • Developmental Genetics
  • Genetic Engineering
  • Embryology

Background

  • Essential genes are critical for survival and pose challenges in creating mutant lines.
  • Traditional methods may not work for genes required during early development.
  • Leapfrogging combines genome editing with germ cell transplantation.
  • This technique enables the study of essential genes without lethality.

Purpose of Study

  • To demonstrate the leapfrogging technique for generating mutant lines.
  • To provide a method for studying essential genes in developmental processes.
  • To facilitate the creation of homozygous null mutants efficiently.

Methods Used

  • Microinjection of Cas9-sgRNA complexes into Xenopus embryos.
  • Transplantation of germ cells from injected embryos to recipient embryos.
  • Development monitoring of embryos at various stages.
  • Use of agarose dishes for embryo grafting.

Main Results

  • Successful generation of wild-type animals carrying germline mutations.
  • Efficient production of homozygous null mutants in the F1 generation.
  • Demonstration of the transplantation step in the leapfrogging process.
  • Validation of the method's effectiveness in overcoming lethality.

Conclusions

  • Leapfrogging is a promising technique for studying essential genes.
  • This method allows researchers to bypass the lethality of essential gene mutations.
  • Further applications of this technique could enhance developmental genetics research.

Frequently Asked Questions

What is leapfrogging in genetic research?
Leapfrogging is a technique that combines genome editing with primordial germ cell transplantation to create mutant lines for essential genes.
How does leapfrogging help in studying essential genes?
It allows for the generation of homozygous null mutants in the F1 generation, circumventing the lethality associated with essential gene mutations.
What organisms are used in the leapfrogging technique?
The technique is demonstrated using Xenopus embryos.
What are the main steps involved in the leapfrogging process?
The main steps include microinjecting embryos, allowing development, and performing germ cell transplantation.
What advantages does leapfrogging offer over traditional methods?
It provides a way to study essential genes without the risk of lethality, enabling more comprehensive genetic analysis.
Can leapfrogging be applied to other species?
While demonstrated in Xenopus, the principles may be adaptable to other model organisms in genetic research.

Генов, необходимых для выживания создают технические препятствия для создания мутантных линий. Скачка обходит летальность, объединяя генома, редактирование с помощью первичных зародышевых клеток трансплантации для создания одичал тип животных, перевозящих герминальных мутаций. Прорыва также позволяет эффективно поколения гомозиготных null мутантов в поколении1 F. Здесь трансплантация шаг продемонстрировал.

Общая цель скачка состоит в том, чтобы облегчить создание мутантных линий для генов, которые необходимы для эмбриогенеза. Этот метод может помочь ответить на ключевые вопросы в генетике развития и других областях. Основное преимущество этой методики заключается в том, что в поколении F1 можно получить мутанты в основных генах.

Чтобы начать эту процедуру, микроинъекции эмбрионам Xenopus на одноклеточной стадии комплексов Cas9-sgRNA, как указано в текстовом протоколе. Когда эмбрионы достигнут 4,5 часов после оплодотворения, на ранней девятой стадии бластулы, извлеките их из инкубатора при температуре 25 градусов Цельсия, чтобы они могли продолжить развитие при комнатной температуре. Чтобы начать трансплантацию через пять часов после оплодотворения, с помощью пастеровской пипетки перенесите один неинъецированный эмбрион в 60-миллиметровую агарозную чашку, содержащую углубления, которые будут служить реципиентом трансплантата.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Выпуск 132 Xenopus генетика генетика мутантов ТРИФОСФАТЫ/Cas9 TALEN изменения генома мутагенеза потеря функции

Related Videos

Манипуляция и In Vitro Созревание Xenopus Laevis ооциты, а затем внутриклеточное инъекции сперматозоида в целях изучения эмбрионального развития

09:22

Манипуляция и In Vitro Созревание Xenopus Laevis ооциты, а затем внутриклеточное инъекции сперматозоида в целях изучения эмбрионального развития

Related Videos

23.6K Views

Высокоэффективные гена срыв мышиных и человека гемопоэтических предшественников клеток ТРИФОСФАТЫ/Cas9

08:27

Высокоэффективные гена срыв мышиных и человека гемопоэтических предшественников клеток ТРИФОСФАТЫ/Cas9

Related Videos

14.2K Views

CRISPR/Cas9 Рибонуклеопротеин-опосредовано Точное редактирование генов трубэлектрогенерации

08:31

CRISPR/Cas9 Рибонуклеопротеин-опосредовано Точное редактирование генов трубэлектрогенерации

Related Videos

14.9K Views

Представляя ген нокаут непосредственно в Amastigote Этап trypanosoma cruzi Использование CRISPR / Cas9 системы

06:13

Представляя ген нокаут непосредственно в Amastigote Этап trypanosoma cruzi Использование CRISPR / Cas9 системы

Related Videos

9.6K Views

Поколение определенных геномных модификаций с использованием CRISPR-CAS9 в стволовых клетках человека

09:04

Поколение определенных геномных модификаций с использованием CRISPR-CAS9 в стволовых клетках человека

Related Videos

8.9K Views

Использование замороженных оттаять эмбрионов для высокоэффективного производства генетически модифицированных мышей

06:46

Использование замороженных оттаять эмбрионов для высокоэффективного производства генетически модифицированных мышей

Related Videos

10.6K Views

Удаление внутреннего трансляционного стартового участка из мРНК при сохранении экспрессии полноразмерного белка

05:48

Удаление внутреннего трансляционного стартового участка из мРНК при сохранении экспрессии полноразмерного белка

Related Videos

3.1K Views

Микроинъекция зиготы для создания генных кассетных нокаутных и флоксовых аллелей у мышей

08:48

Микроинъекция зиготы для создания генных кассетных нокаутных и флоксовых аллелей у мышей

Related Videos

5.7K Views

Эффективное редактирование генома мышей с помощью ЭЛЕКТРОПОРАЦИИ ЗИГОТ CRISPR

07:17

Эффективное редактирование генома мышей с помощью ЭЛЕКТРОПОРАЦИИ ЗИГОТ CRISPR

Related Videos

4.3K Views

CRISPR-Cas9 Редактирование генома крысиных эмбрионов с использованием аденоассоциированного вируса (AAV) и электропорации 2-клеточных эмбрионов

08:24

CRISPR-Cas9 Редактирование генома крысиных эмбрионов с использованием аденоассоциированного вируса (AAV) и электропорации 2-клеточных эмбрионов

Related Videos

3K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code